способ моделирования хронической гнойной костной раны

Формула изобретения

Способ моделирования хронической гнойной костной раны, включающий формирование костного дефекта и введение в него инфицирующей смеси, содержащей стерильный кварцевый песок, отличающийся тем, что формирование костного дефекта проводят вдоль оси кости, помещают в него смесь культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus № 5 в количестве 40-45 млн KОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка, через трое суток после операции удаляют некротические массы и гной из зоны костного дефекта, выполняют реинфицирование раны культурой в дозе 20-25 млн KОЕ на 1 кг массы тела с сохранением раны в последующем в свищевом виде.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к медицине, в частности к хирургии, и может быть использовано при моделировании хронической гнойной костной раны.

Известен способ моделирования хронической гнойной костной раны, заключающийся в формировании костного дефекта голени крысы, помещении в него в качестве ирритативного вещества спиртового раствора нитрата серебра и через 7-10 дней - микробной взвеси (см. Воротников А.А., Максименко Д.В., Пономарев И.П. Моделирование хронического гнойного остеомиелита в эксперименте для исследования методов замещения инфицированных костных дефектов. // Медицинский вестник Северного Кавказа. - 2006. - № 2. - С.28-30).

Однако введение в дефект спиртового раствора нитрата серебра приводит к повышенному риску чрезмерного некроза не только костной ткани, но и окружающих мягких тканей, а инфицирование области вмешательства проводится только через 7-10 дней после введения в эксперимент.

В качестве прототипа выбран способ моделирования хронической гнойной костной раны, заключающийся в формировании костного дефекта нанесением поперечного линейного распила в средней трети диафиза болыпеберцовой кости на 1/3 диаметра, введении инфицирующей смеси Proteus spp. (разные штаммы) 2 млрд KОЕ в 0,2-0,25 мл и 0,5 см³ стерильного кварцевого песка в расчете на четырех кроликов, ушивании раны и последующей гипсовой иммобилизации (см. Матусис З.Е. Гноеродный протей как этиологический фактор остеомиелита и других гнойных хирургических заболеваний: автореф. дис. д-ра мед. наук. - Барнаул, 1962. - С.9-11).

Однако количество инфицирующей смеси на каждого экспериментального животного трудно дозировать. Биомеханические особенности созданного костного дефекта приводят к повышению риска перелома бедренной кости, его размеры малы, что затрудняет лечебно-диагностические манипуляции на этапе хронического гнойного раневого процесса и делает вероятным самозаживление дефекта костной ткани. Гноеродный протей не является актуальным возбудителем хронических раневых процессов структур опорно-двигательного аппарата. Способ технически труден, требует внушительных затрат времени, высок риск передозировки микроорганизмов и развития септического шока, следствием которого может стать смерть животного.

Задача предлагаемого изобретения - усовершенствование способа.

Технический результат - исключение переломов оперируемой кости, гибели экспериментальных животных от септического шока и снижение времени эксперимента.

Поставленный технический результат достигается за счет того, что в способе моделирования хронической гнойной костной раны, включающем формирование костного дефекта, и введение в него инфицирующей смеси, содержащей стерильный кварцевый песок, формирование костного дефекта проводят вдоль оси кости, помещают в него смесь культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus № 5 в количестве 40-45 млн. KОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка, через трое суток после операции удаляют некротические массы и гной из зоны костного дефекта, выполняют реинфицирование раны культурой в дозе 20-25 млн КОЕ на 1 кг массы тела с сохранением раны в последующем в свищевом виде.

Способ осуществляют следующим образом. Положение животного на боку. Выполняют комбинированное обезболивание препаратами «Золетил 50» в дозе 15 мг/кг в/м, «Ксила» в дозе 0,1 мг/кг в/м и местную анестезию 0,25% раствором новокаина - 4 мл. По передней поверхности верхней трети голени кролика производят линейный разрез кожных покровов длиной 2 см. Тупым и острым способом осуществляют доступ к переднему краю метаэпифиза большеберцовой кости. При помощи фрезы вдоль оси кости наносят дефект 4 мм × 10 мм. В дефект помещают инфицирующую смесь культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus № 5 в количестве 40-45 млн KОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка. После этого костный дефект укрывают фасцией. На кожные покровы накладывают 8-9 узловых швов. В послеоперационном периоде происходит нагноение области оперативного вмешательства. Через трое суток после операции под комбинированным обезболиванием снимают три операционных шва в средней трети раны, формируя свищевую рану. Осуществляют доступ к зоне костного дефекта, удаляют из раны некротические массы, гной. Выполняют реинфицирование костного дефекта культурой музейного штамма Staphylococcus Aureus № 5 в количестве 20-25 млн КОЕ на кг массы тела. Рану не ушивают, и она существует в последующие сроки в свищевом виде.

Пример. Способ апробирован на 8 особях кроликов породы «Шиншилла». Каждому экспериментальному животному для ввода в эксперимент было выполнено оперативное вмешательство, которое заключалось в создании дефекта костной ткани большеберцовой кости 4 мм × 10 мм, в который была введена инфицирующая смесь культуры музейного штамма Staphylococcus Aureus № 5 в дозе 40-45 млн КОЕ на 1 кг массы тела экспериментального животного и 0,1 мл стерильного кварцевого песка. Через трое суток была снята часть швов и создана свищевая рана, которая была реинфицирована культурой в дозе 20-25 млн KОЕ на 1 кг массы тела. Были выполнены бактериологические исследования полученного раневого отделяемого, в результате которых было выявлено наличие монокультуры S. Aureus.

Способ моделирования хронической гнойной костной раны позволяет добиться стойкого хронического течения гнойного раневого процесса в костной полости без склонности к самовыздоровлению экспериментального животного с низкой вероятностью генерализации инфекционного процесса. В качестве этиологического фактора используется актуальный инфекционный возбудитель. Риск гибели экспериментальных животных сведен к минимуму. Оперативные вмешательства не сопровождаются серьезным нарушением топографоанатомических взаимоотношений. Способ технически прост, реализуется в короткий промежуток времени.