олигонуклеотиды, праймеры и зонды, предназначенные для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов, способ, в котором их используют, набор реагентов, способ диагностики и способ селекции

Формула изобретения

1. Олигонуклеотид для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, имеющий следующую идентифицированную последовательность №1:

5'-YCC CAT GGA YGA GCC CAC MCT-3',

в которой Y означает С или Т и М означает А или С,

или последовательность, комплементарную указанной последовательности.

2. Праймер НЕХ1 для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере два олигонуклеотида по меньшей мере из 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №1 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80% с вышеуказанной последовательностью

5'-YCC CAT GGA YGA GCC CAC MCT-3',

в которой Y означает С или Т и М означает А или С.

3. Праймер по п.2, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере три олигонуклеотида.

4. Олигонуклеотид для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, обладающий следующей идентифицированной последовательностью:

5'-GAG AAS GGB GTG CGC AGG TAS AC-3',

в которой S означает G или С и В означает С, G или Т,

или последовательность, комплементарную указанной последовательности.

5. Праймер НЕХ2 для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере два олигонуклеотида по меньшей мере из 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №2 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80% с вышеуказанной последовательностью:

5'-GAG AAS GGB GTG CGC AGG TAS AC-3',

в которой S означает G или С и В означает С, G или Т.

6. Праймер по п.5, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере три олигонуклеотида.

7. Олигонуклеотид для осуществления способа детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №3 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80% с вышеуказанной последовательностью

5'-САС CAG ССА САС CGC GGC GTC АТС GA-3'.

8. Зонд HEX, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере один олигонуклеотид по п.7.

9. Зонд по п.8, отличающийся тем, что он включает молекулу-индикатор или систему молекул в качестве индикатора.

10. Зонд по п.9, образованный следующей молекулой:

5'-FAM - САС CAG ССА САС CGC GGC GTC АТС GA - TAMRA 3'.

11. Способ детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, согласно которому

нуклеотидную последовательность аденовируса амплифицируют путем полимеразной цепной реакции (PCR) в реальное время с помощью пары дегенерированных смыслового праймера НЕХ1 и антисмыслового праймера НЕХ2 и

продукт реакции амплификации детектируют с помощью недегенерированного зонда HEX на протяжении числа циклов, достаточного для возможности получения измеримого количества продукта амплификации.

12. Способ по п.11, отличающийся тем, что его осуществляют с помощью смыслового и антисмыслового праймеров, соответственно, по любому из пп.2, 3, 5 и 6.

13. Способ по любому из пп.11 и 12, отличающийся тем, что он включает повторение цикла, состоящего из следующих стадий:

отделение амплифицируемых цепочек путем нагревания экстракта ДНК из образца;

гибридизация зонда;

гибридизация с праймерами и элонгация с помощью полимеразы.

14. Способ по любому из пп.11-13, отличающийся тем, что продукт амплификации детектируют путем гибридизации с зондом по любому из пп.8-10.

15. Набор реагентов для реакции амплификации типа PCR в реальное время для детекции аденовирусов, отличающийся тем, что он включает пару праймеров по любому из пп.2 и 5 и зонд по любому из пп.8-10.

16. Способ диагностики серотипа аденовирусов, присутствующих в тестируемом образце, состоящий в осуществлении способа по любому из пп.11-13, с последующим секвенированием полученного продукта PCR.

17. Способ селекции аденовирусов, пригодных в качестве векторов-«кандидатов», включающий осуществление способа по любому из пп.11-13.

Описание изобретения к патенту

Настоящее изобретение относится к способу детекции и количественного определения в различных биологических средах нуклеиновых кислот аденовирусов путем измерения в реальное время амплификации цепи с помощью полимеразы (полимеразная цепная реакция, PCR). Объектом настоящего изобретения, кроме того, являются, олигонуклеотиды для осуществления этого способа.

Генная терапия в настоящее время получила значительное развитие. Аденовирусы, которые по своей природе ответственны за обычно доброкачественные инфекции, фигурируют среди векторов, используемых вследствие их многочисленных преимуществ.

Расширение клинического внедрения этих аденовирусных векторов в поздних фазах II и III в целях регистрации и разрешения выпуска в продажу вызывает необходимость разработки, узаконения и использования специфических и чувствительных методов, позволяющих осуществлять измерение количественного и качественного биораспределения аденовекторов в различных биологических компартментах и детекцию возникновения при незначительном количестве вирусов инфекции за счет вызывающих контаминацию загрязнителей продукции аденовекторов (в особенности рекомбинантных аденовекторов, компетентных для репликации). Кроме того, необходимо детектировать интеркуррентные аденовирусные инфекции, вызываемые дикими вирусами различных серотипов, ответственными за большинство случаев этих естественных инфекций, являются ли эти инфекции клинически флоридными или латентными, и детектировать вирусологическую кинетику этих самопроизвольных инфекций и клиническую значимость различных состояний в общей популяции или у пациентов группы риска (страдающие раковыми заболеваниями, подвергнутые трансплантации, с иммунодепрессией или с подавленным иммунитетом пациенты и т.д.).

Присутствие аденовируса в пермиссивной клеточной культуре, согласно используемым вплоть до настоящего времени обычным методам детекции, визуализируют по цитопатическому эффекту в клеточном слое. Для доказательства того, что этот цитопатический эффект вызван аденовирусом, по методу твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA) детектируют специфический антиген аденовируса.

Методы амплификации выделенных из аденовирусов нуклеиновых кислот путем PCR, кроме того, уже описаны. Так, в заявке на патент Японии JP 07327700 описывается метод типа PCR, согласно которому амплифицируют части ДНК, кодирующей гексон, аденовирусный капсидный белок. Продукты амплификации подвергают дот-блоттингу, затем гибридизируют со специфическими для каждых серотипов зондами. Этот метод, следовательно, предназначен для идентификации подгрупп и серотипов, но не для детекции и количественного определения совокупности аденовирусов, присутствующих в образце. Кроме того, чувствительность этого метода является незначительной и, следовательно, он мало приспособлен для точных количественных определений, например, требуемых во время наблюдения пациентов, к которым применялась генная терапия.

Pring-Akerblom и др. (Journal of Medical Virology, 58, 87-92 (1999)) также описали метод, согласно которому используют шесть пар праймеров в одной и той же полимеразной цепной реакции (так называемая мультиплетная PCR). Идентификацию подгруппы осуществляют, помещая продукты PCR на гель для электрофореза, затем определяя размер продуктов PCR.

Crawford-Miksza и др. (Journal of Clinical Microbiology, 37, 1107-1112 (1999)) описали PCR гексона, специфически детектирующую аденовирусы типов 4, 7 и 21, при использовании консенсусных праймеров, включающих инозин в качестве нуклеозида в случае межконъюгации в некотором вариабельном положении. В этом документе описаны девять различных праймеров.

Согласно этим методам предшествующего уровня техники осуществляют стандартную PCR и классический метод анализа обычно путем гель-электрофореза с гибридизацией или без нее.

