средство, обладающее антигипоксической и антиоксидантной активностью
| Классы МПК: | A61K38/05 дипептиды A61P39/06 поглотители свободных радикалов или антиоксиданты |
| Автор(ы): | Болдырев А.А., Никаноров В.А., Хребтова С.Б., Булыгина Е.Р., Крамаренко Г.Г., Лейнсоо Т.А., Сорокина Е.В., Стволинский С.Л., Тюлина О.В., Федорова Т.Н., Юнева М.О. |
| Патентообладатель(и): | Некоммерческое партнерство "АСГЛ-Исследовательские лаборатории" |
| Приоритеты: |
подача заявки:
2001-04-26 публикация патента:
27.10.2002 |
Изобретение относится к медицине. Предложено применение метилового и этилового эфиров карнозина или их солей в качестве антиоксидантного и антигипоксического средства. Средство повышает окислительную устойчивость биологических структур. 5 табл., 3 ил.
Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8
Формула изобретения
Применение метилового и этилового эфиров карнозина или их солей в качестве антиоксидантного и антигипоксического средства.Описание изобретения к патенту
Изобретение относится к медицине, а именно к средствам, обладающим антигипоксической и антиоксидантной активностью и являющимся производными L-карнозина. Известны некоторые производные b-аланил-L-гистидина (L-карнозина). Описан его метиловый метиловый эфир (Pietta P.G., Chersi A., Gazz. Chim. Ital. , v. 98, 12, pp. 1503-1510, Yamashita S., Ishikawa N., Experientia, v. 24, 10, pp. 1079-1080, 1968), получены различные производные L-карнозина и его сложные эфиры и их соли, в том числе метиловый и этиловый эфиры (патент Испании ES 496892, кл. Cl C 07 C 103/52, 1981). Антигипоксическая и антиоксидантная активность метилового и этилового эфиров и их солей не описана. L-карнозин является природным нейропептидом, который проявляет разнообразную биологическую активность. Показана его высокая эффективность по защите нейронов как в условиях in vitro (индивидуальные реакции повреждения макромолекул, суспензии изолированных нейронов или срезов мозга в условиях свободнорадикальной атаки), так и in vivo - на различных моделях экспериментальной ишемии мозга и сердца, гипобарической гипоксии (Болдырев А.А. Карнозин. Биологическое значение и возможности применения в медицине - М.: Изд-во МГУ, 1998, 320 стр.). Установлено, кроме того, что карнозин является важным природным фактором системы антиоксидантной защиты мозга в условиях окислительного стресса (Болдырев А.А. Карнозин и защита тканей от окислительного стресса - М.: Изд-во "Диалог - МГУ", 1999, 362 стр.). Однако, одновременно было обнаружено, что L-карнозин, как природное активно метаболизирующее соединение, имеет ограниченное время жизни в организме, подвергаясь расщеплению специфическим ферментом карнозиназой. Через 15 мин после внутрибрюшинного введения крысам его содержание в крови достигает максимума, после чего сразу начинает снижаться, возвращаясь к исходному низкому уровню через 30 мин после введения. Мозг и печень характеризуются схожей кинетикой накопления карнозина, хотя время достижения максимума сдвинуто к 30 мин, а убыли до исходного уровня - к 45-60 мин (Гуляева Н.В., Обидин А. Б., Левшина И.П. и соавт. // Бюл. эксп. биол. мед. 1989. Т. 107. 2.С. 144-147). При внутрижелудочном введении крысам (однократно в виде водного раствора через зонд в дозе 500 мг/кг веса тела) максимальный уровень карнозина в крови наблюдался через 1 час, к исходу суток препарат в крови не обнаруживался (по данным ВЭЖХ). В то же время динамика изменения содержания в крови гистидина - одного из продуктов гидролиза карнозина - указывает на то, что в интервале от 30 мин до 3 ч после внутрижелудочного введения карнозина этот дипептид активно гидролизуется карнозиназой (фиг.1). Задача изобретения - создать эффективное антигипоксическое и антиоксидантное средство с пролонгированным действием, расширить ассортимент таких средств. Задача изобретения реализуется применением сложных эфиров карнозина или их солей в качестве антигипоксического и антиоксидантного средства. Изобретение иллюстрируется графическими материалами:Фиг.1 - фармакокинетика карнозина в крови крыс при однократном внутрижелудочном введении его водного раствора в дозе 500 мг/кг веса (n=5). Фиг. 2 - зависимость степени ингибирования восстановления НСТ от концентрации исследуемых веществ. Фиг. 3 - влияние карнозина и его эфиров на интенсивность окислительного гемолиза, индуцированного 0,5 мМ NaOCl. и следующими примерами:
