биологически активное средство, способ его получения и препарат, содержащий указанное средство, и способ использования препарата

Формула изобретения

1. Биологически активное средство, обладающее иммуномодулирующим свойством, на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран гомогенизированной животной ткани, отличающееся тем, что оно содержит термостабильные, низкомолекулярные модифицированные при процессах эмбриогенеза и/или пролифирации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани.

2. Средство по п.1, отличающееся тем, что оно содержит модифицированные компоненты плазматических клеточных мембран с антигенной структорой, модифицированной при процессах эмбриогенеза, и/или пролифирации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани.

3. Средство по п. 1, отличающееся тем, что оно содержит модифицированные компоненты клеточных мембран, термостабильные при температуре Т_н 120^oС.

4. Средство по п. 2, отличающееся тем, что оно содержит модифированные компоненты плазматических клеточных мембран, термостабильные при температуре Т_н 120^oС.

5. Средство по п. 1, отличающееся тем, что оно содержит низкомолекулярные модифицированные компоненты клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8 10,0 кДа.

6. Средство по п. 2, отличающееся тем, что оно содержит низкомолекулярные модифицированные компоненты плазматических клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8 10,0 кДа.

7. Средство по п. 3, отличающееся тем, что оно содержит низкомолекулярные модифицированные компоненты клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8 10,0 кДа.

8. Средство по п. 4, отличающееся тем, что оно содержит низкомолекулярные модифицированные компоненты плазматических клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8 10,0 кДа.

9. Средство по п. 5, отличающееся тем, что оно содержит углеводсодержащие модифицированные компоненты клеточных мембран.

10. Средство по п. 6, отличающееся тем, что оно содержит углеводсодержащие модифицированные компоненты плазматических клеточных мембран.

11. Средство по п. 7, отличающееся тем, что оно содержит углеводсодержащие модифицированные компоненты клеточных мембран.

12. Средство по п. 1, или 2, или 3, или 4, или 5, или 6, или 7, или 8, или 9, или 10, или 11, отличающееся тем, что оно содержит органические соединения в следующем соотношении, мас.

Пептиды 28,0 60,0

Аминокислоты 0,5 31,5

Углеводы 16,0 70,0

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5 17,0

13. Средство по п. 12, отличающееся тем, что оно содержит углеводы в составе органических соединений в следующем соотношении, мас. в составе: высокомолекулярных соединений, имеющих молекулярную массу М_ув > 10,0 кДа до 3,0; низкомолекулярных соединений, имеющих молекулярную массу М_ун 0,8 10,0 кДа 11,5 57,9; свободных мономеров М_ум < 0,8 кДа 3,5 17,0.

14. Средство по п. 1, или 2, или 3, или 4, или 5, или 6, или 7, или 8, или 9, или 10, или 11, отличающееся тем, что соотношение массовых содержаний углеводов и пептидов в составе органических соединений с молекулярной массой М 0,8 10,0 кДа лежит в пределах G 0,6 2,0.

15. Средство по п. 1, или 2, или 3, или 4, или 5, или 6, или 7, или 8, или 9, или 10,отличающееся тем, что оно содержит органические соединения в следующем соотношении, мас.

Пептиды 40,0 60,0

Аминокислоты 12,9 17,0

Углеводы 16,0 32,8

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 4,4 10,6.

16. Средство по п. 3, или 4, или 7, или 8, или 11, отличающееся тем, что оно содержит органические соединения в следующем соотношении, мас.

Пептиды 34,0 50,1

Аминокислоты 16,6 22,6

Углеводы 22,7 34,2

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 5,4 10,6.

17. Средство по п. 5, или 6, или 7, или 8, или 9, или 10, или 11, отличающееся тем, что оно содержит органические соединения в следующем соотношении, мас.

Пептиды 28,0 33,6

Аминокислоты 16,5 31,5

Углеводы 26,9 37,9

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 8,6 17,0.

18. Средство по п. 9, или 10, или 11, отличающееся тем, что оно содержит органические соединения в следующем соотношении, мас.

Пептиды 29,0 36,3

Аминокислоты Менее 0,5

Углеводы 57,7 70,0

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5 5,5.

19. Способ получения биологически активного средства, обладающего иммуномодулирующим свойством, при котором сырье из животной ткани измельчают и гомогенизируют, а из гомогенита выделяют содержащий клеточные мембраны осадок, из которого после ресуспендирования получают компоненты клеточных мембран, отличающийся тем, что в качестве сырья используют животную ткань, модифицированную при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани, гомогенат которой очищают от неразрушенных элементов ткани путем фильтрации и/или центрифугирования при ускорении 150 250 g в течение 10 15 мин и выделяют осадок, содержащий клеточные мембраны, который подвергают гидролизу, продукты гидролиза фильтруют и/или центрифугируют при ускорении свыше 1500 g в течение 20 40 мин с выделением супернатанта продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран в качестве целевого продукта.

20. Способ по п. 19, отличающийся тем, что в качестве сырья используют ткань, выбираемую из ряда: эмбриональная ткань, дифференцирующаяся ткань тимоцитов тимуса, сперматогонии и сперматоциты семенников, плацентарная ткань, эпителиальная ткань кишечника, клетки костного мозга, регенерирующая кожная ткань, ткань регенерирующей печени, ткань регенерирующих конечностей земноводных, патологически измененная ткань, взятая до стадии регенерации, их комбинация.

21. Способ по п. 19, отличающийся тем, что осадок, содержащий клеточные мембраны, выделяют из очищенного гомогената центрифугированием при ускорении 1500 90000 g и/или фильтрацией через фильтр с характерным размером пор F < 1 мкм с последующей промывкой путем ресуспендирования и повторного центрифугирования и/или фильтрации до получения осадка, содержащего клеточные мембраны в количестве не менее 60% от массы представленных в осадке органических соединений.

22. Способ по п. 21, отличающийся тем, что полученный осадок, содержащий клеточные мембраны, перед гидролизом дополнительно центрифугируют при ускорении 20000 100000 g в градиенте плотности в течение 1 2 ч. с выделением плазматических клеточных мембран.

23. Способ по п. 19, отличающийся тем, что гидролиз проводят при температуре Т_р 4 45^oС.

24. Способ по п. 19, отличающийся тем, что гидролиз проводят в присутствии консерванта.

25. Способ по п. 19, или 20, или 21, или 22, или 23, или 24, отличающийся тем, что супернатант продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран, подвергают термообработке при температуре Т_н 60 120^oС до полной денатурации термолабильных соединений и дополнительным фильтрованием и/или центрифугированием с ускорением свыше 1500 g в течение 20 40 мин выделяют супернатант, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, в качестве целевого продукта.

26. Способ по п. 19, или 20, или 21, или 22, или 23, или 24, отличающийся тем, что продукты гидролиза, содержащие компоненты клеточных мембран, перед фильтрацией и/или центрифугированием подвергают термообработке при температуре Т_н 60 120^oС до полной денатурации термолабильных соединений.

27. Способ по п. 19, или 20, или 21, или 22, или 23, или 24, отличающийся тем, что супернатант продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран, подвергают фракционированию путем диализа через полупроницаемую пленку, и/или ультрафильтрации, и/или гельфильтрации с выделением фракции, содержащей низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М 10,0 кДа, в качестве целевого продукта.

28. Способ по п. 19, или 20, или 21, или 22, или 23, или 24, отличающийся тем, что продукты гидролиза, содержащие компоненты клеточных мембран, подвергают фракционированию путем диализа через полупроницаемую пленку, и/или ультрафильтрации, и/или гельфильтрации с выделением фракции, содержащей низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М 10,0 кДа, в качестве целевого продукта.

29. Способ по п. 25, отличающийся тем, что супернатант продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран, подвергают фракционированию путем диализа через полупроницаемую пленку, и/или ультрафильтрации, и/или гельфильтрации с выделением фракции, содержащей низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М 10,0 кДа, в качестве целевого продукта.

30. Способ по п. 27, отличающийся тем, что низкомолекулярную фракцию продуктов гидролиза, содержащую компоненты клеточных мембран, подвергают аффинной хроматографии на лектинах с выделением фракции, содержащей углеводсодержащие компоненты, в качестве целевого продукта.