Ни один из этих методов не позволяет одновременно детектировать в большом масштабе аденовирусы, происходящие из большинства известных серотипов, и количественно определять вирусные "нагрузки" с чувствительностью в точном соответствии с потребностями генной терапии.

Целью настоящего изобретения, следовательно, является решение этих проблем путем разработки чувствительного и позволяющего детектировать большинство серотипов аденовирусов способа.

Заявители неожиданно обнаружили, что таких преимуществ достигают путем амплификации в реальное время определенной последовательности ДНК, кодирующей гексон, с помощью обладающих ограниченной дегенерацией праймеров и выявления продукта амплификации с помощью недегенерированного зонда.

Настоящее изобретение прежде всего относится к способу детекции и/или количественного определения нуклеиновых кислот аденовирусов в биологическом образце, согласно которому:

- нуклеотидную последовательность аденовируса амплифицируют путем полимеразной цепной реакции (PCR) в реальное время с помощью пары дегенерированных смыслового и антисмыслового праймеров, образованных смесями олигонуклеотидов, обладающих гомологией по меньшей мере на 80% с последовательностью от нуклеотида 21000 до нуклеотида 22000 последовательности аденовируса типа 5, соответствующей идентифицированной последовательности №4, или с комплементарной к ней последовательностью; и

- продукт реакции амплификации детектируют с помощью недегенерированного зонда, образованного одним или несколькими олигонуклеогидами, обладающими гомологией по меньшей мере на 80% с последовательностью от нуклеотида 21000 до нуклеотида 22000 последовательности аденовируса типа 5, соответствующей идентифицированной последовательности №4, или с комплементарной к ней последовательностью, на протяжении числа циклов, достаточного для возможности получения измеримого количества продукта амплификации.

Под выражением "полимеразная цепная реакция (PCR) в реальное время" понимают любой способ амплификации, позволяющий следить за развитием осуществляемой реакции амплификации.

Последовательности праймеров и/или зонда преимущественно обладают гомологией по меньшей мере на 80% с последовательностью от нуклеотида 540 до нуклеотида 780 идентифицированной последовательности №4 или с комплементарной к ней последовательностью. Оба праймера выбирают, соответственно, из смысловой и антисмысловой нитей таким образом, чтобы можно было осуществлять амплификацию фрагмента ДНК. Что касается зонда, то его выбирают так, чтобы он гибридизировался с полученным в результате реакции амплификации фрагментом ДНК. Праймеры PCR согласно настоящему изобретению, используемые для амплификации аденовирусной нуклеиновой кислоты-мишени из образца, находятся в постоянной области гена гексона человеческих аденовирусов, а сайт гибридизации зонда согласно настоящему изобретению находится между обоими праймерами. Аденовирусы предпочтительно имеют человеческий тропизм.

Предпочтительно, вышеуказанные олигонуклеотиды включают по меньшей мере 15 нуклеотидов и зонд имеет теоретическую температуру плавления Т_m выше примерно на 10°C±0,5 теоретических Т_m праймеров.

Такой способ в продолжении текста сокращенно называют метод PCR гексона. Он включает по существу повторение цикла, состоящего из следующих стадий:

- отделение амплифицируемых нитей путем нагревания экстракта ДНК из образца;

- гибридизация зонда;

- гибридизация с праймерами, такими, как указанные выше;

и

- элонгация с помощью полимеразы.

Его предпочтительно осуществляют с помощью нижеописанных смыслового и антисмыслового праймеров НЕХ1 и НЕХ2 и продукт амплификации предпочтительно гибридизируют с нижеописанным зондом HEX.

Объектом настоящего изобретения является, в частности, олигонуклеотид, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №1 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80%, предпочтительно на 90% и еще более предпочтительно на 95%, с вышеуказанной последовательностью:

5'-YCC CAT GGA YGA GCC CAC MCT-3',

в которой Y означает С или Т и М означает А или С.

Вышеуказанный олигонуклеотид предпочтительно включает 15-30 нуклеотидов.

Кроме того, объектом настоящего изобретения является смысловой праймер НЕХ1, образованный смесью отвечающих этому определению олигонуклеотидов. Так, праймер НЕХ1 имеет три дегенерации в положениях 1, 10 и 19, позволяющие охватить большинство серотипов.

Объектом настоящего изобретения является также второй олигонуклеотид, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №2 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80%, предпочтительно на 90% и еще более предпочтительно на 95%, с вышеуказанной последовательностью:

5'-GAG AAS GGB GTG CGC AGG TAS AC-3',

в которой S означает G или С и В означает С, G или Т.

Вышеуказанный олигонуклеотид предпочтительно включает 15-30 нуклеотидов.

Объектом настоящего изобретения, кроме того, является антисмысловой праймер НЕХ2, образованный смесью отвечающих этому определению олигонуклеотидов. Так, праймер НЕХ2 имеет три дегенерации в положениях 6, 9 и 21, позволяющие охватить большинство секвенированных серотипов.

Вышеуказанные праймеры предпочтительно включают по меньшей мере два олигонуклеотида и еще более предпочтительно три или четыре олигонуклеотида.

Положениями идентифицированных последовательностей №1 и №2, локализованными в части 3' открытой рамки считывания, кодирующей белок гексон, при использовании в качестве эталона полной последовательности аденовируса типа 5 (№ депонирования М73260), являются соответственно 21565 (НЕХ1) и 21656 (НЕХ2). Они соответствуют положениям 21048 и 21139 последовательности Ad5CMVp53 (длина 35308 пар оснований).

Заявители обнаружили, что концентрация праймеров является критическим параметром PCR в реальное время. Следовательно, дегенерация праймеров НЕХ1 и НЕХ2 ограничена.

Объектом настоящего изобретения, кроме того, является третий олигонуклеотид, отличающийся тем, что он включает по меньшей мере 10 последовательных нуклеотидов нижеследующей идентифицированной последовательности №3 или последовательности, обладающей гомологией последовательности по меньшей мере на 80%, предпочтительно на 90% и еще более предпочтительно на 95% с вышеуказанной последовательностью или с последовательностью, комплементарной к вышеуказанной последовательности:

5'-САС CAG ССА САС CGC GGC GTC АТС GA-3'.

Вышеуказанный олигонуклеотид предпочтительно включает 20-35 нуклеотидов.

Кроме того, объектом настоящего изобретения является зонд HEX, включающий по меньшей мере один олигонуклеотид, имеющий эту последовательность.

Изобретение, кроме того, относится к олигонуклеотидам, имеющим последовательность, комплементарную к последовательностям вышеуказанных олигонуклеотидов.

Согласно предпочтительному варианту осуществления настоящего изобретения, зонд включает молекулу-индикатор или систему молекул в качестве индикатора. Вышеуказанная система-индикатор образована предпочтительно красителем-репортером и красителем-гасителем флуоресценции, соответственно фиксированными на концах 5' и 3' зонда. Согласно предпочтительному варианту осуществления, система-индикатор образована парой "репортер/гаситель", представляемой 6-карбоксифлуоресцеином (FAM) и 6-карбокситетраметилродамином (TAMRA), соответственно фиксированными на концах 5' и 3' зонда. Один из праймеров может быть маркирован таким образом и может выполнять роль зонда.

