способ волнового воздействия на патогенные микроорганизмы, вирусы или опухолевые клетки в эксперименте

Формула изобретения

1. Способ волнового воздействия на патогенные микроорганизмы, вирусы или опухолевые клетки в эксперименте с помощью кристалла диода Ганна путем подачи питающего напряжения на рабочий объем этого кристалла при предварительном контакте с таким микроорганизмом, или вирусом, или опухолевыми клетками с последующим отключением кристалла и размещением его на биологически активные точки и зоны млекопитающего, отличающийся тем, что для предварительного контакта с кристаллом используют собственные колебания патогенного микроорганизма, или вируса, или опухолевой клетки в период их массовой гибели при воздействии на них ингибирующего фактора или собственные колебания аутохтонных микроорганизмов млекопитающего в период воздействия на него благоприятного стимулирующего фактора, обеспечивающего интенсивное развитие и размножение аутохтонных микроорганизмов в логарифмической фазе роста.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве ингибирующего фактора используют антибиотики, или стерилизующие агенты, или тепловое воздействие, или ультрафиолетовое или радиационное облучение.

3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве благоприятного стимулирующего фактора, обеспечивающего интенсивное развитие и размножение аутохтонных микроорганизмов в логарифмической фазе роста, используют бифидогенные, лактогенные ростовые факторы, витамины и микроэлементы.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к информационно-волновой медицине и медицинской технике и может быть использовано в физиотерапии, рефлексотерапии и биорезонансной терапии для регулирования функциональной деятельности биологических систем.

Известен способ лечения патологического состояния организма биологически активной жидкостью (БАЖ) с использованием химически и электрически нейтральной воды, подвергнутой воздействию электромагнитных полей (по специальной методике), путем нанесения лечебной информации индивидуально подобранных тестируемых объектов (В.Н.Сарчук. Руководство по электропунктурной диагностике и безмедикаментозному лечению БАЖ. - Алма-Ата, 1991. - с.27-37).

Однако данный способ недостаточно эффективен, в связи с тем, что БАЖ как носитель информации нестабилен и требует сложной технологии хранения и использования.

Известен способ лечения патологических состояний организма путем измерения биопотенциалов в биологически активных точках до и после снятия электромагнитных волновых характеристик с матрицы лечебных тестируемых объектов, последующего определения с помощью управляемого импульсного лазера частотно-волновых параметров меридиана психики с переносом информации на твердый носитель, который используется при его непрерывном контактном воздействии на меридиан психики (Патент Республики Казахстан № 332, опубл. 10.06.96).

Однако данный способ имеет низкую эффективность физиотерапии в процессе лечения вследствие низкой специфичности биоинформационного воздействия на организм.

Известен способ лечения патологических состояний организма, включающий электроакупунктурное тестирование гомеоаллопатических лекарственных препаратов, собственных колебаний организма пациента или их частотно-волновых аналогов с последующим переносом резонансной информации на носитель с возможностью изменения фазы колебаний под углом 180°. В качестве носителя используют кристалл диода Ганна. Перенос информации осуществляют путем подачи питающего напряжения при непосредственном контакте с препаратами с последующим его выключением. После этого диод Ганна размещают на биологически активные точки и зоны организма (Патент РФ № 2141304, МПК А 61 Н 39/00, опубл. 20.11.99).

Однако данный способ также имеет низкую эффективность физиотерапии в процессе лечения вследствие низкой специфичности биоинформационного воздействия на организм.

Наиболее близким техническим решением (прототипом) является способ биоинформационного воздействия на микроорганизмы, включающий запись лечебной волновой информации о собственных колебаниях микроорганизма и информацию о гомео- и аллопатических лекарственных препаратах на носитель, выполненный в виде кристалла диода Ганна, и последующее его размещение на биологически активные точки и зоны организма. Кристалл диода Ганна выполнен в виде структуры с разделенными рабочими объемами, а запись информации о каждом препарате осуществляют на соответствующий рабочий объем кристалла диода Ганна путем подачи питающего напряжения на рабочий объем при непосредственном контакте кристалла с препаратом и последующего его выключения (Патент РФ № 2155083, МПК А 61 N 5/00, опубл. 27.08.2000).