31. Способ по п. 29, отличающийся тем, что низкомолекулярную фракцию продуктов гидролиза, содержащую компоненты клеточных мембран, подвергают аффинной хроматографии на лектинах с выделением фракции, содержащей углеводсодержащие компоненты, в качестве целевого продукта.

32. Препарат для нормализации физиологического состояния организма человека и животных, содержащий биологически активное средство на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран животной ткани и наполнитель, отличающийся тем, что в качестве биологически активного средства он содержит в своем составе термостабильные низкомолекулярные модифицированные компоненты клеточных мембран с антигенной структурой, модифицированной при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани, при его содержании в препарате в количестве 0,001 85,0 мас. остальное наполнитель.

33. Препарат по п. 32, отличающийся тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас.

Пептиды 28,0 60,0

Аминокислоты 0,5 31,5

Углеводы 16,0 70,0

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5 17,0

34. Препарат по п. 33, отличающийся тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас.

Пептиды 40,0 60,0

Аминокислоты 12,9 17,1

Углеводы 16,0 32,8

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 4,4 10,6

35. Препарат по п. 33, отличающийся тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас.

Пептиды 34,0 50,1

Аминокислоты 16,6 22,6

Углеводы 22,7 34,2

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 5,4 10,6

36. Препарат по п. 33, отличающийся тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас.

Пептиды 28,0 33,6

Аминокислоты 16,5 31,5

Углеводы 26,9 37,9

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 8,6 17,0

37. Препарат по п. 33, отличающийся тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас.

Пептиды 29,0 36,3

Аминокислоты Менее 0,5

Углеводы 57,7 70,0

Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5 5,5.

38. Препарат по п. 33, или 34, или 35, или 36, или 37, отличающийся тем, что в качестве наполнителя содержит физиологический раствор натрия хлористого, и/или солевой буферный раствор, и/или углеводные соединения, и/или жиры минерального, животного, растительного или синтетического происхождения и их смеси.

39. Препарат по п. 33, или 34, или 35, или 36, или 37, отличающийся тем, что он дополнительно содержит консервант.

40. Способ нормализации физиологического состояния человека и животных, предусматривающий введение в организм препарата на основе органических соединений компонентов клеточных мембран животной ткани, отличающийся тем, что в качестве препарата используют композицию из 0,001 85,0 мас. биологически активного средства, содержащего в своем составе модифицированные компоненты клеточных мембран с антигенной структурой, модифицированной при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани, и 15,0 99,999 мас. наполнителя, а введение препарата в организм осуществляют путем внутримышечных инъекций в дозе 0,005 0,5, мг упомянутого средства на кг массы тела с интервалом между инъекциями 1 7 дней и/или ингаляций в дозе 0,012 0,12 мг упомянутого средства на кг массы тела с интервалом между ингаляциями 4 48 ч, и /или сублингвального введения в дозе 0,012 0,12 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 4 48 ч, и/или выпаивания в дозе 0,02 1,0 мг средства на кг массы тела с интеравалом между выпаиваниями 1 10 дней, и/или интерального введения в пилюлях в дозе 0,02 1,0 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 1 10 дней, и/или интраназального введения в суточной дозе 0,001 - 0,05 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 2 24 ч, и/или аппликации на слизистую или раневую поверхность в виде компрессов, свечей, присыпок, мазей и гелей с интервалом между применениями 1 10 дней, - до нормализации параметров физиологического состояния.

Описание изобретения к патенту

Группа изобретений относится к химико-фармацевтической промышленности, а именно к области получения биологически активных средств, обладающих иммуномодулирующим действием, для использования в медицине и ветеринарии с целью нормализации физиологического состояния организма человека и животных, в частности, для восстановления функциональной активности органов и тканей.

Биологически активное средство, в соответствии с изобретением, относится к веществам животного происхождения и включает в себя органические соединения.

Различного рода патологические нарушения в организме человека и животных вызывают отклонения от нормы параметров физиологического состояния. В этих случаях лечебное воздействие на организм, в том числе профилактическое воздействие, заключается в стабилизации, то есть поддержании в норме указанных параметров либо (при отклонениях их от нормы) в таком воздействии на организм, при котором эти параметры нормализуются.

Группа изобретений касается биологически активного средства, способа его получения и препарата на основе биологически активного средства, используемого для нормализации физиологического состояния организма.

Нормализацию физиологического состояния организма человека и животных можно осуществлять по двум направлениям: во-первых, путем непосредственного воздействия на патологию и, во-вторых, путем опосредованного воздействия на системы, органы и ткани организма, отвечающие за поддержание в норме параметров гомеостаза.

Введение гормональных препаратов, медиаторов, ростовых факторов, химиотерапия и тому подобные средства обеспечивают непосредственное воздействие на клетки-мишени путем рецепции. Например, при лечении диабета вводят инсулин, восполняющий функциональный недостаток поджелудочной железы; при нарушениях функциональной активности нервной системы вводят нейромедиаторы, способствующие нормализации пороговой чувствительности нейронов и, соответственно, улучшению передачи нервных импульсов; при нарушениях функциональной активности иммуной системы организма используют иммуномедиаторы, коррелирующие иммунный ответ, и так далее.

При опосредованном воздействии на организм лечение заболеваний обеспечивается за счет мобилизации внутренних ресурсов организма. Так, при протекании процессов, связанных с регенерацией органов и тканей, с их реабилитацией или восстановлением их функций, а также при воспалительных и инфекционных процессах стимулируют иммунную систему организма. Благодаря этому обеспечивают улучшение иммунологического и, как следствие, общего состояния организма.

Известно биологически активное средство на основе зародышевой ткани, обладающее иммуномодулирующим свойством, восстанавливающее физиологическое состояние организма и регулирующее обмен клеток (FR-А-2413912). Указанное биологически активное средство (далее по тексту БАС) выполнено на основе ингредиентов измельченной и гомогенизированной животной ткани, выделенной из зародыша, в смеси с физиологической сывороткой.

Вследствие наличия в составе данного средства иммуномодулирующего фактора оно обладает сравнительно высоким иммуномодулирующим свойством, благодаря чему его использование обеспечивает нормализацию физиологического состояния организма, в том числе лечение, и повышение продуктивности животных на 5-15% по сравнению с контрольной группой.

Эффективность известного БАС все же недостаточна вследствие того, что наряду с иммуномодулирующими факторами оно содержит в своем составе иммунодепрессанты, которые препятствуют полному проявлению иммуномодулирующего эффекта. Иммуномодулирующее свойство указанного средства, по сути дела, является суммарным результатом, который обеспечивается одновременным присутствием в нем иммуностимулирующих факторов и депрессантов. Таким образом, фактически специфическая активность известного БАС, зависящая от соотношения концентраций иммуностимулирующих факторов и депрессантов, сравнительно невелика вследствие значительной концентрации депрессантов в его составе.

Другим недостатком указанного БАС является повышенное содержание в его составе высокомолекулярных соединений, являющихся иммуногенами, приводящее к появлению побочных иммунных реакций (аллергия, гиперчувствительность замедленного типа и тому подобное).

В значительной степени недостатки вышеописанного БАС зависят от способа его получения, в котором технологический процесс заканчивается операцией измельчения и гомогенизации сырья из животной ткани, что приводит к обязательному присутствию значительного количества депрессантов и высокомолекулярных соединений в его составе.

Известно также БАС, обладающее иммуномодулирующим свойством, для нормализации физиологического состояния организма, выполненное на основе продуктов гидролиза ингредиентов измельченного сырья животного происхождения, взятого предпочтительно от недоразвитых животных, способы его получения и применения для заживления травмированных участков тела (US-А-4455302). В его состав входят растворимые полипептиды, аминокислоты и минеральные вещества, полученные в результате гидролиза ткани.

Данное БАС обладает высокой эффективностью в отношении нормализации параметров физиологического состояния организма. Это объясняется тем, что известное БАС характеризуется высоким соотношением эффектов иммуностимуляции и иммуноингибирования, с одной стороны, в связи с более высоким содержанием в его составе иммуностимулирующих факторов за счет присутствия продуктов гидролиза, а с другой, в связи со значительным уменьшением количества высокомолекулярных соединений в ходе того же процесса гидролиза.