Особенно предпочтительный зонд согласно изобретению образован:

5' FAM - САС CAG ССА САС CGC GGC GTC АТС GA - TAMRA 3'.

Такой системой-индикатором также может быть так называемая система-индикатор "наращивания" (tailing). Термин "наращивание" состоит во включении в один из концов зонда хвоста, который может автоконъюгироваться. Эту автоконъюгацию выявляют с помощью маркера, который специфически фиксируется на последовательности в этой конфигурации. В присутствии мишени происходит деконъюгация и посылается сигнал. В отсутствие мишени сигнал не посылается. Также могут быть использованы другие системы-индикаторы.

Как вариант, смысловой и антисмысловой праймеры могут включать молекулу-индикатор или систему молекул в качестве индикатора.

Продукт PCR, получаемый по способу, составляющему объект настоящего изобретения, при использовании праймеров последовательностей №1 и №2, предпочтительно имеет величину 114 пар оснований и согласно газовой хроматографии составляет около 58,8%.

Предпочтительно используемой согласно настоящему изобретению полимеразой является Taq-полимераза, однако она может быть любым другим ферментом, обладающим полимеразной активностью и используемым в рабочих условиях PCR.

Объектом настоящего изобретения является также набор реагентов для реакции амплификации типа PCR в реальное время для детекции аденовирусов отличающийся тем, что он включает пару смыслового и антисмыслового праймеров и зонд, такие, как описанные выше. Вышеуказанный набор преимущественно включает, кроме того, два отрицательных контроля и два положительных контроля.

Кроме того, объектом настоящего изобретения является метод PCR для детекции и/или количественного определения аденовируса в анализируемом образце, который может его содержать, отличающийся тем, что он состоит в осуществлении полимеразной цепной реакции в реальное время при использовании набора согласно изобретению.

Согласно особенно предпочтительному аспекту предлагаемого в изобретении метода, вышеуказанные два положительных контроля экстрагируют параллельно с серией анализируемых образцов и они состоят из стандарта, образованного очищенным и титрованным раствором аденовируса, и калибровочного маркера, адаптированного к типу анализируемого образца.

Метод согласно изобретению находит преимущественное применение для детекции и/или количественного определения аденовирусов, присутствующих в образцах типа суспензии или супернатанта культуры, плазмы, мочи, орофарингеальных лаважей, лимфоцитов, спермы, опухолевых или нет биопсий, ректальных мазков на ватных тампонах, фекалий, асцитов.

Настоящее изобретение также относится к способу селекции аденовирусов, пригодных в качестве векторов-"кандидатов", путем оценки репликационных характеристик аденовирусов при применении способа детекции и/или количественного определения согласно изобретению при наблюдении за кинетикой размножения аденовирусов.

Настоящее изобретение также относится к способу диагностики серотипа аденовирусов, присутствующих в тестируемом образце, состоящему в использовании способа согласно изобретению, с последующим секвенированием полученного продукта PCR.

Нуклеотидные последовательности различных серотипов, кодирующие белок гексон, были получены из банков данных или были секвенированы. Серотипы Ad3, Ad7, Ad12, Ad14, Ad16 и Ad21 в положении 9 зонда HEX имеют остаток А. Серотипы Ad5, Ad1, Ad2, Ad6, Ad13, Ad40 и Ad48 в том же самом положении имеют остаток G, тогда как серотипы Ad4 и Ad41 имеют остаток С. Была выбрана имеющая остаток А последовательность, так как последовательность типа G, в противоположность последовательностям типа А или типа С, имеет вторичную структуру, обладающую очень высокой стабильностью (DG=-7,1 ккал/моль), способную нарушать ее гибридизацию, и/или ее смещение, и/или ее деградацию во время полимеризации. С другой стороны, последовательность типа А является более часто встречающейся, чем последовательность типа С.

Межконъюгации А/С (Ad5CMVp53 и серотипы 5, 1, 2, 6, 13, 40 и 48) или A/G (серотипы 4 и 41) проявляются в виде уменьшения Rn без значительной модификации Ct (Rn представляет собой разницу флуоресценции, детектируемую между измеренной флуоресценцией фонового шума и определяемой флуоресценцией тестируемого образца; Ct определяют как число фракционных циклов, при котором генерируемая расщеплением зонда флуоресценция значительно превышает - обычно в 10 раз - фоновый шум).

Серотипы Ad5, Ad4, Ad12 и Ad14 и Ad5CMVp55 имеют дополнительные различия в положении

- 5 для серотипа Ad5 и Ad5CMVp53;

- 24 для серотипов Ad4 и Ad12;

- 3, 12 и 19 для серотипа Ad14.

Несмотря на эти различия неожиданно можно детектировать нуклеотидные последовательности, кодирующие белки гексоны этих серотипов.

Одним из преимуществ настоящего способа детекции и/или количественного определения человеческих аденовирусов по сравнению со способами, описанными в уровне техники, является замечательная чувствительность детекции с порогом детекции 10 частиц или 1 pfu (бляшкообразующая единица) путем реакции PCR.

Другое преимущество заключается в универсальности метода, поскольку могут быть детектированы и количественно определены 17 различных серотипов человеческих аденовирусов, типичных для совокупности подгрупп A-F.

Кроме того, анализ продуктов PCR осуществляют непосредственно по окончании циклов PCR путем считывания получаемой во время циклов флуоресценции. Следовательно, нет необходимости работать с продуктами PCR, которые подвергаются опасности загрязнения для последующих анализов.

Более того, запись необработанных данных производится полностью. В самом деле, каждый анализ PCR сохраняют в информационных файлах, которые можно хранить в архиве в течение длительного периода времени без повреждения. Необработанные данные могут быть в любой момент повторно проанализированы, если меняются критерии анализов. Сохранение необработанных данных является необходимым, когда нужно работать в соответствии с нормами пригодной лабораторной практики.

Кроме того, количественное определение числа исходных мишеней в реакции является очень надежным и воспроизводимым. Детекцию продукта PCR осуществляют во время циклов PCR с помощью флуоресцентного зонда. Это необходимо для детекции продукта PCR и осуществляется во время экспоненциальной фазы PCR, а не в конечной точке; этот принцип детекции, следовательно, является более чувствительным и более специфическим.

Другое преимущество состоит в том, что избегают неспецифических амплификаций благодаря принципу "горячий старт", причем PCR в реальное время осуществляют в присутствии термостабильной ДНК-полимеразы, активирующейся при первой денатурации.

Для осуществления настоящего изобретения, в случае необходимости, можно руководствоваться общим обзором способов PCR и, в частности пояснительной инструкцией, озаглавленной "Quantitation of DNA/RNA Using Real-Time PCR Detection", опубликованной фирмой Perkin Elmer Applied Biosystems (1999), и "PCR Protocols" (Academic Press, Нью-Йорк, 1989).

