жидкая питательная среда для культивирования патогенных штаммов микобактерий туберкулеза

Классы МПК:C12N1/20 бактерии; питательные среды для них
C12Q1/04 установление присутствия и(или) вида микроорганизма; использование селективных сред для испытания антибиотиков или бактерицидов; составы, содержащие химический индикатор для этих целей
Автор(ы):, , ,
Патентообладатель(и):Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Сибирского отделения Россельхозакадемии (ГНУ ИЭВСиДВ СО РАСХН) (RU)
Приоритеты:
подача заявки:
2005-07-04
публикация патента:

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для культивирования патогенных штаммов микобактерий туберкулеза. Питательная среда содержит в качестве минерально-солевой основы 1,5%-ную вытяжку древесной золы, глицерин, аспарагин, криалл, сыворотку крови лошадей. Изобретение позволяет повысить ростовые свойства питательной среды и сократить сроки выращивания патогенных микобактерий туберкулеза. 4 табл.

Формула изобретения

Жидкая питательная среда для культивирования патогенных штаммов микобактерий туберкулеза, включающая аспарагин, глицерин и минерально-солевую основу, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит криалл и сыворотку крови лошадей, а в качестве минерально-солевой основы - вытяжку древесной золы при следующем соотношении компонентов:

Вытяжка древесной золы 1,5% 100 мл
Глицерин 6,0 г
Аспарагин 0,4 г
Криалл 1,0-1,2 г
Сыворотка крови лошадей 1,0-1,2 г

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии, в частности к культивированию патогенных штаммов микобактерий туберкулеза.

Известна жидкая питательная среда Моделя (Практикум по ветеринарной микробиологии. Москва, 1980, с.92) для выращивания микобактерий туберкулеза, содержащая калий фосфорнокислый двуосновной 0,5 г; аммоний лимоннокислый 1 г; магний сернокислый 0,05 г; железо сернокислое 0,005 г; глицерин 5 мл; дистиллированную воду 100 мл.

Однако при использовании этой среды рост первичных культур микобактерий и процесс накопления бактериальной массы замедленны, среда содержит много компонентов, что усложняет ее приготовление.

Наиболее близкой по сущности заявляемому решению является жидкая среда Сотона (Лабораторная диагностика туберкулеза. Рекомендации, Омск, 1988, с.59), которая применяется для культивирования микобактерий туберкулеза, состоящая из следующих компонентов: аспарагин, глицерин, а минерально-солевую основу данной среды составляют такие компоненты, как лимонная кислота, калий фосфорнокислый двуосновной, магний сернокислый, цитрат аммиачного железа.

Однако данная среда требует большого количества компонентов, и сроки роста микобактерий на ней не являются оптимальными.

Технической задачей заявляемого изобретения является введение в среду веществ, позволяющих улучшить ростовые свойства среды и сократить сроки выращивания патогенных микобактерий туберкулеза при посевах эталонных штаммов культур микобактерий.

Поставленная техническая задача решается тем, что известная жидкая питательная среда для культивирования патогенных штаммов микобактерий туберкулеза, включающая аспарагин, глицерин и минерально-солевую основу, согласно изобретению дополнительно содержит криалл и сыворотку крови лошадей, а в качестве минерально-солевой основы - вытяжку древесной золы при следующем соотношении компонентов:

1,5%-ная вытяжка древесной золы, мл 100
Глицерин 6,0 г
Аспарагин 0,4 г
Криалл 1,0-1,2 г
Сыворотка крови лошади 1,0-1,2 г

Приготовление среды производят следующим образом.

В качестве минерально-солевой основы предлагаемой среды используют вытяжку древесной золы, при проведении спектрального анализа которой было обнаружено содержание в ней необходимых для питания микобактерий туберкулеза микроэлементов: серы, магния, железа, цинка, калия и фосфора. Приготовление вытяжки древесной золы и определение ее оптимальной концентрации производят следующим образом: берут 0,5 г (пример 1); 1,5 г (пример 2) и 3 г (пример 3) древесной золы, просеянной через сито, и доливают до 100 мл дистиллированной водой, выдерживают 3 суток, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, затем - через бумажный, автоклавируют при 1,5 атм 30 мин.

Сроки роста патогенных штаммов микобактерий туберкулеза на среде Сотона и средах с введением вытяжки древесной золы в различных концентрациях представлены в таблице 1.