Однако данный способ также имеет низкую эффективность физиотерапии в процессе лечения вследствие низкой специфичности биоинформационного воздействия на организм.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является повышение специфичности биоинформационного воздействия на организм за счет использования в качестве лечебной волновой информации информацию, записанную на носитель, в процессе гибели патогенных микроорганизмов, или вирусов, или опухолевых клеток, или информацию, записанную на носитель в процессе интенсивного роста полезной аутохтонной микрофлоры организма.

Указанный технический результат достигается тем, что в способе биоинформационного воздействия на микроорганизмы, или вирусы, или опухолевые клетки организма, включающем запись лечебной волновой информации, содержащей информацию о собственных электромагнитных колебаниях микроорганизма, или вируса, или опухолевых клеток, а также волновую информацию от объекта, обладающего лечебными свойствами, на носитель, выполненный в виде кристалла диода Ганна, путем подачи питающего напряжения на рабочий объем кристалла диода при непосредственном его контакте с микроорганизмом, или вирусом, или опухолевыми клетками, или объектом, обладающим лечебными свойствами, с последующим его отключением, и размещение кристалла на биологически активные точки и зоны организма, согласно изобретению в качестве объекта, обладающего лечебными свойствами, используют собственные колебания патогенного микроорганизма, или вируса, или опухолевой клетки в период их гибели при воздействии на них ингибирующими факторами или собственные колебания аутохтонных микроорганизмов в период воздействия на них благоприятных стимулирующих факторов, обеспечивающих интенсивное развитие и размножение аутохтонных микроорганизмов в логарифмической фазе роста. В качестве неблагоприятного фактора, вызывающего гибель патогенного микроорганизма, или вируса, или опухолевых клеток, используют антибиотики, или стерилизующие агенты, или тепловое воздействие, или ультрафиолетовое, или радиационное облучение.

В качестве благоприятных стимулирующих факторов, обеспечивающих интенсивное развитие и размножение аутохтонных микроорганизмов в логарифмической фазе роста, являются бифидогенные, лактогенные, ростовые факторы, витамины и микроэлементы.

Время записи лечебной волновой информации от объекта, обладающего лечебными свойствами, на носитель составляет 10-40 минут.

Способ осуществляют следующим образом. Вначале проводят электроакупунктурную диагностику электрофизического состояния биологически активных точек организма пациента, например, аппаратом типа "Медео" до и после медикаментозного тестирования объектов, обладающих лечебными свойствами, и собственных колебаний организма.

Для осуществления способа используют переносной портативный аппарат с набором излучателей крайне высокой чистоты (КВЧ) в диапазоне частот (42,2-100,0) ГГц для КВЧ-терапии типа "Стелла" с набором носителей микроволновой резонасной информации (кристалл диода Ганна), разработанный изобретателем А.М. Кожемякиным и защищенный патентом РФ № 2141304, МПК А 61 Н 39/00, опубл. 20.11.99. Носитель содержит полимерную изолирующую оболочку, диод Ганна, выполненный в виде полупроводникового кристалла с металлическими контактами и проводниками для подачи напряжения.