Настоящее изобретение поясняется не ограничивающими его объема охраны примерами и путем ссылки на прилагаемый чертеж, на котором представлена стандартная кривая метода PCR гексона согласно изобретению.

Материал и методы

Коллекция аденовирусов, культуральных супернатантов и клеточных линий.

- Большинство культуральных супернатантов различных серотипов человеческих аденовирусов происходит из лаборатории профессора Freymuth (Отдел вирусологии, CHU, Caen).

- Некоторые титрованные аденовирусы дикого типа (Ad2 и Ad5) происходят из UMR №1592 (Emmanuelle Vigne, Unité de Vectorologie et de Transfert de Genes, Институт Gustave-Roussy).

- Титрованный Ad5CMVp53 происходит из Unité de Production de RPR Gencell, Vitry (Didier Faucher). Титры представлены в виде числа pfu (бляшкообразующая единица). Эта единица будет оставаться ссылочной единицей для количественного определения.

- Клеточная линия 293 происходит из АТСС (CRL 1573).

- Клеточная линия А549 (АТСС: CCL 185) любезно представлена Е. Vigne и A. Fallourd, RPR Gencell.

- Клеточная линия MRC5 происходит от bioMerieux (номер по каталогу 84002, Франция).

- Клинические образцы:

- Клинические образцы (плазма, моча, орофарингеальные лаважи, фекалии) происходят либо от здоровых добровольцев, либо от пациентов, госпитализированных в Институте Gustave-Roussy.

- Некоторые плазмы происходят из Центра переливания крови либо за счет покупки мешка, происходящего от примерно 200 доноров, либо мешков, которые не могут быть больше использованы для медицинского применения.

Условия хранения:

- Коллекции аденовирусов и клинических образцов были перенесены в сухой лед и, начиная с момента получения, хранились при температуре -80°С.

- Различные стадии получения, разделения на аликвоты и анализа требуют некоторого числа замораживании и размораживаний (аденовирусов или клинических образцов). Для сохранения тех же условий контроля (стандарт и калибровочные маркеры) подвергают такому же числу замораживании и размораживаний, как и диагностируемые клинические образцы.

Контроли и стандарт:

- Имеются два типа отрицательных контролей:

Первый отрицательный контроль PCR, или NTC ("нетемплатный контроль"), который образован буфером PCR с дистиллированной водой (без мишени). Значение Ct должно составлять 50, так как осуществляют 50 циклов PCR.

Второй тип отрицательного контроля представляет собой отрицательный контроль экстракции, который создают с момента стадии экстракции. Обычно он образован 200 мкл физиологического раствора и получен параллельно с серией экстракций (обычно 1 на 10). Значение Ct также должно составлять 50.

- Имеются два типа положительных "контролей":

Стандарт, который образован очищенным и титрованным раствором аденовируса (5·10 ⁵ pfu), экстрагирован параллельно с серией анализируемых образцов. Экстракт нуклеиновых кислот разводили (обычно последовательные разведения в 10 раз) для получения различных точек для стандарта с целью построения стандартной кривой (чертеж).

Вторым типом положительных контролей является калибровочный маркер. Существуют различные типы калибровочных маркеров в зависимости от типа диагностируемых образцов. Он образован 200 мкл наиболее близкой к образцу среды и известным количеством аденовируса, находящимся в среде серии стандарта (обычно 5·10³ pfu). Средами, используемыми для получения калибровочных маркеров, являются физиологический раствор для орофарингеальных лаважей, "пул" плазмы от 200 здоровых доноров для плазм, моча здоровых субъектов для мочи и свежая культуральная среда для культуральных супернатантов. Эти калибровочные маркеры подтверждают правильность способа экстракции. Получаемая путем количественного определения величина по отношению к теоретически ожидаемой величине путем простого тройного правила позволит исправить конечное количественное определение, получаемое с тестируемыми образцами.

Устройство и количественное определение

Все реакции PCR проводили при использовании устройства ABI Prism 7700 (Perkin Elmer Applied Biosystem), которое детектирует сигнал с помощью флуоресцентного зонда (зонд TaqMan) во время циклов PCR.

Система 7700 представляет собой термоблок для проведения реакций, где каждая лунка (n=96) связана с оптическим волокном, которое, в свою очередь, связано с лазером. Камера CDD собирает эмиссии флуоресценции приблизительно каждые 6 секунд для каждой лунки. При использовании пакета программ S.D.S. (Sequence Detector System) анализируют данные флуоресценции и определяют число копий мишени в образце.

Количественное определение базировано на принципе PCR в реальное время ("real-time PCR"). В самом деле, продукт PCR характеризуют в момент цикла PCR, где амплификация определяется по деградации зонда, связанной с аккумуляцией продуктов PCR. Чем выше число первоначальных копий мишени, тем меньше нужно циклов PCR для детекции значительного повышения флуоресценции.

Число копий мишени образца определяли количественно путем измерения величины Ct и использования стандартной кривой (чертеж). Теоретически, если PCR протекает на 100%, нужно 3,22 цикла PCR (Ct) для десятикратного увеличения числа мишеней. Обычно фактор 10 числа мишеней дает различие величин Ct от 3,4 до 3,6.

Второй параметр (Rn) является важным для контроля подтверждения положительности сигнала PCR. Rn представляет собой разницу детектируемой флуоресценции между измеряемой флуоресценцией фонового шума (обычно измеряют между циклом 3 и циклом 15 PCR на всей совокупности планшета) и детектируемой флуоресценцией анализируемого образца.

ПРИМЕРЫ

Пример 1

Детекция аденовируса, происходящего из образца мочи

1.1. Приготовление образца тестируемой мочи

Все реагенты, используемые для этого приготовления, происходят из набора, называемого "Набор для выделения РНК высокой степени чистоты" ("High Pure RNA Isolation Kit") и выпускаемого фирмой Boehringer/Roche.

Для приготовления этого образца следует поступать согласно нижеприводимой методике:

К 200 мкл мочи, предварительно нагретым в течение 10 минут при температуре 37°С, так же как к каждому из контролей (объемом по 200 мкл), добавить 400 мкл буфера для лизиса.

Немедленно интенсивно перемешать. Инкубировать в течение 15 минут при комнатной температуре.

Каждую колонку поместить в пробирку емкостью 2,0 мл и все количество препарата внести в центр колонки. Центрифугировать в течение 1 минуты со скоростью 8000 оборотов в минуту (Эппендорф, 5417R) при температуре 20°С.

Поместить колонку во вторую пробирку емкостью 2,0 мл.

Добавить 500 мкл буфера для промывки I и центрифугировать в течение 1 минуты со скоростью 8000 оборотов в минуту (Эппендорф, 5417R) при температуре 20°С.

Поместить колонку в третью пробирку емкостью 2,0 мл.