Однако эффективность известного БАС все же недостаточна из-за содержания в его составе относительно большого количества балластных веществ и иммунодепрессантов. Кроме того, известное БАС также может вызывать побочные эффекты, проявляющиеся при его использовании (аллергия и другие) вследствие того, что в его составе также присутствуют высокомолекулярные соединения, которые являются иммуногенами и молекулярная масса которых превышает 10,0 кДа.

Недостатком известного БАС является и то, что состав получаемого целевого продукта непостоянен и колеблется от партии к партии, вследствие чего затруднена его стандартизация.

Свойства известного БАС, прежде всего его иммуномодулирующая активность, прямо связаны со способом его получения, который включает гидролиз ингредиентов промытого измельченного сырья животного происхождения, центрифугирование гидролизата, фильтрацию и выделение целевого продукта, причем гидролиз проводят в растворе разбавленной слабой органической кислоты при рН 3,6-6,5 и температуре около 68^оС, а в качестве сырья используют ноги недоразвитой домашней птицы не более чем 9-недельного возраста.

Целевой продукт выделяют в виде порошка или геля, который при использовании накладывают на поврежденные участки тела.

Использование в качестве сырья животной ткани, содержащей в своем составе сравнительно большое количество иммунодепрессантов и невозможность улучшить состав целевого продукта с помощью выполняемых в известном способе операций, существенно снижает эффективность получаемого БАС.

Следует учитывать, что содержащиеся в тканевых препаратах компоненты экстрракта в значительной степени являются стимуляторами функциональной активности органов и тканей, воздействие которых в основном является однонаправленным, то есть действие БАС зависит лишь от его концентррации в организме и не зависит от физиологического статуса организма. Это требует строгого соблюдения дозировок лекарственного препарата на основе известного БАС в процессе лечения.

Указанные недостатки частично устранены в известных БАС, эффект воздействия которых коррелирует с физиологическим статусом организма и в случае его нормализации действие такого БАС прекращается, то есть проявляется эффект двусторонней связи. Поэтому представляют большой интерес извесные БАС на основе компонентов клеточных мембран животных тканей, которые способны реагировать на изменение параметров гомеостаза организма (SU-А-1412596; ЕР-А-0106285; ЕР-А-0157427).

В этих препаратах, полученных в виде вакцин, использованы специфические антигены, появляющиеся на поверхности клеток при некоторых процессах патологии, а именно при процессах неоплазии, в связи с чем использование вакцин направлено на элиминацию этой патологии. Эффективность действия указанных лекарственных препаратов на основе БАС прямо зависит от количества представленных в организме антигенов, то есть от их концентрации в организме, и прекращается при элиминации неоплазии, что указаывает на наличие саморегулирующей двусторонней связи.

Недостатком известных лекарственных препаратов является их высокая специфичность к исходной патологии, то есть весьма узкий спектр действия, и вследствие этого они принципиально не могут иметь широкий спектр действия для восстановления (нормализации) параметров физиологического состояния организма.

Другим их недостатком является то, что эти вакцины применяются только для элиминации патологии и лишь косвенным путем направлены на нормализацию физиологического состояния организма. Кроме того, недостатком является и то, что известные БАС не активируют регенераторные и восстановительные процессы. Такие БАС должны удовлетворять повышенным требованиям к степени чистоты (гомогенности) получаемого антигена во избежание возникновения побочных эффектов.

Известные БАС получают известным способом, согласно которому животное сырье измельчают и гомогенизируют с последующим выделением из гомогената клеточных мембран животных тканей, из которых после солюбилизации получают компоненты клеточных мембран в виде гликопротеинов (SU-А-1412596; ЕР-А-0106285; ЕР-А-0157427).

Достоинством известного способа является то, что он позволяет получать высокоспецифические углеводсодержащие компоненты клеточных мембран, способные вызывать ответную реакцию иммунной системы организма на присутствие опухолевоспецифического антигена.

К преимуществам известного способа следует отнести также и то, что он позволяет выделять углеводсодержащие компоненты клеточных мембран с помощью специфических лектинов, способных связываться с определенными концевыми углеводными остатками.

Однако при реализации операций известного способа клеточные мембраны подвергают солюбилизации с помощью детергентов, обычно неионной природы, например детергента Тритон Х-100, от которых трудно избавиться в последующих операциях способа и которые сами по себе вызывают побочные эффекты при использовании средства в клинике.

Недостатком известного способа является и то, что он сравнительно мало производителен и весьма трудоемок, а также зависит от наличия специфических раковых тканей, используемых в качестве исходного сырья.

Наиболее близким к предлагаемому является БАС, обладающие иммуномодулирующим свойством, для нормализации физиологического состояния организма, на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран измельченной и гомогенизированной животной ткани (ЕР-А-0318030).

По сравнению с вышеуказанными средствами-аналогами известное лекарственное средство обладает еще большей эффективностью, характеризуемой повышением на 62% киллерной активности по отношению к специфическим опухолевым клеткам в сравнении с контролем. Это объясняется тем, что БАС аналог является маркером роста злокачественных клеток и специфически активирует киллерную активность, направленную на элиминацию таких клеток.

Однако известное БАС сохраняет все перечисленные выше недостатки, характерные для аналогов, а именно: высокую специфтичность к исходной патологии (неоплазии), то есть узкий спектр лечебного воздействия этого средства; наличие только киллерной активности; высокий уровень опасности возникновения побочных эффектов, связанный с тем, что известное БАС является высокомолекулярным соединением.

Как и в указанных выше случаях, свойства известного БАС, прежде всего его специфическая активность, прямо связаны со способом его получения, включающим измельчение и гомогенизацию животного сырья, его последующее ультрацентрифугирование и выделение из гомогената, содержащего клеточные мембраны, осадка, из которого после ресуспендирования и солюбилизации получают компоненты клеточных мембран, которые используют в качестве целевого продукта (ЕР-А-0318030).

По сравнению с вышеуказанными способами получения БАС известный способ обладает тем преимуществом, что он позволяет получать еще более высокоспецифические углеводсодержащие компоненты клеточных мембран, способные вызвать ответную реакцию иммунной системы организма на присутствие опухолевоспецифического антигена.

Кроме того, преимуществом известного способа является более высокая эффективность выделения углеводсодержащих компонентов.

Однако известному способу присущи перечисленные выше недостатки, а именно: необходимость использовать детергенты, от которых впоследствии трудно избавиться и наличие которых вызывает отрицательные побочные эффекты при клиническом использовании этого средства; сравнительно низкая производительностоь известного способа и высокая его трудоемкость; зависимость от наличия специфических раковых тканей в качестве исходного сырья.

Известен лекарственный препарат для нормализации физиологического состояния организма человека и животных на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран (ЕР-А-0318030). Препаррат вводится в организм в течение длительного времени путем ежедневных внутривенных или внутримышечных инъекций в дозе 0,001-1000 мкг, которая зависит от возраста, пола, стадии заболевания пациента.

При внутривенном введении в качестве наполнителя используется физиологический раствор натрия хлористого, или буферный раствор.

Основным действующим началом данного препарата является БАС в виде опухолеспецифического антигена, вызывающего иммунную реакцию организма. Для усиления такой реакции и пролонгирования эффекта выделенный антиген встраивают в липосомы. При внутримышечных инъекциях наполнителями в препарате являютсчя различные адъюванты, состоящие в основном из масел, в которых суспендируется полученное БАС.

Недостатком известного лекарственного препарата является то, что он обеспечивает высокоспецифическую стимуляцию иммунной системы организма, которая направлена на уничтожение определенной патологии (конкретного вида неоплазии) и из-за присутствия высокомолекулярных соединений сопровождается проявлением ряда нежелательных побочных явлений, нарушающих другие параметры гомеостаза. В частности, при внутримышечном или подкожном введении возникает локальное, при внутривенном введении генерализованное воспаление, а также аллергия, гиперчувствительность замедленного типа и другие являния.