Для применения устройства в лечебных целях производят запись на кристалл лечебной волновой информации, содержащей информацию о собственных колебаниях организма пациента, о собственных колебаниях микроорганизма, вируса или опухолевых клеток, а также информацию о собственных колебаниях этих объектов в период их гибели при воздействии на них ингибирующих факторов или информацию о собственных колебаниях аутохтонных микроорганизмов пациента в период воздействия на них благоприятных стимулирующих факторов, обеспечивающих интенсивное развитие и размножение аутохтонных микроорганизмов в логарифмической фазе роста. Устройство (носитель) помещают вблизи источника лечебной волновой информации, на диод Ганна через проводники подают питающее напряжение, указанное в его паспорте (3 вольта). Это приводит к изменению квантомеханических параметров кристаллической структуры диода и к излучению электромагнитной энергии в сверхвысокочастотном диапазоне. Излученная волна от диода поступает на объект, обладающий лечебными свойствами, модулируется его собственными колебаниями, переотражается и приходит на диод. При выключении питающего напряжения диода его кристаллическая структура возвращается в исходное квантомеханическое состояние, которое формируется под воздействием лечебной волновой информации, поступившей на кристалл с отраженной электромагнитной волной, и носитель информации (диод Ганна) готов к применению. Дальнейшая работа носителя информации основана на преобразовании энергии тепловых колебаний кристаллической решетки полупроводника и внешних полей в энергию низкоинтенсивного волнового излучения, где в качестве составляющей присутствуют лечебные колебания, причем работа устройства происходит без подачи внешнего питания. Для устранения излучения устройства с записанными параметрами необходимо подать на него питающее напряжение. Перезапись лечебной волновой информации можно проводить многократно.

Для лечения пациента кристалл диода Ганна помещают в биологически активные точки или зоны его организма, закрепляют носитель информации, например, пластырем, где оно оказывает длительное контактное лечебное воздействие на организм.

Ниже приведены примеры (1-5) приготовления носителей информации, обладающих лечебными свойствами, и экспериментальные исследования биоинформационного воздействия на биологические объекты.

Пример 1. Способ биоинформационного воздействия на вирус иммунодефицита человека

Экспериментальные исследования показывают, что этанол в концентрации 5%, 2,5% и 1,25% не оказывает токсического воздействия на клетки человека, в частности на клетки МТ-4, но значительно ингибируют инфекционную активность вируса иммунодефицита человека.

Исследования проводились на штамме ВИЧ-1 путем инкубации равных объемов нетоксичных конечных концентраций 5%-ного этанола (ингибирующий фактор) и исходной концентрации вируссодержащей суспензии ВИЧ-1 при комнатной температуре в течение не менее 30 минут. По истечении 10 минут рядом с исследуемыми (содержат этанол) и контрольными (не содержат этанола) образцами вируссодержащей жидкости размещают капсулы с носителями, выполненными в виде диода Ганна, подключенными к аппарату типа “Стелла”, и выдерживают в течение 10-20 минут.

Носители с записанной лечебной информацией в дальнейшем использовалась следующим образом. Готовились образцы ВИЧ-содержащей суспензии, часть из которых обрабатывались путем размещения рядом с ними капсул с носителями лечебной информацией о гибели ВИЧ-инфекции в течение 12-24 часов. Контрольные образцы с вируссодержащей суспензией не подвергались биоинформационному воздействию.

После этого готовят десятикратные разведения вируссодержащей суспензии исследуемых и контрольных образцов в питательной среде RPMI-1640 с добавлением 10% сыворотки плода коровы, 2 мМ L-глутамина, 100 мкг/мл канамицина, 160 мкг/мл гентамицина, вносят в пермессивную лимфобластоидную культуру клеток человека МТ-4, рассеянную в 96-луночные культуральные планшеты фирмы "Costar" в объеме 200 мкл с концентрацией клеток 1 млн/мл. Клеточную суспензию инкубируют при температуре 37 градусов С, во влажной атмосфере (95%) с 5% СО₂ и проводят титрование инфекционности ВИЧ-1 на культуре перевиваемых лимфобластоидных клеток человека МТ-4. Наблюдение проводят ежедневно путем микроскопии лунок планшета под инвертированным микроскопом "Diavert" с регистрацией процесса кластерообразования, жизнеспособности клеток и приготовлением мазков клеток на предметном обезжиренном стекле с целью определения количества инфицированных клеток МТ-4 в реакции непрямой иммунофлуоресценции (НИФ). Мазки клеток после высушивания фиксируют в растворе охлажденного до минус 20 градусов С ацетона в течение 12 ч. Затем их обрабатывают рабочими разведениями сывороток, содержащих специфические антитела к ВИЧ-1 (1:100) и контрольных в течение 30 мин во влажной камере при температуре 37 градусов С. После чего их трижды отмывают в физиологическом растворе и окрашивают кроличьими антителами против иммуноглобулинов человека, меченными ФИТЦ, в разведении 1:32 в течение 20 мин во влажной камере при температуре 37 градусов С. На заключительном этапе мазки дважды промывают забуференным физиологическим раствором и ополаскивают дистиллированной водой, после чего проводят их микроскопию на флуоресцентном микроскопе "Axioskop" фирмы Opton (Германия), определяя процент инфицированных ВИЧ-1 клеток МТ-4 и интенсивность флуоресцентного свечения инфицированных клеток.