Пример 1. Ферментативный гидролиз карнозина и его эфиров. Устойчивость исследуемых соединений к действию карнозиназы сыворотки донорской крови исследовали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Скорость накопления гистидина оценивали в ходе ферментативного гидролиза карнозина и его производных. Сыворотку получали из негемолизированной крови пациентов. Активность карнозиназы измеряли в соответствии с Lenney et al. (Lenney, R.P. George, A.M. Weiss, C.M. Kucera, P.W.H. Chan, G.S. Rinzler. // Clin. Chim. Acta. 1982. V. 123. P. 221-231. Roth M. // Analyt. Chem. 1971. V. 43. Р. 880-882). ВЭЖХ дипептидов и гистидина проводили на хроматографе "Altex"-334 с колонкой фирмы "Serva", использовали флуоресцентный детектор "Schoeffel GM970" (
возб 340 нм,
флуор 455 нм). Полученные результаты представлены в таблице 1. Как показало проведенное сравнение, исследуемые производные карнозина - его синтетические этиловый и метиловый эфиры, в отличие от него самого, практически не подвергаются гидролизу карнозиназой. Пример 2. Ингибирование хемилюминесценции липопротеинов сыворотки крови человека карнозином и его эстерифицированными производными. Исследование антиоксидантной активности карнозина и его этилового и метилового эфиров проводили в сопоставлении с аналогичным действием препарата кавинтон, обладающим сосудорасширяющим действием. Для этого измеряли хемилюминесценцию (ХЛ) атерогенных липопротеинов (суммарная фракция липопротеинов низкой и очень низкой плотности) сыворотки крови человека, вызываемую процессом перекисного окисления липидов. Исследованные соединения (за исключением кавинтона) сами по себе не влияли на спонтанное свечение. В то же время, при индукции ХЛ ионами железа такие параметры окисления липопротеинов, как начальная вспышка (h) и длительность латентного периода до развития основной вспышки ХЛ (
), претерпевали в присутствии исследуемых соединений изменения, характеризующие их антиоксидантную активность. Результаты эксперимента представлены в таблице 2. Из таблицы видно, что как карнозин, так и его производные снижали дозозависимым способом величину h, характеризующую уровень предобразованных гидроперекисей. Эффективность их действия была примерно одинаковой. Увеличение карнозином длительности латентного периода ХЛ (
), характеризующего антиоксидантный статус сыворотки крови, было достоверно значимым и развивалось пропорционально повышению его концентрации - на 15, 90 и 190% при 0,5, 1 и 2,5 мМ соответственно. Метиловый эфир карнозина повышал длительность латентного периода ХЛ более чем вдвое при его концентрации в пробе, равной 2,5 мМ, хотя при концентрации 1 мМ он не оказывал статистически достоверного влияния на этот параметр. Этиловый эфир карнозина увеличивал длительность латентного периода ХЛ более эффективно (на 15, 65 и 194% при используемых концентрациях). В целом, этиловый эфир карнозина с наибольшей эффективностью подавлял индуцированную хемилюминесценцию, что указывает на его высокую антиоксидантную активность. Кавинтон не проявлял антиоксидантного действия, он вызывал дозозависимое увеличение h и полностью подавлял последующий ХЛ сигнал (H). Эти данные показывают, что карнозин и его эфиры защищают липопротеины крови от окисления, а кавинтон не проявляет этого действия, поскольку повышает величину h. Поскольку карнозин и его эстерифицированные производные значительно ингибируют развитие начальной вспышки ХЛ (h), можно сделать вывод об их способности нейтрализовать гидроперекиси липидов (Федорова Т.Н., Реброва О.Ю., Ларский Э.Г //Лаб. Дело. 1991. 3. С. 37-39). Удлинение латентного периода ХЛ (
), присущее карнозину, и в еще большей степени его эфирам, показывает, что эти соединения способны препятствовать индукции перекисного повреждения липопротеинов. Полученные данные свидетельствуют о том, что изучаемые вещества действуют на кинетические параметры ХЛ как ингибиторы свободнорадикальных реакций, препятствующие разветвлению цепной реакции перекисного окисления при введении инициатора реакции (ионов железа) в модельную систему, и тем самым тормозят окислительное повреждение липидов. Более того, подавление начальной вспышки ХЛ (h) указывает на их способность восстанавливать гидроперекиси, накапливающиеся в ходе окисления. Способность исследуемых веществ снижать уровень предобразованных продуктов окисления может оказаться особенно существенной, поскольку этот эффект может иметь определенное значение для их использования в медицинской практике. Приведенные результаты в целом указывают на способность карнозина и его эфиров повышать окислительную