Известен препарат для нормализации физиологического состояния организма человека и животных, содержащий биологически активное средство на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран животной ткани, и наполнитель, который накладывают на пораженные участки тела (US-А-4455302).

Недостатком известного лекарственного препарата является то, что стимуляция иммунной системы организма возможна только путем локальной его аппликации на травмированные участки тела. Поэтому эффективность такого препарата сравнительно невелика.

Указанные недостатки частично устранены в аналогичном препарате, обладающем иммуномодулирующим действием, для нормализации физиологического состояния организма животного (SU-А-904707), который вводится в организм путем внутримышечной инъекции в дозе 0,75-1,0 мл/кг массы тела с интервалом 3 дня и, таким образом, используется не локально.

Недостатком этого препарата является его сравнительно невысокая эффективность вследствие наличия в нем иммунодепрессантов, а также то, что его использование вызывает побочные эффекты из-за присутствия в его составе иммуногенов, вызывающих аллергию, гиперчувствительность замедленного типа и другое.

Использование в качестве сырья животной ткани, содержащей сравнительно большое количество иммунодепрессантов, и невозможностью улучшить состав БАС, на основе которого выполняется лекарственный препарат, с помощью выполняемых в известном способе операций, существенно снижает эффективность известного БАС и перпарата на его основе.

Существенным недостатком известного препарата является и то, что для обеспечения достаточной эффекутивности он содержит в своем составе большое количество различных биологически активных веществ, что обуславливает с одной стороны опасность перредозировок, возникновения побочных эффектов, а с другой увеличивает стоимость препарата.

Известен способ нормализации физиологического состояния человека и животных при заболеваниях, вызванных преимущественно функциональной недостаточностью органов и тканей, предусматривающий введение в организм препарата на основе органических соединений компонентов клеточных мембран животной ткани (SU-А-904707).

Известный способ малоэффективен вследствие наличия описанных выше недостатков препарата, в том числе из-за того, что при его использовании требуется введение больших доз, содержащих до 10 мг биологически активного средства на 1 кг массы тела, что вызывает опасность передозировок и возникновения побочных эффектов.

Указанные недостатки устранены в предлагаемом биологически активном средстве, обладающем иммуномодулирующим свойством. В предлагаемом способе получения этого БАС и препарате на его основе, а также в способе его использования для нормализации физиологического состояния организма.

Анализ известных БАС и известных способов их получения, совокупность признаков которых определяет технический уровень в данной области, позволил сформулировать задачу создания БАС с широким спектром иммуномодулирующего действия, с высокой степенью эффективности, лишенного при этом недостатков, связанных с наличием побочных эффектов, возникающих при применении известных БАС и выражающихcя, например, в аллергии и так далее.

Решение этой задачи, которая не могла быть решена в известных изобретениях, положено в основу предлагаемой группы изобретений. Оно заключается в том, что БАС, обладающее иммуномодулирующим свойством и предназначенное для нормализации физиологического состояния организма, в том числе для восстановления функциональной активности органов и тканей, на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран гомогенизированной животной ткани, содержит термостабильные, низкомолекулярные модифицированные компоненты клеточных мембран с антигенной структурой, модифицированной при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регерации и/или репарации ткани.

Задача решается также и тем, что БАС содержит модифицированные компоненты плазматических клеточных мембран с антигенной структурой модифицированной, при процессах эмбриогенеза и/или пролиферрации и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани.

При этом БАС может содержать модифицированные компоненты клеточных мембран в виде термостабильных при температуре Т_н < 120^оС компонентов, а также в виде низкомолекулярных компоненнтов с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа и в виде углеводсодержащих компонентов.

Средство содержит органические соединения в следующем соотношении, мас. Пептиды 28,0-60,0 Аминокислоты 0,5-31,5 Углеводы 16,0-70,0

Липиды, нуклеотиды и

другие органические соединения 0,5-17,0

БАС содержит углеводы в составе органических соединений в следующем соотношении, мас. в составе высокомо- лекулярных соединений, имеющих молекулярную массу М_ув > 10,0 кДа до 3,0, низкомолекулярных соединений, имеющих молекулярную массу М_ун 0,8-10,0 кДа 11,5-57,9, свободных мономеров М_ум < 0,8 кДа 3,5-17,0.

В БАС соотношение массовых содержаний углеводов и пептидов в составе органических соединений с молекулярной массой М_ун 0,8-10,0 кДа лежит в пределах G 0,6-2,0.

БАС содержит также органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 40,0-60,0 Аминокислоты 12,9-17,1 Углеводы 16,0-32,8 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 4,4-10,6.

БАС содержит также органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 34,0-50,1 Аминокислоты 16,6-22,6 Углеводы 22,7-34,2 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 5,4-10,6

БАС содержит также органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 28,0-33,6 Аминокислоты 16,5-31,5 Углеводы 26,9-37,9 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 8,6-17,0

БАС содержит также органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 29,0-36,3 Аминокислоты менее 0,5 Углеводы 57,7-70,0 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5-5,5

Поставленная в изобретении задача решается и тем, что в способе получения БАС, обладающего иммуномодулирующим свойством, при котором сырье из животной ткани измельчают и гомогенизируют, а из гомогената выделяют содержащий клеточные мембраны осадок, из которого после ресуспендирования получают компоненты клеточных мембран, в качестве сырья используют животную ткань, модифицированную при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани, гомогенат которой очищают от неразрушенных элементов ткани путем фильтрации и/или центрифугирования при ускорении 150-250 g в течение 10-15 мин и выделяют осадок, содержащий клеточные мембраны, который подвергают гидролизу, продукты гидролиза фильтруют и/или центрифугируют при ускорении свыше 1500 g в течение 20-40 мин с выделением супернатанта продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран в качестве целевого продукта.

В качестве сырья используют ткань, выбираемую из ряда: эмбриональная ткань, ткань дифференцирующихся тимоцитов тимуса, cперматогонии и cперматоциты cеменни-ков, плацентарная ткань, эпителиальная ткань кишечника, клетки костного мозга, регенерирующая кожная ткань, ткань регенерирующей печени, ткань регенерирующих конечностей земноводных, патологически измененная ткань, взятая до стадии регенерации.

При этом осадок, содержащий клеточные мембраны, выделяют из очищенного гомогената центрифугированием при ускорении 1500-90000 g и/или фильтрацией через фильтр с характерным размером пор F < 1 мкм c последующей промывкой путем ресуспендирования и повторного центрифугирования и/или фильтрации до получения осадка, содержащего клеточные мембраны в количестве не менее 60 мас. от представленных в осадке органических соединений.

Кроме того, осадок, содержащий клеточные мембраны, перед гидролизом дополнительно центрифугируют при ускорении 20000-100000 g в градиенте плотности в течение 1-2 ч с выделением плазматических клеточных мембран.

Гидролиз проводят при температуре Т_р 4-45^оС. При этом он может осуществляться в присутствии консерванта.

Поставленная задача решается также и тем, что продукты гидролиза, содержащие компоненты клеточных мембран, подвергают термообработке при температуре Т_н60-120^оС до полной денатурации термолабильных соединений и дополнительным фильтрованием и/или центрифугированием с ускорением свыше 1500 g в течение 20-40 мин выделяют супернатант, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, в качестве целевого продукта.

Кроме того, содержащие компоненты клеточных мембран супернатант или продукты гидролиза, подвергают фракционированию путем диализа через полупро- ницаемую пленку, и/или ультрафильтрации, и/или гельфильтрации с выделением фракции, содержащей низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М 10,0 кДа, в качестве целевого продукта.

Низкомолекулярную фракцию продуктов гидролиза, содержащую компоненты клеточных мембран, подвергают аффинной хроматографии на лектинах с выделением фракции, которая содержит углеводсодержащие компоненты, в качестве целевого продукта.

Поставленная в изобретении задача решается и тем, что известный препарат для нормализации физиологического состояния организма человека и животных, содержащий биологически активное средство на основе представленных органическими соединениями компонентов клеточных мембран животной ткани, и наполнитель, в качестве биологичсеки активного средства содержит в своем составе термостабильные, низкомолекулярные модифицированные компоненты клеточных мембран с антигенной структурой, модифицированной при поцессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани, при его содержании в препарате 0,001-85,0 мас. остальное наполнитель.