При 12-24 часовой биоинформационной обработке образцов ВИЧ-содержащей суспензии клеток МТ-4 лечебной информацией о гибели вируса, записанной на носитель, происходит значительное изменение инфицирующих свойств вируса, поскольку кластерообразование инфицированных клеток МТ-4 сохранялось во всех исследованных разведениях вируса на уровне неинфицированного контроля клеток. В используемых дозах лечебной информации полностью ингибирует инфекционность ВИЧ-1 на 2 lg. При этом значительно снижается интенсивность флуоресцентного свечения инфицированных клеток МТ-4, а следовательно, и степень репродукции вируса иммунодефицита человека 1-го типа в них. В контрольных образцах инфекционная активность ВИЧ-1 сохранилась.

Пример 2. Способ биоинформационного воздействия на опухолевые клетки аденокарциномы Эрлиха

Для проведения эксперимента подготавливают пробирки с образцами суспензии клеток перевивной опухоли аденокарциномы Эрлиха в количестве 20 мл в каждой. Часть образцов размещают в термостате с температурой 42,5°С (ингибирующий фактор) и выдерживают при указанной температуре в течение 50 минут. Через 15 минут после начала эксперимента в пробирки помещают капсулы с носителями, выполненными в виде диода Ганна, подключенными к аппарату типа “Стелла”, на которые производится запись информации о гибели опухолевых клеток. По истечении 50 минут пробирки вынимают из термостата. Далее рядом с частью пробирок с суспензией опухолевых клеток, которые не подвергались температурной обработке, размещают капсулы с записанной лечебной информацией о гибели клеток перевивной опухоли аденокарциномы Эрлиха и выдерживают их в течение 24 часов.

Далее эксперименты проводят на белых беспородных мышах ICR, самцах массой 25-30 г, которым проводят трансплантацию подкожно в область подмышечной впадины в дозе 105 опухолевых клеток на животное: одной группе вводили контрольную необработанную суспензию опухолевых клеток; второй группе - суспензию опухолевых клеток, обработанную при температуре 42,5°С, и третьей группе мышей - суспензию опухолевых клеток, подвергшихся биоинформационному воздействию в течение 24 часов. Через несколько дней в первой группе мышей наблюдался выраженный рост опухолевой ткани, а во второй и третьей группе в течение 10 дней наблюдения образования и роста опухолевой ткани не обнаружено.

Далее брали первую группу мышей с ярко выраженной аденокарциномой Эрлиха и к каждой мыши ежедневно в течение недели фиксировали на область опухоли капсулу с носителем лечебной информацией о гибели опухолевых клеток. После 7-дневного биоинформационного воздействия у 100% мышей наблюдалось выраженное торможение роста опухолевого узла.