устойчивость биологических структур, что особенно важно в условиях гипоксии. Пример 3. Оценка супероксид перехватывающей активности карнозина и его метилового и этилового зфиров в присутствии ионов меди и цинка. Поскольку Сu, Zn - супероксид-дисмутаза (СОД) имеет в активном центре ионы меди и цинка, связанные координационными связями с остатками гистидина, можно полагать, что карнозин в присутствии этих ионов будет проявлять активность, подобную СОД. Существуют экспериментальные данные, подтверждающие, что комплексы карнозина с ионами меди и цинка могут обладать эффективной супероксид-перехватывающей активностью (СПА), которая играет существенную роль в антиоксидантном действии этого дипептида in vivo (Misra H.P., Fridovich J. // J. Biochem. 1972. V. 247. N 12. Р. 3170-3175. Гуляева Н.В. //Биохимия. 1987. Т. 52. Вып. 7. С. 40-46). Эксперименты проводили по стандартной методике, используя ферментную систему ксантин-ксантиноксидаза в качестве источника свободных радикалов (Misra H.P., Fridovich J. // J. Biochem. 1972. V. 247. N 12. Р. 3170-3175) и нитросиний тетразолий (НСТ) в качестве субстрата окислительно-восстановительной реакции. Исследовали СПА исследуемых соединений в фосфатном буфере (0,15 М, рН 7,8) в конечной концентрации 20, 40, 60 и 150 мкМ. На фиг.2 представлена зависимость СПА от концентрации исследуемых веществ. Было выяснено, что в концентрации 150 мкМ карнозин и его эстерифицированные производные после преинкубации с эквимолярными концентрациями меди и цинка практически полностью ингибируют восстановление НСТ, что свидетельствует о наличии выраженной СПА у исследуемых соединений. К0,5 для карнозина составляет 30 мкМ, а для этилового и метилового эфиров - 25 и 60 мкМ соответственно. Таким образом, эффективность СПА для этих комплексов значительно различается в области концентраций 20-60 мкМ. Высокая СПА отмечена у этилового эфира карнозина и более низкая - у карнозина и его метилового эфира. Пример 4. Исследование протекторного действия карнозина и его метилового и этилового эфиров на устойчивость эритроцитов к окислительному гемолизу. Измерение устойчивости эритроцитов к гемолитическому воздействию является информативным методом характеристики эритроцитов и может служить тест-системой для характеристики повреждающего действия, оказываемого на клетки окислителями и свободными радикалами. Мы использовали этот метод для оценки мембранопротекторной активности исследуемых соединений. В работе использовали кровь крыс (самцы 200-250 г), отобранную в день эксперимента из хвостовой вены и стабилизированную 0,38% цитратом натрия. Гемолитическую устойчивость эритроцитов измеряли по величине светопропускания суспензии эритроцитов с помощью фотоэлектроколориметра, гемолиз индуцировали добавлением гипохлорита натрия (конечная концентрация 0,5 мМ), рН суспензии эритроцитов подводили к 8,2 ед. (Reiter, J.M. Guerrero, J.J. Garcia, D. Acuna-Castroviejo // Ann. N. J. Acad. Sci. 1998. V. 854. P.410-424. Гительзон И.И., Терсков И.А. Эритрограммы как метод клинического исследования крови. Изд-во Сибирского отд. АН СССР, 1959). В присутствии карнозина и его эфиров в конечной концентрации 10 мМ окислительной гемолиз под действием 0,5 мМ гипохлорита натрия полностью подавлялся. Для сравнения эффективности исследуемых соединений как антигемолитиков мы исследовали их протекторное действие в концентрациях 0,15, 0,25 и 1 мМ. Исследуемые соединения растворяли в физиологическом растворе (0,9% раствор NaCl, рН растворов доводили до величины 8,2). В этих условиях гемолиз суспензии протекал медленно и был неполным. Для оценки антиоксидантного действия исследуемых соединений рассчитывали процент клеток, гемолизированных через 6 мин после добавления окислителя. Полученные результаты представлены на фиг.3. Из фиг.3 видно, что в этих условиях гемолиз суспензии протекал медленно и был неполным. Карнозин и его эфиры даже в концентрациях, в 2-3 раза меньших, чем концентрация гемолитика, оказывали протекторное действие на эритроциты в ходе их окислительного повреждения. В присутствии 0,15 и 0,25 мМ этих соединений полного гемолиза не наблюдалось даже в течение 20 мин. В концентрации 1 мМ эфиры карнозина препятствовали гемолизу более эффективно, чем карнозин. При уменьшении концентрации карнозина и его эфиров до 0,15 мМ их протекторное влияние все еще сохранялось, хотя эфиры были менее эффективны. Таким образом, полученные в экспериментах in vitro результаты указывают на высокую антиоксидантную активность