Таблица 1
СредыПатогенные штаммы микобактерий
М.bovis(шт.8,ВИЭВ) M.tuberculosis (шт.H37Rv)
Рост, (сутки)
появление интенсивныйпоявление интенсивный
Сотона 142211 22
Пример 1 (0, 5% вытяжка древесной золы)14 221222
Пример 2 (1, 5% вытяжка древесной золы) 10208 18
Пример 3 (3% вытяжка древесной золы)13 221120

Проведенные испытания показывают, что наиболее оптимальной для получения ускоренного роста патогенных штаммов микобактерий туберкулеза является вытяжка древесной золы 1,5%-ной концентрации, которую в дальнейшем используют в качестве минерально-солевой основы предлагаемой среды.

Далее предлагаемую среду готовят следующим образом. Растворяют каждый ингредиент среды в растворе 1,5%-ной вытяжки золы, причем последующий ингредиент добавляют после полного растворения предыдущего. Пропускают через бумажный фильтр и разливают по колбам. Устанавливают рН в пределах 7,0-7,2 при помощи 10%-ной ортофосфорной кислоты. Стерилизуют в автоклаве текучим паром при 120°С в течение 30 минут. В качестве биологически активных добавок в предлагаемую среду дополнительно вводят криалл (заявка на патент №94011513/15 «Способ получения торфогуминового удобрения», авторы Алексеев А.С., Кривопуцкий B.C., Кривопуцкая Л.М) и сыворотку крови лошадей.

Для контроля во всех примерах используют среду Сотона.

Для подтверждения оптимальной концентрации криалла в составе предлагаемой среды проводят следующие исследования.

Пример 4. В среду, состоящую из аспарагина 0,4 г, глицерина 6,0 г, 1,5% вытяжки древесной золы, добавляют криалл в количестве 0,5-0,7 г.

Пример 5. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации 1,5% и криалла в количестве 1,0-1,2 г.

Пример 6. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации 1,5% и криалла в количестве 1,5-1,7 г.

Результаты испытания питательных сред, приготовленных в примерах 4, 5 и 6, представлены в таблице 2.

Таблица 2
СредыПатогенные штаммы микобактерий
M.bovis (шт.8, ВИЭВ) M.tuberculosis (шт. H37Rv)
Рост, (сутки)
появлениеинтенсивный появлениеинтенсивный
Сотона1422 1120
Пример 4 (1,5% вытяжка древесной золы, криалл 0,5-0,7 г) 142415 22
Пример 5 (1,5% вытяжка древесной золы, криалл 1,0-1,2 г)14 201120
Пример 6 (1, 5% вытяжка древесной золы, криалл 1,5-1,7 г)1624 1622

Для подтверждения оптимальной концентрации сыворотки крови лошадей в составе предлагаемой среды проводят следующие исследования.

Пример 7. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина 0,4 г, глицерина 6,0 г, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации - 1,5% и сыворотки крови лошадей в количестве 0,5-0,7 г.

Пример 8. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации - 1,5% и сыворотки крови лошадей в количестве 1,0-1,2 г.

Пример 9. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации - 1,5% и сыворотки крови лошадей в количестве 1,5-1,7 г.

Результаты испытания питательных сред, приготовленных в примерах 7,8 и 9, представлены в таблице 3.

Таблица 3
СредыПатогенные штаммы микобактерий
M.bovis (шт. 8, ВИЭВ) M.tuberculosis (шт. H37Rv)
Рост, (сутки)
появлениеинтенсивный появлениеинтенсивный
123 45
Сотона 1422 1120
Пример 4 (1,5% вытяжка древесной золы, сыворотка крови лошадей 0,5-0,7 г)1422 1220
Пример 5 (1,5% вытяжка древесной золы, сыворотка крови лошадей 1,0-1,2 г)1219 915
Пример 6 (1,5% вытяжка древесной золы, сыворотка крови лошадей 1,5-1,7 г)1221 1120

Для подтверждения оптимального соотношений заявленных ингредиентов в испытуемой среде проводят следующие исследования.

Пример 10. В среду, состоящую из аспарагина 0,4, глицерина 6,0, 1,5% вытяжки древесной золы, добавляют криалл в количестве 0,5-0,7 г и сыворотку крови лошадей в количестве 0,5-0,7 г.