Задача решается и тем, что в препарате биологически активное средство содержит в составе модифированных компонентов клеточных мембран органические соединения в следующем соотношении, мас. Пептиды 28,0-60,0 Аминокислоты 0,5-31,5 Углеводы 16,0-70,0 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 0,5-17,0

Задача решается и тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 40,0-60,0 Аминокислоты 12,9-17,1 Углеводы 16,0-32,8 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 4,4-10,6

Задача решается и тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 34,0-50,1 Аминокислоты 16,6-22,6 Углеводы 22,7-34,2 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 5,4-10,6

Задача решается и тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 28,0-33,6 Аминокислоты 16,5-31,5 Углеводы 26,9-37,9 Липиды, нуклеотиды и другие органические соединения 8,6-17,0

Задача решается и тем, что биологически активное средство содержит органические соединения в соотношении, мас. Пептиды 29,0-36,3 Аминокислоты менее 0,5 Углеводы 57,7-70,0

Липиды, нуклеотиды

и другие органические соединения 0,5-5,5

Препарат в качестве наполнителя может содержать физиологический раствор натрия хлористого, и/или солевой буферный раствор, и/или углеводные соединения, и/или жиры минерального, животного, растительного или синтетического происхождения и их смеси.

Препарат может дополнительно содержать консервант.

Поставленная задача решается и тем, что в известном способе нормализации физиологического состояния человека и животных при заболеваниях, вызванных преимущественно функциональной недостаточностью органов и тканей, предусматривающем введение в организм препарата на основе органических соединений компонентов клеточных мембран животной ткани. В качестве препарата используют композицию из 0,001-85,0 мас. биологически активного средства, содержащего в своем составе модифицированные компоненты клеточных мембран с антигенной структурой, модифицированной при процессах эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей регенерации и/или репарации ткани, и 15,0-99,999 мас. наполнителя, а введение препарата в организм осуществляют путем внутримышечных инъекций в дозе 0,005-0,5 мг упомянутого средства на кг массы тела с интервалом между ингаляциями 4-48 ч и/или сублингвального введения в дозе 0,012-0,12 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 4-48 ч и/или выпаивания в дозе 0,02-1,0 мг средства на кг массы тела с интервалом между выпаиваниями 1-10 дней и/или интерального введения в пилюлях в дозе 0,02-1,0 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 1-10 дней, и/или интраназального введения в суточной дозе 0,001-0,05 мг средства на кг массы тела с интервалом между введениями 2-24 ч, и/или аппликации на слизистую или раневую поверхность в виде компрессов, свечей, присыпок, мазей и гелей с интервалами между применениями 1-10 дней, до нормализации параметров физиологического состояния.

При этом нормализацию физиологического состояния человека и животных осуществляют путем стимуляции иммунной системы, преимущественно активацией ретикулоэндотелиальной системы, Т-, В-систем, нейтрофилов и/или популяции естественных киллеров.

Установлено, что практическая эффективность БАС, полученного предлагаемым способом, заключается в его высокой биологическиой активности, и прежде всего в повышенном иммуномодулирующем эффекте (свойстве).

Сопоставительный анализ свойств известных и предлагаемых БАС показывает, что в то время как указанные выше известные БАС обладают узконаправленным иммуномодулирующим действием с недостаточной общебиологической эффективностью, вызывают отрицательные побочные эффекты и требуют точности в определении дозы при их использовании, предлагаемое БАС обладает широким спектром действия, высокоэффективно, некритично к передозировке и не обладает побочными эффектами.

Экспериментально установлено, что практическая эффективность БАС, полученного предлагаемым способом, заключается в его высокой биологической активности, и прежде всего в повышенном иммуномодулирующем и регенераторном эффектах (свойствах), что обеспечивает при введении в организм:

а) повышенную стимуляцию регенераторных процессов, как-то: восстановление функциональной активности печеночной ткани при гепатите и регенерацию печени после гепатэктомии, заживление язв, ран и кожного покрова при ранениях и травмах, восстановление формулы крови при кровопотерях и в других случаях;

б) проявление лечебного эффекта при лечении острых респираторных заболеваний (ОРЗ), а также воспалительных процессов (воспалении легких, маститах, эндометритах и других);

в) лечение инфекционных заболеваний животных (парагрипп и других), при котором выздоровление молодняка крупного рогатого скота наблюдалось в среднем не менее, чем в 88% случаев, в то время как при использовании известных БАС в тех же условиях выздоровление наблюдалось в среднем не более, чем в 70% случаев, а при спонтанном излечивании в контроле в пределах 58-67% случаев;

г) повышенную резистентность животных к инфекционным заболеваниям и вследствие этого снижение уровня падежа поголовья скота;

д) улучшение общебиологического состояния животных, что благоприятно сказывается на увеличении их продуктивности.

Практическое применение БАС подтвердило его нетоксичность и отсутствие побочных явлений (аллергии, гиперчувст- вительности замедленного типа и тому подобного).

Указанные результаты достигнуты благодаря особым свойствам БАС, проявление которых обеспечено наличием в его составе модифицированных компонентов выделенных из клеточных мембран с модицифированной антигенной структурой. Следует отметить, что изменение в физиологическом статусе клеток ткани находит свое отражение в модификации антигенной структуры клеточных мембран, сопровождающейся модификацией компонентов клеточных мембран и изменением иммуногенности ткани, а следовательно, и реакцией иммунной системы организма.

Степень такой модификации антигенной структуры клеточных мембран и соответственно степень реакции иммунной системы зависит от степени изменения физиологического статуса клеток ткани.

Установлено, что повышение иммуногенности модифицированной антигенной структуры клеточных, и прежде всего плазматических клеточных мембран, обеспечивается животными тканями на стадии протекания в них указанных выше процессов эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологических процессов, которые предшествовали и/или сопутствовали регенерации и/или репарации ткани.

Таковыми тканями, например, являются:

дифференцирующиеся тимоциты тимуса (процесс дифференцировки клеток);

сперматогонии и сперматоциты семенников, клетки костного мозга, эпителиальная ткань кишечника (процессы пролиферации и дифференцировки клеток);

эмбриональная ткань, плацентарная ткань (процессы пролиферации, дифференцировки, эмбриогенеза);

ткани регенерирующих конечностей земноводных, регенерирующая печень крыс после частичной гепатэктомии или генерирующая кожная ткань, а также ткань с патологией в ней, например, при гангрене, химическом или термическом поражении (комбинация в различном сочетании вышеперечисленных процессов).

Использование описанных животных тканей в качестве сырья в заявляемом способе изготовления обеспечивает получение БАС с ожидаемыми свойствами.

Установлено также, что характерной особенностью перечисленных выше разновидностей тканей является изменение в них иммуногенной структуры клеточных мембран, сопровождающееся модификацией компонентов клеточных мембран ткани, позволяющее отдифференцировать их от интактных или покоящихся клеток тканей взрослых особей. Эта особенность модифицированных компонентов клеточных мембран указанных тканей позволяет использовать их в заявленном БАС, при введении которого в организм животного или человека обеспечивается возможность стимулирования направленной ответной реакции организма на патологию. Ключевую роль в этом процессе играет иммунная система организма.

Материальными носителями информации в перечисленных выше процессах и/или отклонениях от нормы в указанных тканях являются специфические компоненты клеточных мембран. Заявленное БАС содержит модифицированные компоненты клеточных мембран с модифицированной антигенной структурой, что позволяет при его использовании стимулировать указанную выше ответную реакцию организма.

Ответная реакция организма существенно усиливается при введении БАС, которое содержит в своем составе модифицированные компоненты клеточных мембран в виде термостабильных компонентов, то есть стабильных при температуре нагревания Т_н 120^оС, в виде низкомолекулярных компонентов, то есть с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа, а также в виде углеводсодержащих компонентов клеточных мембран, преимущественно в виде гликопептидов, гликолипидов, олигоуглеводов, нуклеотидов и/или свободных моноуглеводов.