этилового и метилового эфиров карнозина, превышающую аналогичные эффекты карнозина, при этом эффективность этилового эфира в целом была выше, чем у метилового. На экспериментальных животных были получены данные, указывающие на способность этилового и метилового эфиров карнозина обеспечивать антиоксидантную защиту организма и в условиях in vivo. Пример 5. Антигипоксическое действие эфиров карнозина в модели гипобарической гипоксии. В работе использовали самцов взрослых крыс линии Wistar весом 180-220 г. Моделирование гипобарической гипоксии осуществляли в барокамере. Эксперименты выполняли при разрежении атмосферы, которое вызывает гибель до 100% животных за 30 мин; для крыс этот показатель составляет 175 мм рт.ст. В первой серии экспериментов животных (n=8 в каждой группе) выдерживали в барокамере до момента остановки дыхания. Для большинства животных гибель носила обратимый характер при условии восстановлении нормального атмосферного давления. За 1 ч до начала "подъема на высоту" вводили исследуемые вещества в дозе 100 мг/кг или соответствующий объем физиологического раствора. Выбор дозы для карнозина и его эфиров был сделан на основе известных данных об эффективности карнозина в различных моделях in vivo (рентгеновское облучение, электроболевой шок, переохлаждение и др.) и данных о его малой токсичности (LD50 для лабораторных животных при внутрибрюшинном и пероральном введении по разным данным превышает 17 г/кг веса тела) (Boldyrev A.A., Formaziuk V.E., Sergienko V.I. // Sov. Sci. Rev. D: Physicochem. Biol. 1994. V. 13. P. 1-60). Регистрировали время реституции - время от прекращения гипоксии до момента восстановления активной позы (ВР). Полученные данные представлены в таблице 3. Полученные результаты демонстрируют значительное снижение времени реституции у животных, которым до начала гипоксии были введены исследуемые соединения. Более выраженный эффект наблюдается при введении животным этилового и метилового эфиров карнозина (время реституции составляет 18 и 37% от контрольного соответственно, у карнозина - 56%), при этом минимальным временем реституции характеризовались животные, получавшие перед гипоксическим воздействием этиловый эфир карнозина. Во 2 серии экспериментов крыс выдерживали при давлении 175 мм рт.ст. в камере 15 мин. Регистрировали количество погибших животных в соответствующих группах, количество животных, демонстрировавших в барокамере судорожную активность, и, используя условную систему баллов (табл. 4), оценивали физиологическое состояние выживших животных. За 1 ч до начала "подъема на высоту" крысам вводили в 0,9-1,1 мл физиологического раствора (в зависимости от веса животного) исследуемые вещества: карнозин и его этиловый эфир в стабилизированной сульфат-анионами форме - в дозе 100 мг/кг; кавинтон - в дозе 2,5 мг/кг (эффективная доза при экспериментах на животных: см. Кавинтон в эксперименте и клинической практике. Методические рекомендации. Под ред. академика РАМН Е.И. Гусева. Гедеон Рихтер А. О. M., 1998, 56 стр.). Кавинтон использовали в качестве препарата сравнения, учитывая его широкое применение в клинике в качестве противоишемического и антигипоксического средства (там же). Сульфат этилового эфира карнозина использовали в связи с его более высокой устойчивостью при хранении и удобством для препаративного использования, благодаря его низкой гигроскопичности и хорошей сыпучести. (Могут быть использованы и другие соли эфиров). Контрольным крысам вводили соответствующий их весу объем физиологического раствора (из расчета 1 мл/200 г веса тела). Полученные данные представлены в таблице 5. Применение сульфата этилового эфира карнозина повышало выживаемость животных до 75%, значительно снижало проявление неврологической симптоматики но сравнению с контрольной группой, что выражалось в двукратном (25 и 55%, соответственно) уменьшении судорожной активности и существенном повышении балльной оценки состояния животных, которая била сравнима с кавинтоном или даже превышала ее. Таким образом, эфиры карнозина и их соли, предлагаемые в качестве антиоксидантного и антигипоксического средства, в отличие от карнозина, практически не подвергаются гидролизу карнозиназой, что пролонгирует их действие, проявляет высокую антиоксидантную и антигипоксическую активность, которая сравнима с активностью кавинтона, но в отличие от него лучше предохраняют животных от проявлений судорожной активности.
Класс A61P39/06 поглотители свободных радикалов или антиоксиданты