Добавить 500. мкл буфера для промывки II и центрифугировать в течение 1 минуты со скоростью 8000 оборотов в минуту (Эппендорф, 5417R) при температуре 20°С.

Поместить колонку в четвертую пробирку емкостью 2,0 мл.

Добавить 200 мкл буфера для промывки II и центрифугировать в течение 3 минут со скоростью 14000 оборотов в минуту (Эппендорф, 5417R) при температуре 20°С.

Поместить колонку в пробирку Эппендорфа емкостью 1/5 мл (пятая пробирка) и идентифицировать пробирку Эппендорфа, в которой будет собираться конечный элюат экстракции нуклеиновых кислот.

Добавить 50 мкл предварительно нагретой дистиллированной воды.

Инкубировать в течение 3 минут при температуре 70°С (сухая баня).

Центрифугировать в течение 1 минуты со скоростью 8000 оборотов в минуту (Эппендорф, 5417R) при температуре 20°С.

Экстракты нуклеиновых кислот хранили при температуре 4°С вплоть до стадии PCR.

"Контроли" и "стандарт" приготовляли, как описано выше (раздел "Материал и методы").

Для приготовления других типов образцов следует обратиться к таблице, поясняющей оптимизированные способы экстракции для детекции аденовирусов, происходящих из различных типов образцов, в том числе образца согласно настоящему примеру.

1.2. Условия детекции по методу PCR гексона согласно изобретению

Концентрации совокупности реагентов, используемых в реакциях амплификации, в частности концентрации смыслового праймера "HEXl", антисмыслового праймера "HEX2'', зонда "HEX" и MgCl₂ и других реагентов набора реагентов TaqMan PCR Core (Perkin-Elmer Applied Biosystems), представлены в таблице 2.

1.3. Результаты

Стандартная кривая для способа детекции с использованием PCR согласно изобретению представлена на чертеже.

Пример 2

Специфичность способа согласно изобретению

Одним из применений метода PCR гексона согласно изобретению является детектирование аденовирусов в культуральных супернатантах.

Согласно способам уровня техники, присутствие аденовируса в клеточной (пермиссивной) культуре классически визуализировали по цитопатическому эффекту в клеточном слое. Для доказательства того, что этот цитопатический эффект вызван аденовирусом, детектируют специфический антиген аденовируса (путем ELISA, например, номер по каталогу К6021, фирма Dako Diagnostic LTD, Denmark House, Англия).

Экстракты нуклеиновых кислот, происходящих из основных клеточных линий (Нер2, MRC5, 293 и А549, описанных выше в разделе "Материал и методы"), используемых для клеточной диагностики человеческих аденовирусов, тестировали для подтверждения отрицательности в случае PCR гексона согласно настоящему изобретению. Все оцененные экстракты ДНК оказались отрицательными, что свидетельствует о специфичности детекции.

Для метода PCR гексона согласно изобретению очень важно показать "универсальный" характер детекции с различными серотипами человеческих аденовирусов.

Были оценены 17 различных серотипов (таблица 3), представлены все подгруппы (A, B1, B2, С, D, Е, F).

Коллекция из 17 серотипов была тестирована при использовании двух клеточных линий MRC5 (номер по каталогу 84002, bioMerieux, Франция) и А549 (АТСС: CCL 185), дающих похожие результаты. Результаты, полученные при использовании А549, представлены в таблице 3. Можно видеть, что величины Ct являются схожими, кроме таковых для серотипов 12, 18 и 40. Эти три серотипа соответствуют аденовирусам с самыми незначительными титрами. Однако это большое различие Ct главным образом возникает вследствие выбора праймеров и зонда TaqMan согласно настоящему изобретению. В самом деле, Ad12 имеет две межконъюгации для смыслового праймера НЕХ1 согласно изобретению и одну межконъюгацию для зонда HEX согласно изобретению. Точно также, Ad40 имеет одну деконъюгацию для антисмыслового праймера НЕХ2 согласно изобретению и одну деконъюгацию для зонда HEX согласно изобретению. Последовательности гена гексона для серотипа 18 нет. Возможно, что эти результаты, полученные с Ad18, также возникают вследствие межконъюгаций.

Нужно заметить, что несмотря на эти деконъюгации (две или три) нуклеотидных последовательностей, культуральные супернатанты остаются в высокой степени положительными.

Эти результаты хорошо подтверждают "универсальный" характер PCR гексона, если считать, что 17 тестированных серотипов являются репрезентативными из совокупности 51 известного серотипа.

Пример 3

Чувствительность способа согласно изобретению

3.1. Оценка порога детекции по числу частиц

В таблице 3 представлены результаты для 17 серотипов аденовирусов с величинами Ct, полученными в зависимости от числа частиц на мл, при определении по методу высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). За исключением трех серотипов с незначительными титрами (Ad12, Ad18 и Ad40), величины Ct находятся в пределах от 8,1 до 9,1 для числа частиц 1,1-8,5·10¹⁰/мл.

Если считать, что величина Ct для предела положительности составляет примерно 40 и принять разницу 3,5 Ct за фактор 10 числа мишеней, то это означает возможное отклонение величины Ct на 31 единицу. Это отклонение означает примерно 9 логарифмов по основанию 10. Следовательно, в зависимости от серотипов порог детекции может быть оценен в 10-80 частиц путем реакции PCR.

3.2. Баланс 101 серии стандарта

За 18 месядев была тестирована 101 серия стандартов с помощью 101 независимой экстракции стандарта, содержащего 5·10⁵ pfu Ad5CMVp53 в 200 мкл. Конечный элюируемый объем составляет 50 мкл. 10 мкл экстракта этого стандарта с серией последовательных разведении в 10 раз (чистый, 10 ^-1, 10^-2, 10^-3, 10^-4, 10^-5) анализировали для создания, серии стандарта. Последнее тестированное разведение соответствует теоретически 1 pfu Ad5CMVp53 в пробирке для PCR. Все точки серии тестировали двукратно по PCR (Ct1 и Ct2, таблица 5).

Величины Ct, полученные во всех точках с содержанием 1 pfu Ad5CMVp53, представлены в таблице 5. Из 202 реакций PCR 8 реакций являются отрицательными (Ct=50), что означает только 4%. В огромном большинстве случаев количество 1 pfu Ad5CMVp53 является положительным в PCR гексона.

Эти результаты подтверждают хорошую чувствительность детекции. В зависимости от партий приготовления Ad5CMVp53 эквивалент 1 pfu соответствует 10-40 вирусным частицам ( мишень), что подтверждает порог детекции, оцененный с помощью коллекции аденовирусов дикого типа.

Пример 4

Кинетика культивирования аденовирусов

Два эксперимента показали, что можно следить за кинетикой размножения аденовирусов с помощью метода PCR гексона согласно изобретению. В этих двух экспериментах использовали либо Ad5 на линии MRC5, либо Ad2 на линии А549 (таблица 4). Полученные для двух экспериментов результаты были похожими.