Пример 3. Способ биоинформационного воздействия на вегетативные формы бактерий

Для получения вегетативной формы бактерий берут несколько образцов по 1 г сухого препарата Bacillus subtilis типа “Бактисубтил” в споровой форме, каждый растворяют в 10 мл физраствора при температуре 85°С и выдерживают при такой температуре в течение 30 минут. При этом споровая форма бактерий переходит в вегетативную. Затем по 1 мл суспензии бактерий помещают в чашки Петри на поверхность агара с мясопептонным бульоном и инкубируют в течение 36 часов в термостате при температуре 37°С. Затем петлей эти бактерии в вегетативной форме переносят в несколько пробирок с мясопептонным бульоном, куда вводят по 2 мл раствора пенициллина с активностью 1000000 ЕД (ингибирующий фактор), перемешивают и помещают в термостат при температуре 37°С. Через 10 минут в пробирки с бактериями вводят стерильный набор капсул с носителями, выполненными в виде диода Ганна, подключенными к аппарату типа “Стелла”, на которые производится запись лечебной информации о гибели бактерий в вегетативной форме. Капсулы с информацией вынимают из пробирок через 10-20 минут.

Для экспериментальной проверки биоинформационного воздействия носителя на бактериальные вегетативные клетки формируют контрольные и исследуемые образцы. Для этого берут по 1 мл суспензии бактерий Bacillus subtilis в вегетативной форме и помещают в чашки Петри на поверхность агара с мясопептонным бульоном и инкубируют в течение 36 часов в термостате при температуре 37°С. При этом рядом с исследуемыми образцами размещают капсулы с носителями информации о гибели бактерий в вегетативной форме. Анализ образцов после инкубации показывает, что в контрольных образцах наблюдается активный рост колоний бактерий, а в исследуемых - задержка их роста.

Пример 4. Способ биоинформационного воздействия на споровые формы бактерий

Берут несколько образцов по 1 г сухого препарата Bacillus subtilis типа “Бактисубтил” в споровой форме, каждый растворяют в 10 мл 1%-ного раствора формалина при температуре 70-85°С и выдерживают при такой температуре в течение 50 минут. Через 20 минут после начала эксперимента рядом с образцами размещают или вводят в пробирки с бактериями стерильные капсулы с носителями, выполненными в виде диода Ганна, подключенными к аппарату типа “Стелла”, на которые производится запись лечебной информации о гибели бактерий в споровой форме. Капсулы с информацией вынимают последовательно из пробирок через 15-30 минут.

Далее берут пробирки со спорами по 1 г сухого препарата Bacillus subtilis. Часть из них оставляют как контрольные, а в остальные размещают капсулы с носителями информации о гибели бактерий в споровой форме и выдерживают их в течение 12-24 часов при комнатной температуре. Затем в пробирки с контрольными и исследуемыми образцами вводят по 10 мл физраствора с температурой 85°С и выдерживают при такой температуре в течение 30 минут. При этом споровая форма бактерий переходит в вегетативную. Затем по 1 мл суспензии бактерий из каждой пробирки помещают в чашки Петри на поверхность агара с мясопептонным бульоном и инкубируют в течение 36 часов в термостате при температуре 37°С.

Анализ образцов после инкубации показывает, что в контрольных образцах наблюдается активный рост колоний бактерий, а в исследуемых - задержка их роста.

Пример 5. Способ биоинформационного воздействия на аутохтонную микрофлору организма млекопитающих

