способ определения эффективности лечения воспалительного процесса гнойных ран под физиотерапевтическим воздействием

Формула изобретения

Способ определения эффективности лечения воспалительного процесса гнойных ран под физиотерапевтическим воздействием, включающий цитологическое исследование мазков материала, отобранного из гнойных ран после лечения, определение клеточного состава, в том числе нейтрофильных гранулоцитов и тканевых элементов - клеток фибробластов и фиброцитов, отличающийся тем, что в качестве физиотерапевтического воздействия используют низкочастотную ультразвуковую кавитацию, при этом по материалу, отобранному из гнойной раны на 3-и сутки от начала лечения в процессе цитологических исследований, определяют дополнительные признаки лечебного патоморфоза, а именно: морфологию нейтрофильных гранулоцитов, фибробластов и фиброцитов и наличие оксифильного межуточного вещества, и при выявлении фрагментации ядер и вакуолизации цитоплазмы в нейтрофильных гранулоцитах, многоядерности, дольчатости ядер, наличия ядрышек в ядрах, базофилии, зернистости и вакуолизации цитоплазмы в фибробластах и фиброцитах, а также наличия оксифильного межуточного вещества определяют лечение как эффективное.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для определения эффективности лечения воспалительного процесса в гнойной ране под воздействием низкочастотной ультразвуковой кавитации в ранние сроки.

Известен способ оценки течения раневого процесса, в котором через промежутки времени измеряют контуры раны, рассчитывают площадь и периметр раневой поверхности. После чего по полученным данным вычисляют скорость заживления раны как скорость продвижения регенераторного вала (Пат. РФ 2102755, Кл. G01N 33/483, 1998).

Недостатком указанного способа является его длительность, а также низкая достоверность диагностики, обусловленная отсутствием оценки состояния раневого процесса. Такой показатель, как уменьшение площади раны, может быть связан не только с положительной динамикой заживления раны, но и с нарастанием воспалительного процесса, то есть с отрицательной динамикой или рецидивом гнойного процесса. В таком случае за счет отека и инфильтрации окружающих тканей площадь раны будет уменьшаться.

Известен способ определения эффективности лечения воспалительного процесса гнойных ран под физиотерапевтическим воздействием, включающий цитологическое исследование мазков материала, отобранного из гнойных ран после лечения, определение клеточного состава, в том числе нейтрофильных гранулоцитов и тканевых элементов - клеток фибробластов и фиброцитов. (Журнал «Инфекционные болезни», ст. В.И.Глушко «Цитологическая картина мазков отпечатков гнойных ран под воздействием плазменного потока» т.8, Январь 2007, с.18-29;http://www.medline.ru/public/art/tom8/art003pdf.phtml).

В данном способе контроль раневого процесса осуществляют путем исследования мазков-отпечатков по методу М.В.Покровской, М.С.Макарова в модификации Д.М.Штейнберга, производимого на 2-е, 4-е, 6-е, 8-е, 10-е, 12-е, 14-е, 16-е сутки раневого процесса. При этом оцениваются микрофлора ран, процент деструкции лейкоцитов, фагоцитоз и его тип, определение типа цитологического мазка.

Далее сравнивают цитологическую картину мазков-отпечатков при лечении гнойных ран стандартным методом (контрольная группа) и с дополнительной обработкой ран плазменным потоком (основная группа).

Недостатком данного способа является низкая достоверность полученного результата, обусловленная тем, что основной акцент сделан на оценку количества нейтрофильных гранулоцитов, микрофлоры (при бактериоскопии) и фагоцитарной активности.

Определение относительной величины микробной обсемененности (по отношению к 100 лейкоцитам) по цитологическим мазкам недостоверно, для объективной оценки микробной обсемененности необходимо бактериологическое исследование.

Следует отметить, что количество нейтрофильных лейкоцитов в мазке является одним из определяющих параметров оценки типа цитограммы. Но изолированная оценка их процентного соотношения относительно других клеток не всегда соответствует истинному процессу в ране. Так, появление в ране большого количества нейтрофильных лейкоцитов в одних случаях может свидетельствовать о прогрессировании воспалительного процесса и присоединении осложнений, а в других является весьма благоприятным симптомом, свидетельствующим об активации факторов неспецифической резистентности тканей (Булынин В.И., Глухов А.А., Мануров И.П. Лечение ран. - Воронеж, 1998, 248 с.).

В соответствии с этим поставлена задача, направленная на создание простого способа, являющегося малозатратным как материально, так и по времени проведения, позволяющего в ранние сроки достоверно определить эффективность лечения, за счет оценки модификации основных признаков лечебного патоморфоза раневого процесса: изменения клеточного состава инфильтрата, морфологии сегментоядерных нейтрофилов, морфологии фибробластов, фиброцитов, наличия оксифильного вещества.

Эти важные параметры позволят значительно ускорить процесс оценки качества лечения гнойных ран в амбулаторных условиях.