Матрасы для культивирования клеток площадью 25 см ² инфицировали с помощью разведений аденовирусов, включающих от 10⁵ pfu до 1 pfu. Культуральную среду (5 мл) удаляли, клетки инфицировали с помощью различных концентраций вируса в объеме 2 мл в течение 2 часов (при температуре 37°С). По истечении двух часов среду заменяли. После инфекции во все дни (со дня 0 до дня 11) из матрасов для культивирования отбирали пробы: 250 мкл для теста ELISA (детектирование антигена гексона) и 200 мкл для детекции путем PCR согласно изобретению. В матрас для культивирования снова вводили 450 мкл свежей среды.

Появление цитопатического эффекта (ЕСР) (таблица 4) произошло между 4 днями для точки 10⁵ pfu и 8 днями для точки 10 pfu. Существует связь между инокулированным количеством вируса в матрасе для культивирования и сроком положительности. Порог положительности составляет 10 pfu на матрас для культивирования.

Появление ЕСР происходит одновременно с появлением антигена гексона (тест ELISA). Для каждого из изученных разведений положительность ELISA не предшествует таковой ЕСР.

В случае PCR гексона (таблица 4) величины Ct для отрицательных контролей (Т) слегка положительные (37,6-37,8). Этот результат может объясняться либо незначительным загрязнением аэрозолями в момент инокуляции матрасов для культивирования, либо незначительным загрязнением в момент экстракции. Первая гипотеза кажется более вероятной, так как в день 10 величины Ct вышли за пределы величины 31,2 (разница 6,5 Ct), что означает повышение на фактор 100 числа копий аденовирусов. Метод PCR гексона согласно изобретению показывает существование размножения вируса (значительное понижение Ct) в отсутствие ЕСР и детекции антигена гексона.

В зависимости от тестируемых разведений по методу PCR гексона согласно изобретению совершенно неожиданно выявляют 2-4 "волны" размножения вируса.

Эти результаты ясно показывают, что метод PCR гексона согласно изобретению становится положительным скорее, чем ЕСР или ELISA гексона. Так, метод PCR гексона согласно настоящему изобретению как минимум в 10 раз более чувствительный, чем классические тесты клеточной культуры (культивирование в течение 10 дней + тест ELISA).

Эти результаты, по меньшей мере неожиданные, получаемые с помощью метода PCR гексона, могут быть использованы, в частности, для быстрого и легкого узнавания времени вирусного цикла и степени его амплификации. Эти два последних параметра являются очень важными для оценки репликационных характеристик вируса.

Следовательно, метод PCR гексона согласно изобретению может способствовать преимущественно селекции векторов-"кандидатов" в целях биотехнологических применений, в частности в случае экспрессии и/или генной терапии.

Пример 5

Повторяемость и воспроизводимость способа согласно изобретению

Результаты 101 стандарта, оцененные по PCR гексона (таблица 5), позволяют одновременно определять повторяемость (повторение внутреннего содержания тестов) и воспроизводимость (повторение тестов через промежуток времени). Среднее из величин Ct для 1 pfu составляет 37,2±1,8. Эта степень вариации является относительно незначительной главным образом вследствие того, что она представляет собой результат вариации двух стадий: экстракции и PCR гексона.

В случае значений Ct для 10 pfu (не показаны), среднее составляет 33,7±1,7. Уровень вариации является очень похожим, так как полученные отклонения очень близки. Можно отметить, что разница Ct между двумя средними значениями, полученными с 1pfu и 10 pfu, составляет 3,5 Ct. Эта разница соответствует по существу отклонению на фактор 10 в числе мишеней.

Пример 6

Клинические образцы

Клинические образцы были тестированы с независимыми экстракциями и в различных сериях PCR гексона. Результаты PCR гексона (значения Ct) для 8 образцов плазмы и 20 образцов мочи представлены в таблице 6.

Обычно когда величины Ct ниже или равны 36, вариации Ct для одного и того же экстракта нуклеиновых кислот (Ct1 и Ct2) редко превышают величину 1 Ct (фактор 2 для количественного определения). Это на том основании, что все образцы с величинами Ct<36 рассматривают как поддающиеся количественному определению (статус "положительно квантифицируемый") и образцы с величинами Ct от 36 до 43 рассматривают как положительные, но не поддающиеся количественному определению (статус "положительно детектируемый").

Для образцов плазмы (таблица 6), в одном и том же экстракте нуклеиновых кислот редко встречается отклонение больше 1 Ct за исключением экстракта №1 плазмы №3289 и экстракта №3 плазмы №3579. В этом последнем случае величина 44,6 для Ct1 аберрантная. Разумеется, в различных экстрактах нуклеиновых кислот вариация Ct является более значительной, но редко превышает величину 2 Ct (фактор 4 для количественного определения).

Для образцов мочи (таблица 6), в одном и том же экстракте нуклеиновых кислот не встречается отклонение более 1 Ct за исключением тех случаев, когда величины Ct выше 36. В самом деле, для величин Ct выше 36 степень положительности довольно незначительная, что объясняет более высокую степень вариации.

В различных экстрактах нуклеиновых кислот вариация Ct также является более значительной, только редко превышающей величину 2 Ct между двумя различными экстрактами за исключением для образца мочи №2403, который имеет разницу 3 Ct (фактор 8 в количественном определении). Разумеется, некоторые образцы мочи (№2029, 2626, 3736, 3763, 3765 и 5399) имеют очень высокие величины Ct (обычно >40), свидетельствующие об очень незначительной положительности. В этих последних случаях понятно, что можно легко переходить от положительного сигнала к отрицательному сигналу (Ct=50).

В целом, результаты, полученные в случае клинических образцов по способу детекции путем PCR гексона согласно изобретению, показывают очень хорошую воспроизводимость (для величин Ct), когда положительность является довольно высокой (Ct36; статус "положительно-квантифицируемый"). Для величин Ct выше 36 и вплоть до 43 можно принимать во внимание, что мишень является хорошо представленной (положительной), но степень вариации слишком высокая для того, чтобы получить достоверную величину количественного определения.

Пример 7

Линейность количественного определения (квантификации)

Стандартную кривую обычно строят по 12 точкам от 1 pfu до 10⁵ pfu путем реакции PCR, тестируемым двукратно. Для каждого повторения кривые амплификации и величины цикла PCR являются в высшей степени воспроизводимыми (см. чертеж). Напротив, в конечной точке сигналы флуоресценции являются очень вариабельными (вплоть до фактора 10), откуда возникает стремление анализировать продукты PCR в момент появления сигнала (цикл PCR: Ct), а не в конечной точке, как в случае "классической" PCR.

Стандартная кривая, полученная по этим стандартным точкам, представлена на чертеже. Коэффициент корреляции 0,999 указывает на превосходную линейность. В огромном большинстве случаев этот коэффициент составляет от 0,98 до 1. Манипуляции, при которых используют более широкую серию стандарта (от 0,5 pfu до 10⁶ pfu), показали подобные коэффициенты корреляции (не представлены), подтверждающие, таким образом, данные поставщика, описывающие линейность количественного определения на величину более 6 логарифмов.