При этом, благодаря высокой статической и динамической концентрации компонентов клеточных мембран в БАС снижается содержание иммуноингибиторов и балластных соединений, в связи с чем при наличии высокой специфической активности БАС практически лишено проявления побочных эффектов.

БАС используют в качестве действующего начала в препарате, в котором в зависимости от предназначения применяются различные наполнители.

При этом обнаружена неочевидная зависимость между эффективностью препарата и содержанием БАС. Это позволило значительно снизить содержание в препарате действующего начала при сохранении необходимой эффективности препарата и тем самым предотвратить возможность передозировок, возникновения побочных эффектов, а также существенно снизить его стоимость.

Кроме того, обнаружено, что описанные выше новые свойства препарата позволяют использовать его для нормализации физиологического состояния организма при введении его в организм практически в любых дозах, а именно от 0,001 до нескольких граммов на 1 кг массы тела.

Указанные свойства иллюстрируются ниже в примерах конкретной реализации изобретения, в частности в примерах 9, 11, 17, 24, 27-33 и других.

В вышеупомянутом способе благодаря совокупным факторам использования нового препарата, конкретных его дозировок, кратности его введения в организм, а также способов введения его в организм человека и животных обеспечивается лечение заболеваний, вызванных преимущественно функциональной недостаточностью органов и тканей, что проиллюстрировано ниже в примерах конкретного использования изобретения, в частности в примерах 13, 16-18, 20, 21, 23, 24, 31, 32 и других.

Для внутреннего применения препарат назначается в виде инъекций и наполнителем служит физиологический раствор натрия хлористого или буферный солевой раствор. Для наружного применения, помимо перечисленных растворов, в качестве наполнителя могут быть использованы также и составные компоненты гелей углеводные соединения как животного, так и растительного происхождения, например, мед, соки, мякоть растений и тому подобное, или мазей жиры минерального, животного, растительного или синтетического происхождения и их смеси.

На чертеже схематически представлены кривые температурно-временной зависимости эффективности заявляемого БАС при процессе гидролиза осадка, содержащего клеточные мембраны.

Согласно изобретению, биологически активное средство, обладающее иммунномодулирующим свойством, для нормализации физиологического состояния организма получают следующим образом.

В качестве сырья берут животную ткань, модифицированную при эмбриогенезе, и/или пролиферации, и/или дифференцировке, и/или патологии, предшествующей и/или сопутствующей регенерации и/или репарации ткани. Указанную животную ткань промывают и измельчают, после чего гомогенизируют в физиологическом и/или буферном растворе до полного разрушения клеток, а гомогенизированную смесь очищают от неразрушенных элементов ткани фильтрацией и/или центрифугированием при ускорении 150-250 g в течение 10-15 мин. Из очищенного гомогената центрифугированием при ускорении 1500-90000 g и/или фильтрацией через фильтр с характерным размером пор F < 1 мкм выделяют осадок, содержащий клеточные мембраны, которые подвергают гидролизу, продукты гидролиза фильтруют и/или центрифугируют при ускорении свыше 1500 g в течение 20-40 мин с выделением супернатанта продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран в качестве целевого продукта для нормализации физиологического состояния организма, в частности, при наружном применении (ингаляции, аппликации, интраназально, в составе мази и так далее).

Эффективность целевого продукта зависит от содержания в нем модифицированных компонентов клеточных мембран. Увеличения их содержания добиваются выбором сырья с повышенной интенсивностью процессов модификации в тканях и выбором оптимальных условий осуществления способа его обработки.

Выбор сырья из животной ткани зависит от интенсивности в них процессов модификации антигенной структуры клеточных мембран, которая сопровождается модификацией компонентов клеточных мембран с изменением иммуногенности ткани.

Установлено, что повышение иммуногенности модифицированной антигенной структуры клеточных мембран и прежде всего плазматических мембран клеток в животных тканях обеспечивается на стадии протекания в них указанных выше процессов эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток и/или патологических процессов, которые предшествовали и/или сопутствовали регенерации и/или репарации ткани.

В качестве такой животной ткани используют, в частности:

дифференцирующиеся тимоциты тимуса (процесс дифференцировки клеток);

сперматогонии и сперматоциты семенников, клетки костного мозга, эпителиальную ткань кишечника (процессы пролиферации и дифференцировки клеток);

эмбриональную ткань, плацентарную ткань (процессы пролиферации, дифференцировки, эмбриогенеза);

ткани регенерирующих конечностей земноводных, регенерирующую печень крыс после частичной гепатэктомии или после поражения четыреххлористым углеродом (CCl₄), регенерирующую кожную ткань, а также ткань с патологией в ней, например, при гангрене, химическом или термическом поражении (комбинация в различном сочетании вышеперечисленных процессов).

Использование описанных животных тканей в качестве сырья в предлагаемом способе изготовления обеспечивает получение биологически активного средства с ожидаемыми свойствами.

Установлено, что характерной особенностью перечисленных выше разновидностей тканей является изменение в них антигенной структуры клеточных мембран, сопровождающееся модификацией компонентов клеточных мембран ткани, позволяющее отдифференцировать их от интактных или покоящихся клеток тканей взрослых особей. Эта особенность указанных тканей позволяет использовать их в БАС, при введении которого в организм животного или человека обеспечивается возможность стимулирования специфической ответной реакции организма на собственную патологию. Ключевую роль в этом процессе играет иммунная система организма.

Предпочтительнее использовать животную ткань, взятую на стадии инкремента процесса модификации. Эту стадию определяют эмпирически по характеру изменения иммуногенности. Так, в случае использования эмбриональной ткани этот период составляет первую половину эмбриогенеза. Регенерирующую печень крыс используют на 4-12 часу после частичной гепатэктомии, а в случае использования регенерирующих конечностей земноводных на стадии образования бластемы.

Для получения предлагаемого средства каждую из указанных тканей после предварительного измельчения до состояния фарша гомогенизируют в тройном объеме забуференного физиологического раствора в гомогенизаторе до полного разрушения клеток и получения однородной массы. Гомогенат очищают от неразрушенных элементов ткани и целых клеток путем фильтрации и/или центрифугирования при ускорении 150-250 g в течение 10-15 мин, а из очищенного гомогената выделяют осадок, содержащий клеточные мембраны, который подвергают гидролизу.

Очистку от неразрушенных элементов ткани обеспечивают в процессе центрифугирования в диапазоне ускорений 150-250 g в течение 10-15 мин, что объясняется тем, что при более высоких ускорениях и большей продолжительности процесса происходит осаждение клеточных мембран, а при ускорениях менее 150 g очистка малоэффективна.

Очистку от неразрушенных элементов можно также обеспечить фильтрованием на крупнопористом фильтре, например через несколько слоев марли, через хлопчатобумажную ткань (бязь) или через капроновые сетки.

Осадок, содержащий клеточные мембраны, выделяют из очищенного гомогената путем центрифугирования при ускорении 1500-90000 g в течение 20-60 мин и/или фильтрацией.

Выбор диапазона ускорений обусловлен условиями выделения необходимой фракции клеточных мембран, при которых выделяют максимальное количество плазматических клеточных мембран.

При ускорениях, меньших 1500 g, выделение мембран неэффективно, а свыше 90000 g осаждаются также и другие балластные клеточные образования, ухудшающие качество БАС.

Для повышения эффективности целевого продукта осадок клеточных мембран очищают от сорбированных и заключенных внутри везикул и органелл компонентов экстракта тканей. С этой целью осадок промывают путем многократного суспенди- рования в свежей порции буферного раствора или дистиллированной воды с последующим повторным центрифугированием и/или фильтрацией до получения осадка, содержащего клеточные мембраны в количестве не менее 60 мас. от представленных в нем органических соединений.

Относительное содержание клеточных мембран в осадке, выделенном для проведения гидролиза, определяют по содержанию белков и углеводов в осадке и супернатанте, полученных в процессе ресуспендирования и центрифугирования при ускорении 100000-150000 g в течение 40-60 мин.

Эффективность целевого продукта значительно повышается при увеличении содержания в нем компонентов плазматических клеточных мембран. С этой целью осадок, содержащий клеточные мембраны, перед гидролизом дополнительно ресуспендируют и центрифугируют при ускорении 20000-100000 g в течение 1-2 ч в градиенте плотности, например, сахарозы, фикола, перкола и тому подобных соединений с выделением плазматических клеточных мембран.