Пример 11. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации 1,5%, криалла в количестве 1,0 - 1,2 г и сыворотки крови лошадей в количестве 1,0 - 1,2 г.

Пример 12. Для культивирования микобактерий туберкулеза готовят среду, состоящую из аспарагина, глицерина в известных количествах, вытяжки древесной золы в оптимальной концентрации 1,5%, криалла в количестве 1,5-1,7 г и сыворотки крови лошадей в количестве 1,5 - 1,7 г.

Результаты испытания питательных сред, приготовленных в примерах 10, 11 и 12, представлены в таблице 4.

Таблица 4
СредыПатогенные штаммы микобактерий
M.bovis (шт.8, ВИЭВ) M.tuberculosis (шт. H37Rv)
Рост, (сутки)
появлениеинтенсивный появлениеИнтенсивный
Сотона1422 1120
Пример 4 (1,5% вытяжка древесной золы, криалл 0,5-0,7 г, сыворотка крови лошадей 0,5-0,7 г)12 191119
Пример 5 (1,5% вытяжка древесной золы, криалл 1,0-1,2 г, сыворотка крови лошадей 1,0-1,2 г) 8146 12
Пример 6 (1,5% вытяжка древесной золы, криалл 1,5-1,7 г, сыворотка крови лошадей 1,5-1,7 г) 1422 1221

Из полученных данных следует, что сокращение сроков появления первичного и интенсивного роста микобактерий туберкулеза происходит при использовании в составе опытных сред вытяжки древесной золы 1,5%-ной концентрации, 1,0-1,2 г криалла и 1,0-1,2 г сыворотки крови лошадей.

На основании проведенных исследований установлено, что предлагаемая жидкая питательная среда, в состав которой входит минеральный комплекс и биологические добавки, позволяет стимулировать рост патогенных штаммов микобактерий туберкулеза.

Класс C12N1/20 бактерии; питательные среды для них

способ определения чувствительности патогенных бактерий к комплексным антибактериальным препаратам -  патент 2529711 (27.09.2014)
бифазная транспортная питательная среда для выделения и выращивания бруцеллезного микроба -  патент 2529364 (27.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528874 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528873 (20.09.2014)
штамм lactobacillus fermentum, обладающий широким спектром антагонистической активности и пробиотический консорциум лактобактерий для изготовления бактериальных препаратов -  патент 2528862 (20.09.2014)
изолированный штамм (варианты), обеспечивающий улучшение состояния здоровья жвачных животных, способ его получения, и способ его введения жвачным животным -  патент 2528859 (20.09.2014)
способ получения миллерита с использованием сульфатредуцирующих бактерий -  патент 2528777 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528744 (20.09.2014)
питательная среда для выращивания консорциума азотфиксирующих и фосфатмобилизующих микроорганизмов -  патент 2528740 (20.09.2014)
питательная среда для культивирования легионелл -  патент 2528101 (10.09.2014)

Класс C12Q1/04 установление присутствия и(или) вида микроорганизма; использование селективных сред для испытания антибиотиков или бактерицидов; составы, содержащие химический индикатор для этих целей

способ определения чувствительности патогенных бактерий к комплексным антибактериальным препаратам -  патент 2529711 (27.09.2014)
бифазная транспортная питательная среда для выделения и выращивания бруцеллезного микроба -  патент 2529364 (27.09.2014)
способ оценки выживаемости бифидо- и лактобактерий в желудочно-кишечном тракте экспериментальных животных -  патент 2528867 (20.09.2014)
способ и набор для детекции микроорганизмов -  патент 2527897 (10.09.2014)
способ видовой и штаммовой идентификации бифидобактерий филотипа bifidobacterium longum -  патент 2527069 (27.08.2014)
способ идентификации лактобацилл -  патент 2526576 (27.08.2014)
способ видовой дифференциации жизнеспособных родококков, иммобилизованных в гелевом носителе -  патент 2525934 (20.08.2014)
способ выявления внутрибольничных штаммов микроорганизмов -  патент 2525695 (20.08.2014)
питательная среда плотная для культивирования возбудителя листериоза -  патент 2525637 (20.08.2014)
способы разделения, характеристики и(или) идентификации микроорганизмов с помощью масс-спектрометрии -  патент 2519650 (20.06.2014)
Наверх