Величина "Y-прерывание" означает число циклов PCR, следующее из стандартной кривой для детекции одного pfu Ad5CMVp53. Согласно стандартным кривым, эта величина Ct составляет 35-39.

Величина наклона (slope) связана с выходом реакции PCR. Следует напомнить, что для PCR с выходом 100% эта величина должна составлять -3,22. В случае метода PCR гексона согласно изобретению величина наклона составляет от -3,4 до -3,9, что означает средний выход 90%.

Пример 8

Количественное определение в клинических образцах

Примеры количественного определения, достигаемого с помощью PCR гексона, в клинических образцах (таблица 7) селекционированы по двум основным критериям. Первым критерием является то, что образец анализировали путем двух полностью независимых экстракций с помощью последовательных PCR (см. таблицу 6). Вторым критерием является то, что результаты PCR имеют величины Ct ниже или равные 36, хорошо соответствующие статусу "поддающийся количественному определению" для образца.

Шесть клинических образцов отвечают этим двум критериям (таблица 7). Результаты количественного определения являются в высокой степени воспроизводимыми и степень вариации редко превышает фактор 2 для одного и того же образца (таблица 7). Особенно интересно отметить для образца мочи №2403, что разница 3 Ct (теоретически это означает фактор 8 для количественного определения) между двумя экстракциями практически не отражается на величинах количественного определения, получаемых путем PCR гексона. Этот пример подчеркивает интерес к параллельно экстрагируемым калибровочным маркерам, которые позволяют исправить количественное определение в зависимости от небольших колебаний в случае реакций PCR (слегка отличный порог детекции, слегка отличные условия экстракции...).