При использовании сахарозы фракцию плазматических мембран клеток отбирают в диапазоне плотности d 1,14-1,18 согласно известным методам (H.M.Berman, W. Gram, M.A.Spirtes. Biochimistry et biophisical acta. 1969, v.183, 1, p. 10-18; J.Gurd, W.Evans, H.Perkins. Biochemistry Journal. 1973. v. 135, 4, p. 827-832; G.Schapira, J.Dobocz. Biochimistry et biophisical acta. 1974, v. 345, 3, p. 348-358).

Полученную фракцию плазматических мембран отмывают от сахарозы и сорбированных компонентов экстракта путем центрифугирования с физиологическим раствором при ускорении 20000-100000 g в течение 20-40 мин и получают осадок, содержащий плазматические клеточные мембраны.

Полученные осадки, содержащие клеточные и/или плазматические клеточные мембраны после ресуспендирования в физиологическом и/или буферном растворе подвергают гидролизу, продукты которого фильтруют и/или центрифугируют при ускорении свыше 1500 g с выделением супернатанта продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран, в качестве целевого продукта.

Эффективность целевого продукта возрастает при использовании компонентов клеточных мембран в виде низкомолекулярных компонентов. Это позволяет с одной стороны избежать проявления нежелательных побочных явлений, а с другой получить препарат широкого профиля действия без ограничений на видоспецифичность животных и отвечающий требованиям медицины. С этой целью клеточные мембраны подвергали гидролизу, расщепляющему высокомолекулярные структурные образования клеточных мембран на продукты, содержащие компоненты с меньшей молекулярной массой. Эффективность продуктов гидролиза будет зависеть от специфичности гидролиза, которая в значительной степени зависит от температурно-временных характеристик.

Установлено, что иммуномодулирующее свойство предлагаемого средства, в частности повышение активности макрофагов перитонеального экссудата крыс in vitro максимально в случае проведения гидролиза в диапазоне рабочих температур Т_р 4-45^оС отклонения от которого нежелательны, так как:

при Т_р < 4^оС значительно возрастает продолжительность процесса гидролиза, что снижает экономическую эффективность;

при Т_р > 45^оС происходит снижение активности ферментов, обеспечивающих гидролиз сырья, и ускоряются процессы распада активных компонентов, в результате чего снижается качество целевого продукта.

Продолжительность гидролиза устанавливают по достижению максимального уровня иммуностимулирующего эффекта (свойств) заявляемого средства, в частности, по активации макрофагов перитонеального экссудата согласно НСТ-тесту.

Продолжительный гидролиз проводят в присутствии консерванта.

Повышение относительного содержания (относительной концентрации) низкомолекулярных компонентов в продуктах гидролиза по отношению к содержанию высокомолекулярных термолабильных соединений обеспечивают термообработкой гидролизата до полной денатурации термолабильных соединений, которые затем удаляют в виде осадка центрифугированием при ускорении не менее 1500 g в течение 20-40 мин и/или фильтрацией. Супернатант, содержащий термостабильные компоненты, используют в качестве целевого продукта.

Термообработку продуктов гидролиза ведут в диапазоне температур Т_н= 60-120^оС, так как выход за пределы этого диапазона приводит к уменьшению специфической активности БАС.

Так, при температуре Т_н < 60^оС не все белки подвергаются денатурации, вследствие чего в целевом продукте содержание термолабильных соединений будет повышенным. За счет этого специфическая активность средства будет сниженной. При температуре Т_н > 120^оС происходит скачкообразное увеличение скорости структурных изменений в пептидных и углеводных компонентах целевого продукта, что также снижает его качество.

После термообработки выделение термостабильных компонентов осуществляют центрифугированием при ускорении не менее 1500 g, в течение 20-40 мин, так как при уменьшении величины ускорения существенно снижается степень удаления денатурированных термолабильных соединений, а проведение его в течение 20-40 мин является наиболее оптимальным.

Коагулированные денатурированные термолабильные соединения можно отделить от супернатанта фильтрованием через бумажный фильтр.

Целевой продукт, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, обладает большей специфической активностью по сравнению с супернатантом продуктов гидролиза и позволяет решать более широкий спектр задач. Он может быть применен в качестве инъекционного средства как в ветеринарии, так и в медицине.

Дальнейшее повышение специфической активности БАС достигается выделением низкомолекулярных компонентов с молекулярной массой М 10,0 кДа из продуктов гидролиза путем диализа через полунепроницаемую пленку, и/или ультрафильтрацией, и/или гельфильтрацией, что позволяет полностью удалить высокомолекулярные соединения, способные вызывать побочные эффекты.

Как уже отмечалось выше, эффективность БАС в значительной мере определяется содержанием углеводсодержащих компонентов клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа. В связи с этим для получения целевого продукта с наиболее высокой специфической активностью из низкомолекулярной фракции путем аффинной хроматографии на лектинах выделяют углеводсодержащие компоненты в виде гликопептидов, гликолипидов, олигоуглеводов, нуклеотидов, а также свободных моноуглеводов, которые используют в качестве целевого продукта.

Достигаемая таким образом повышенная величина эффективности целевого продукта и отсутствие побочных эффектов позволяют широко использовать полученный целевой продукт в медицине.

БАС в качестве действующего начала используется для приготовления лекарственного препарата, где его концентрация зависит от цели использования препарата. Для выпойки и подкормки животных концентрация БАС в используемом препарате невысока и возрастает в препаратах для инъекционного применения, а также в мазях, гелях и порошках.

В зависимости от назначения препарата в них используют различные наполнители. Так, в препаратах для инъекций, ингаляций, аппликаций и интраназального использования применяют физиологический раствор натрия хлористого или солевой буферный раствор. Углеводные соединения в качестве наполнителя применяются в препаратах, предназначенных для подкормки пчел (например, 10%-ный сахарный сироп) или для приготовления гелей (например, мед, соки и мякоть растений). Для мазей в качестве наполнителя применяют жиры минерального, животного, растительного или синтетического происхождения и их смеси.

П р и м е р 1. Для изготовления заявляемого биологически активного средства в качестве сырья была использована эмбриональная ткань крупного рогатого скота на стадии первой половины беременности коров. Из эмбрионов после дезинфицирования в слабом растворе перманганата калия (KMn₇O₄) вырезали кожную и мышечную ткань, печень, селезенку, поджелудочную железу, почки, легкие и сердце, которые подвергали измельчению и гомогенизации. Затем 10 кг фарша смешивали с 30 кг сантимолярного фосфатного солевого буферного раствора (0,01 М PВS) рН 7,2, содержащего сантимолярный двузамещенный фосфат натрия и пятнадцатисантимолярный раствор натрия хлористого (0,01 М Na₂HPO₄ и 0,15 M NaCl) и подвергали гомогенизации на коллоидной мельнице до получения однородной массы. Неразрушенные элементы ткани удаляли в виде осадка после центрифугирования при ускорении 150 g в течение 15 мин. Супернатант после удаления флотированного жира фильтрованием через хлопчатобумажную ткань (бязь) подвергали центрифугированию при ускорении 1500 g в течение 60 мин. Полученный осадок, содержащий клеточные мембраны в количестве 60% от представленных в нем органических соединений, ресуспендировали в 15 кг сантимолярном фосфатном буфере (0,01 М PВS) и центрифугировали при ускорении 5000 g в течение 40 мин. Осадок вновь ресуспендировали в 7,5 кг дистиллированной воды и центрифугировали при ускорении 20000 g в течение 30 мин, после чего операцию ресуспендирования в воде повторяли еще раз и центрифугировали 40 мин. Осадок 4-й раз ресуспендировали в 7,5 кг сантимолярном фосфатном буфере (0,01 М PВS) и центрифугировали при ускорении 20000 g в течение 20 мин.

Промытый таким образом осадок, содержащий 90% клеточных мембран, после суспендирования в 5,0 кг сантимолярном фосфатном солевом буферном растворе (0,01 М PВS) и добавления консерванта (хинозол) до конечной концентрации 0,08 мас. подвергали гидролизу при температуре 4^оС в течение 6 недель.