Для решения этой задачи в способе определения эффективности лечения воспалительного процесса гнойных ран под физиотерапевтическим воздействием, включающем цитологическое исследование мазков материала, отобранного из гнойных ран после лечения, определение клеточного состава, в том числе нейтрофильных гранулоцитов и тканевых элементов - клеток фибробластов и фиброцитов, предложено в качестве физиотерапевтического воздействия использовать низкочастотную ультразвуковую кавитацию, при этом по материалу, отобранному из гнойной раны на 3-и сутки от начала лечения в процессе цитологических исследований, определять дополнительные признаки лечебного патоморфоза, а именно: морфологию нейтрофильных гранулоцитов, фибробластов и фиброцитов и наличие оксифильногомежуточного вещества, и при выявлении фрагментации ядер и вакуолизации цитоплазмы в нейтрофильных гранулоцитах, многоядерности, дольчатости ядер, наличия ядрышек в ядрах, базофилии, зернистости и вакуолизации цитоплазмы в фибробластах и фиброцитах, а также наличие оксифильного межуточного вещества определяют лечение как эффективное.

На фиг.1 изображен фрагмент цитограммы, на котором стрелкой указан фибробласт с дольчатым ядром и ядрышками. Азур-эозин. ×40 (Пример 1).

На фиг.2 - фрагмент цитограммы, на котором стрелкой показан многоядерный фибробласт с вакуолизированной цитоплазмой и ядрышками в ядрах. Азур-эозин. ×40 (Пример 1).

На фиг.3 - фрагмент цитограммы, на котором стрелкой показаны фибробласты с вакуолизированной и базофильной цитоплазмой, а также оксифильное межуточное вещество (ОВ и стрелки). Азур-эозин. ×40 (Пример 1).

На фиг.4 - фрагмент цитограммы, на котором стрелками указаны два нейтрофильных гранулоцита с фрагментированными ядрами и вакуолями в цитоплазме. Азур-эозин. ×40 (Пример 1).

На фиг.5 - фрагмент цитограммы, на котором стрелками показаны: фибробласт с зернистостью в цитоплазме, нейтрофильные гранулоциты, гистиоциты (гист и стрелка). Азур-эозин. ×40 (Пример 1).

Использование данного способа позволит дать объективную клиническую картину состояния раневого процесса уже на 3-и сутки после лечения за счет использования как количественной оценки клеточного состава раны, так и качественной морфологической оценки состояния нейтрофильных гранулоцитов, фибробластов и фиброцитов и наличия оксифильного межуточного вещества. Это, в свою очередь, позволит достоверно оценить эффективность лечения.

Осуществление способа показано на конкретном примере.

Пациентка Л, 75 лет. Диагноз: нагноившаяся гематома левой нижней конечности.

В день обращения (1-е сутки) произведено вскрытие гнойника, дренирование, санация. Начато лечение раны с использованием низкочастотного ультразвукового кавитатора. На 3-и сутки проведено цитологическое исследование. При этом материал из гнойной раны наносился на обезжиренное предметное стекло, распределялся равномерно тонким слоем, высушивался на воздухе, затем окрашивался азур-эозином по методу Паппенгейма. Исследования проводили с использованием светового микроскопа при увеличении ×10 и ×40.

На третьи сутки установлено, что большинство признаков лечебного патоморфоза можно выявить и сделать вывод об эффективности лечения.

Показатели цитограммы (1-е сутки):

Лейкоцитарная реакция - выраженная.

Сегментоядерные нейтрофилы 92%, гистиоциты 3%, лимфоциты 2%, эозинофилы 0,5%, фибробласты 2%, фиброциты 0,5%.

Показатели цитограммы (3-и сутки):

Лейкоцитарная реакция - умеренно-выраженная.

Сегментоядерные нейтрофилы 75,5%, гистиоциты 1,5%, лимфоциты 9,5%, эозинофилы 2,5%, фибробласты 3%, фиброциты 8%, оксифильное межуточное вещество.

Выявлены признаки лечебного патоморфоза:

нейтрофильных гранулоцитов - фрагментация ядра (фиг.4), вакуолизация цитоплазмы (фиг.4);

клеток фибробластического дифферона - многоядерность (Фиг.2), дольчатость ядер (фиг.1), наличие ядрышек в ядрах (фиг.1, 2), базофилия цитоплазмы (фиг.3), зернистость в цитоплазме (фиг.5), вакуолизация цитоплазмы (фиг.2).

На 3-и сутки от начала лечения низкочастотным ультразвуковым кавитатором отмечается снижение выраженности лейкоцитарной реакции, снижение количества сементоядерных нейтрофилов, увеличение лимфоцитов, эозинофилов, фибробластов и фиброцитов, а также появление лечебного патоморфоза, что говорит об эффективности применяемого лечения и о снижении воспалительного процесса на фоне лечения.

Использование данного способа позволит дать объективную клиническую картину состояния раневого процесса уже на 3-и сутки после лечения за счет использования как количественной оценки клеточного состава раны, так и качественной морфологической оценки состояния нейтрофильных гранулоцитов, фибробластов и фиброцитов и наличия оксифильного межуточного вещества. Это, в свою очередь, позволит достоверно определить эффективность лечения.