Таблица 2 Условия осуществления реакции
Реагенты												Объемы						Конечные концентрации
Тр PCR TaqMan 10X												5 мкл						IX
MgCl 2 25 мМ												10 мкл						5 мМ
DNTP (dA, dG, dC 2 мМ каждый, dUTP 4 мМ)												5 мкл						(dA, dG, dC 200 мМ каждый, dUTP 400 мкм)
Праймер НЕХ1 (50 пмоль/мкл)												0,3 мкл						300 мМ
Праймер НЕХ2 (50 пмоль/мкл)												0,3 мкл						300 мМ
Зонд HEX(10 пмоль/мкл)												0,75 мкл						150 мМ
AmpErase UNG (1 ЕД/мкл)												0,5 мкл						0,5 единица
AmpllTaq Gold (5 ЕД/мкл)												0,25 мкл						1,25 единица
Экстракт образца мочи												10 мкл
Н 2О												17,9 мкл						До общего объема 50 мкм
Таблица 3 Срок появления цитопатического эффекта (ЕСР) (дни), величина оптической плотности (DO) согласно ELISA (DO Elisa), величина Ct (PCR гексона) и титра согласно ВЭЖХ после инокуляции клеток А549 супернатантом клеток MRC5, собранным после инфекции с помощью аденовирусов дикого типа из коллекции.
Серотип		Группа			Срок ЕСР (дни)				DO Elisa							PCR гексона (Ct)						ВЭЖХ(частиц/мл)
1		С			3				1,385							8,5						1,2·1010
2		С			3				1,120							8,1						2,3·1010
3		B1			3				0,732							8,5						4,8·1010
4		E			3				1,222							9,0						3,9·1010
5		С			3				1,211							8,5						6,6·1010
6		С			3				1,428							8,1						6,6·1010
7		B1			3				1,344							9,0						4,4·1010
11		В2			3				1,648							8,5						3,8·1010
12		А			3				2,759							21,6						<109
13		D			3				2,343							8,1						4,6·1010
14		В2			3				0,992							8,4						1,1·1010
18		А			4				>3							19						2,3·109
20		D			3				1,229							9,15						8,5·10 10
21		В1			3				1,442							8,2						2,7·1010
34		В2			3				1,960							8,6						4,7·1010
36		D			3				2,759							8,3						2,9·1010
40		F			5				0,537							19,5						<109
ЕСР: цитопатический эффект Elisa +, если DO>0,171.
Таблица 4 Кинетика культивирования Ad2 на А549. Сроки появления ЕСР (дни), величина оптической плотности (DO) по ELISA и величины Ct PCR гексона
Число pfu/ма трас, DO и Ct	День 0 30/01			День 1 31/01		День 2 01/02		День 3 02/02			День 4 03/02			День 5 04/02			День 6 05/02	День 7 06/02			День 8 07/02			День 9 08/02	День 10 09/02		День 11 09/02
105	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			+			+			+	+
DO	0,072					0,103					>3						2,745
Ct1	31,91
Ct2	32,17
104	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			+/-			+			+	+
DO	0,071					0,187					0,655						>3
Ct1	35,24					31,65					22,06						14,77
Ct2	35,38					31,81					22,09						14,76
103	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			+/-			+			+	+			+			+
DO	0,073					0,134					0,116						>3				2,446
Ct1	37,21					40,96					25,77						15,74				14,62
Ct2	37,67					40,49					25,70						15,76				14,65
102	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			Отр.			Отр.			+	+			+			+
DO	Опр.					0,082					Опр.						1,107				>3
	не										не
	осущ.										осущ.
Ct1	39,44					39,39					28,84						19,59				14,91
Ct2	40,52					41,25					29,04						19,64				15,15
10	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			Отр.			Отр.			Отр.	Отр.			+			+	+		+
DO	Опр.					Опр.					0,086						0,101				1,716				>3
	не					не
	осущ.					осущ.
Ct1	42,52					38,44					37,97						25,41				18,08				14,98
Ct2	40,95					39,55					37,25						25,36				18,14				14,96
1	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			Отр.			Отр.			Отр.	Отр.			Отр.			Отр.	Отр.		Отр.
DO	Опр.										Опр.						0,081				0,091				0,310
	не										не
	осущ.										осущ.
Ct1	35,34										35,57						32,13								28,71
Ct2	35,19										35,45						31,88								28,75
Кон-ль	Отр.			Отр.		Отр.		Отр.			Отр.			Отр.			Отр.	Отр.			Отр.			Отр.	Отр.		Отр.
DO	0,073					0,082					Опр.						0,288				0,117				0,159
											не
											осущ.
Ct1	37,61																								31,25
Ct2	37,77																								31,25
первая строка: ЕСР=цитопатический эффект вторая строка: Elisa (Elisa +, если DO > 0/171) третья и четвертая строки: Ct1 и Ct2 PCR гексона
Таблица 5 Величины Ct, полученные с 1 pfu Ad5CMVp53 в реакции PCR (101 тест)
№ теста					№ серии в тесте								Ct1							Ct2
Р199812702					41								35,8							36,3
Р199814602					41								36,8							36,9
Р199814902					30								41,2							39,5
Р199815602					41								37,3							39,1
Р199817403					35								39,4							38,1
Р199817702					34								37,2							36,8
Р199818802					41								37,1							37,4
Р199819802					41								35,7							37,5
Р199820302					41								37,2							36,5
Р199820502					41								38,6							40,3
Р199821602					41								38,9							38,3
Р199822302					41								39,6							38,3
Р199823102					41								43,6							40
Р199823702					40								41,7							39,3
Р199824002					41								36,4							37,8
Р199824702					41								40,8							38,1
Р199825103					41								37,4							39,1
Р199826101					41								36,8							37
Р199826501					41								NEG3							39,8
Р199826801					41								36,6							37,1
Р199828201					41								40							40,8
Р199829302					41								36,4							36,9
Р199829601					41								36,2							36,8
Р199830301					41								40,9							NEG
Р199830701					41								39,9							39,4
Р199831001					41								36,8							37,3
Р199831401					41								NEG							40,5
Р199832101					39								39,4							40
Р199833501					41								44,4							39,6
Р199833801					41								37,9							38,8
Р199834201					41								NEG							NEG
Р199834901					41								38,2							38,2
Р199835101					41								38,1							38
Р199835601					41								38,5							40,7
Р199836301					41								41,1							NEG
Р199900501					41								38,5							38
Р199900801					41								37,8							37,7
Р199901401					41								39							40,3
Р199902201					41								39,9							38,4
Р199902901					41								37,5							37,7
Р199906101					41								38,6							37,2
Р199906301					41								37,9							37,2
Р199906401					41								41							41,3
Р199906901					34								37,9							38,2
Р199907001					40								37,5							37,3
Р199907101					41								37,2							38,6
Р199907701					41								37,8							36,9
Р199907801					41								39,3							41,2
Р199908201					41								36,8							37,4
Р199908301					41								38,7							38,1
Р199908401					41								37,9							38
Р199908901					41								NEG							NEG
Р199909101					41								37,6							36,8
Р199909801					41								39,2							38
Р199909901					41								37,5							38,1
Р199910401					41								39,2							38,5
Р199911101					41								35,5							35,5
Р199911701					41								37,9							36,4
Р199911801					33								34,5							35
Р199912501					41								36,3							36,4
Р199913101					41								36,8							37,1
Р199914601					41								35,4							36,2
Р199914801					41								35,4							35,2
Р199915401					40								38							NDb
Р199915501					39								37							36,2
Р199916001					41								36,2							35,7
Р199916101					41								35,7							36,5
Р199916201					25								36,3							35,4
Р199917301					41								37,1							36
Р199917501					41								37, 3							36,5
Р199918001					41								37,3							37,1
Р199918201					41								36,8							36,7
Р199919001					41								35,3							35,2
Р199919703					41								34,7							34,3
Р199920101					41								36,1							35
Р199920201					41								34							34,9
Р199920801					32								39,6							36
Р199921501					41								36,5							35,5
Р199922201					41								34,4							34,4
Р199922401					29								35,5							36,3
Р199924301					41								34,9							34,7
Р199924501					22								36,6							35,6
Р199925001					41								34,5							35
Р199925201					32								35,5							36,1
Р199925901					41								35,9							36,2
Р199926401					36								36,7							35,7
Р199926601					25								36,7							36,3
Р199927801					29								35,6							35,9
Р199927901					10								34,6							34
Р199928101					31								35,2							34,7
Р199928501					41								36,1							35,9
Р199929301					32								34,7							34,4
Р199929901					39								35,1							35,1
Р199930101					36								35,3							35,5
Р199932001					41								36,2							36,4
Р199932801					40								35,6							35,3
Р199933001					33								35,5							36,2
Р199933501					19								36							35,9
Р199934401					25								36,9							37
a: NEG: отрицательный, Ct=50 b: ND: определение не осуществлено
Таблица 6 Результаты PCR гексона при использовании двух коллекций клинических образцов (плазма и моча) с двумя или тремя независимыми экстракциями
№ серии			Тип образца				PCR гексона (Ct)
							Ext 1 a								Ext 2								Ext 3
							Ct1d			Ct2d					Ct1d				Ct2d				Ct1 d			Ct2d
1518			Плазма				35,37			35,29					37,28				37,46				NA13			NA
3289							38,31			36,76					36,95				37,57				NA			NA
3579							35,81			36,24					36,35				36,22				44,60			35,98
4823							36,00			35,74					35,07				35,25				NA			NA
5593							37,06			36,88					35,46				34,79				NA			NA
5686							36,87			37,92					35,68				36,12				NA			NA
5870							36,81			37,50					35,73				36,01				NA			NA
2025			Моча				33,72			33,32					33,60				33,03				NA			NA
2029							43,02			50,00					40,59				44,82				43,05			41,21
2041							39,00			40,46					38,24				39,30				NA			NA
2045							37,85			38,45					38,50				36,36				NA			NA
2049							35,75			34,75					35,74				34,66				36,08			36,14
2097							37,50			36,13					37,03				35,63				NA			NA
2384							37,40			35,80					34,58				34,55				NA			NA
2392							40,95			38,72					38,08				40,29				NA			NA
2397							38,27			36,08					36,02				36,36				NA			NA
2400							35,56			35,45					36,63				35,45				NA			NA
2403							32,62			32,04					29,36				29,41				NA			NA
2406							35,36			34,42					34,08				33,37				NA			NA
2626							50,00е			40,13					50,00				42,67				NA			NA
3277							38,38			38,22					39,52				41,02				NA			NA
3736							40,05			41,80					45,08				43,52				NA			NA
3763							38,48			40,63					50,00				43,68				NA			NA
3765							40,40			41,84					43,41				43,30				NA			NA
5399							50,00			41,29					43,29				43,73				NA			NA
5400							37,60			37,18					39,96				38,64				NA			NA
a: Ext: Экстракция. Цифра указывает число экстракций, осуществленных в случае одного и того же образца. b: NA: не применимо; с: Ct=50: PCR отрицательная. d: каждый экстракт тестирован в двух реакциях PCR; Ct1 для опыта 1 PCR и Ct2 для опыта 2 PCR.

Таблица 7 Количественное определение с помощью PCR гексона при использовании поддающихся количественному определению клинических образцов
№	Тип	Экстракция №1		Экстракция №2
серии	образца	Средняя величина Cta)'	Количественное определение (эквивалент pfu Аd5СМVр53/мл) b)	Средняя величина Ct a)	Количественное определение (эквивалент pfu Ad5CMVp53/мл)b)
4823	Плазма	35,87	1,1·102	35,16	1,8·102
2925	Моча	35,52	2,6,·103	33,31	2,8·10 3
2049		35,25	8,5·10 2	35,20	8,4·102
2400		35,50	6,5·102	36,04	7,4·102
2403		32,33	2,3·104	29,38	3,8·10 4
2406		34,89	5,1·10 3	33,72	2,2·10 3
а}: Средняя величина рассчитана из величин Ct, указанных в таблице 6. b): Используемый стандарт известен по числу pfu Ad5CMVp53. Это количественное определение относится к миллилитру исходных клинических образцов.