Вначале отбирают пробы фекалий от группы лабораторных кроликов, участвующих в эксперименте. Исследуемый материал титруют стерильным физиологическим раствором, делая последовательно десятикратные разведения до 108. Из различных разведении указанный материал засевают на питательные среды Блаурокка, Сабура, Эндо, Калины, МРС-4, кровяной агар с полимиксином для определения исходных уровней кишечных палочек, лактобактерий, бифидобактерий, энтерококков, стафилококков и других бактерий с последующей идентификацией и отбором аутоштаммов нормальной кишечной микрофлоры, содержащей бифидо- и лактобактерий, кишечные палочки, молочнокислые стрептококки, молочнокислые палочки. Через двое суток материал, например, из изолированных колоний лактобактерий, выросших на среде МРС-4, из изолированных колоний бифидобактерий, выросших на среде Блаурокка, из изолированных колоний энтерококков, например Streptococcus faecium, выросших на среде Калина, из изолированных колоний Escherichia coli (кишечная палочка), выросшей на кровяном агаре с полимиксином, вновь пересевают на соответствующие селективные питательные среды. Выросшие через двое суток после второго пассажа изолированные колонии бифидо- и лактобактерий, энтерококков, кишечных палочек пересевают (раздельно) соответственно на вышеуказанные питательные среды Блаурокка, МРС-4, Калина, кровяной агар с полимиксином и культивируют по стандартным методикам для получения биомассы микроорганизмов. Например, биомасса бифидобактерий имеет титр не менее 109 кл/мл, биомасса лактобактерий - 109-1010 кл/мл, биомасса Escherichia coli - не менее 107-108кл/мл, а биомасса Streptococcus faecium - не менее 109 кл/мл. Далее биомассу каждого вида аутохтонных штаммов микроорганизмов вводят в равных соотношениях в реактор и перемешивают для получения смеси бактерий. В полученную смесь вводят дифференцированную питательную среду на основе, например, кукурузного гидролизата с добавлением стимулирующих бифидогенных, лактогенных и ростовых факторов: инулин, селенит натрия, витамины, аминокислоты и культивируют биомассу при температуре 37°С до логарифмической фазы роста (не более 4-5 часов). Далее в реактор вводят стерильный набор капсул с с носителями, выполненными в виде диода Ганна, подключенными к аппарату типа “Стелла”, на которые производится запись информации об интенсивном росте и развитии аутохтонной микрофлоры. Капсулы выдерживают в течение 15-30 минут, отключают от аппарата “Стелла” и вынимают из реактора.

Далее кроликам вводят антибиотики в течение 10 дней до получения выраженного дисбактериоза. Далее кроликов делят на три группы. Первая группа является контрольной, которой дают только пищу. Второй группе проводят лечение такими пробиотиками, как бифидобактерин и колибактерин, которые вводят в корм животным, в течение 10 дней. Третьей группе животных прикрепляют в область желудочно-кишечного тракта (в разные его отделы) капсулы с носителями биоинформации об интенсивном росте и развитии их аутохтонной микрофлоры, которые не снимают в течение 7 дней.

Таблица 1 Бактериологические исследования кишечной микрофлоры кроликов после лечения
Название микроорганизмов	Количество микробов в 1 г фекалий мышей
	1-ая группа (контрольная)	2-я группа кроликов после лечения пробиотиками	3-я группа кроликов после биоинформационного воздействия
1. Lactobacillus	105	108	108-1010
2. Bifidobacterium	10 5	10 9	108-10 10
3. Bacteroides	105-106	106-108	108-1010
4. Escherichia (lac+ )	105-10 6	105-10 8	109
5. Escherichia (Lac- )	105-10 6	105-10 6	-
6. Escherichia (слабофер.)	10 5-106	10 5-106	-
7.Escherichia(гемол.)	105-106	105-107	-
8. Enterococcus	105	10 5-lO7	10 5-109
9. Staphlococcus	105 -106	-	-
10. Proteus	105-106	-	-
11. Clostridium	105-10 6	102	-
12. Грибы Candida	105-108	103-104	-

Бактериологические исследования фекалиев трех групп кроликов проводилось в соответствии с методическими указаниями "Дисбактериоз кишечника и методы его лабораторной диагностики", которые показали, что в результате лечения пробиотиками и биоинформационного воздействия на микрофлору животных произошло не только значительное снижение уровня патогенной и условно-патогенной микрофлоры, но и увеличение бифидо- и лактобактерий почти в равной степени с 105 до 108-1010 микробных тел в 1 г фекалий (табл.1), вытеснение некоторых условно-патогенных микроорганизмов.

Таким образом, предлагаемое изобретение может быть использовано для лечения патологических состояний организма, вызванных различными патогенными микроорганизмами, вирусами, а также проводить профилактику и лечение онкологических заболеваний и дисбактериоза с высокой специфичностью без применения лекарственных средств или значительно снизить их дозы и побочное действие.