Полученный гидролизат центрифугировали при ускорении 1500 g в течение 40 мин с выделением супернатанта продуктов гидролиза, содержащих компоненты клеточных мембран в качестве целевого продукта, состав органических соединений которого и вызываемая им специфическая активность в виде количественного показателя эффектов БАС представлены в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, использовали интраназально в качестве лекарственного препарата для лечения маститов у женщин. В каждую ноздрю вносили по 2 капли препарата с последующим массажем для растекания по слизистой. Процедуру повторяли 2-3 раза в день. Лечебный эффект проявлялся через 1-3 дня и его контролировали по состоянию груди (по наличию уплотнений, гнойных выделений) и анализу крови.

П р и м е р 2. Эмбриональную ткань, полученную так же, как в примере 1, подвергали измельчению и гомогенизации в тройном объеме физиологического раствора натрия хлористого на гомогенизаторе с ножевыми блендерами до получения однородной массы разрушенных клеток. Для удаления неразрушенных элементов ткани, в том числе элементов соединительной ткани, гомогенизированную массу центрифугировали при ускорении 250 g в течение 10 мин. После центрифугирования осадок удаляли, а полученный супернатант фильтровали через хлопчатобумажную ткань и подвергали повторному центрифугированию при ускорении 90000 g в течение 20 мин. Выделенный в результате центрифугирования осадок ресуспендировали в половинном, от первоначального, объеме физиологического раствора и центрифугировали при тех же условиях. После этого осадок дважды ресуспендировали в дистиллированной воде и один раз в физиологическом растворе с последующим центрифугированием при ускорении 90000 g в течение 20 мин. Полученный таким образом осадок, содержащий клеточные мембраны, ресуспендировали в 4-х объемах физиологического раствора и после добавления консерванта до конечной концентрации 0,08 мас. подвергали гидролизу при температуре Т_р 20^оС в течение 8 дней.

Полученный гидролизат центрифугировали при ускорении 15000 g в течение 20 мин с выделением супернатанта, содержащего компоненты клеточных мембран, в качестве целевого продукта, состав органических соединений которого и вызываемая им специфическая активность в виде количественного показателя эффекта БАС представлены в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, смешивали с 5 объемами физиологического раствора натрия хлористого и использовали в качестве лекарственного препарата в виде компрессов для лечения варикозного расширения вен на ногах. Компрессы накладывали на ночь ежедневно. Лечебный эффект появлялся на 5-14 день и его контролировали по состоянию сосудов, отечности ног и болевым ощущениям.

П р и м е р 3. Гомогенизацию эмбриональной ткани осуществляли так же, как и в примере 2. Для удаления неразрушенных элементов ткани гомогенизированную массу фильтровали через хлопчатобумажную ткань (бязь) на нутч-фильтре под вакуумом. Затем 50 кг фильтрата подвергали ультрафильтрации на полых волокнах ВПУ-100-ПА (ТУ 6-12-151-87) аппарата АР-2,0. В процессе рециркуляции через полые волокна из гомогената удаляли экстракт ткани, компоненты которого имели молекулярную массу М < 100 кДа, а высокомолекулярные соединения концентрировали. Гомогенат массой 50 кг концентрировали до получения суспензии клеточных мембран, масса которой составила 5 кг. Суспензию затем размешивали в 45 кг физиологического раствора и вновь концентрировали, очищая таким образом фракцию клеточных мембран от компонентов экссудата с молекулярной массой М < 100 кДа. Эту операцию проводили 4 раза. Полученная суспензия содержала 60 мас. клеточных мембран от представленных в ней органических соединений. После добавления 10 кг физиологического раствора подвергали аутолизу при температуре 45^оС в течение 48 ч.

Полученный гидролизат фильтровали на бумажном фильтре, а фильтрат, содержащий компоненты клеточных мембран, использовали в качестве целевого продукта, состав органических соединений которого и вызываемая им специфическая активность в виде количественного показателя эффекта БАС представлены в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, смешивали с 9 объемами огуречной мякоти и использовали в качестве лекарственного препарата в виде гелевой маски для лица в косметических целях. При длительном хранении в гель добавляли консервант (нипагин и нипазол в соотношении массовых частей 5:1) в конечной концентрации 0,1 мас. Гель накладывали на лицо на 2-3 ч. Процедуру повторяли 1-2 раза в неделю. Лечебный эффект проявлялся после 2-6 сеансов и его контролировали по состоянию кожи.

П р и м е р 4. Гомогенат эмбриональной ткани, очищенный от неразрушенных элементов ткани в примере 3, подвергали фильтрации на полых волокнах GF/S, задерживающих частицы с размером свыше 1 мкм. Все последующие операции проводили так же, как и в примере 3, и в результате получали целевой продукт, обладающий таким же составом и свойствами.

П р и м е р 5. Осадок, содержащий клеточные мембраны, полученный в примере 1 после 4-х кратной промывки, суспендировали в концентрированном растворе сахарозы с конечной плотностью полученной суспензии d₁ > 1,25, которую подвергали ультрацентрифугированию при ускорении 100000 g в течение 60 мин в ступенчатом градиенте плотности сахарозы d₁ > 1,25; d₂ 1,20; d₃= 1,18; d₄ 1,16; d₅ 1,14; d₆ 1,12. Фракцию плазматических мембран отбирали в интервале плотности сахарозы, величина которой составляла d 1,18-1,14. Затем отмывали мембраны от сахарозы путем центрифугирования в физиологическом растворе при ускорении 20000 g в течение 60 мин. Осадок ресуспендировали в 4-х кратном объеме сантимолярного фосфатного солевого буферного раствора (0,01 М PВS) рН 7, 2 и после добавления консерванта до конечной концентрации 0,08 мас. суспензию плазматических клеточных мембран подвергли гидролизу при температуре Т_р 4^оС в течение 6 недель.

Полученный гидролизат ценрифугировали при ускорении 1500 g в течение 40 мин с выделением супернатанта, содержащего компоненты плазматических клеточных мембран в качестве целевого продукта, состав органических соединений которого и вызываемая им специфическая активность в виде количественного показателя эффекта БАС представлены в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для ингаляций при лечении бронхопневмонии. Ежедневно на ночь через ингалятор делали 10-15 резких вдохов ртом и выдохов через нос. Лечебный эффект проявлялся через 2-8 дней и его контролировали по состоянию легких и анализу крови.

П р и м е р 6. Суспензию клеточных мембран в сахарозе с конечной плотностью d > 1,25, полученную в примере 5, подвергали центрифугированию при ускорении 20000 g в течение 2 ч в таком же ступенчатом градиенте сахарозы. Все последующие операции проводили так же, как и в примере 5, с получением целевого продукта, обладающего таким же составом и свойствами.

П р и м е р 7. Для определения содержания компонентов клеточных мембран в процентном отношении (по массе) к компонентам соединительной ткани и экстракта БАС, полученном в примерах 1-6, проводили аминокислотный анализ, а также определяли количество белков и углеводов в осадке и супернатанте, полученных ультрацентрифугированием суспензии клеточных мембран при ускорении 100000-150000 g в течение 60 мин до проведения операции гидролиза.

Соотношение количества белка во всем осадке и количества белка во всем супернатанте указывало на соотношение по белку компонентов клеточных мембран к белкам экстракта.

Содержание белка в осадке и супернатанте проводили после ультрацентрифугирования суспензии. После удаления cупернатанта к 0,1 мл осадка добавляли 4,9 мл физиологического раствора и после суспендирования отбирали 0,1 мл для определения количества белка фотометрически по интенсивности окраски раствора, согласно методу SDS-Лоури (U.K.Laemmli. Nature. 1970, v. 227, 5259, p. 680-685).

Для определения количества белка в супернатанте отбирали 0,1 мл. При белковом анализе средства, полученном в примерах 1, 2 и 5, содержание компонентов клеточных мембран составляло 88 8% в примере 3 70 10%

Компоненты соединительной ткани определяли аминокислотным анализом по наличию оксилизина и оксипролина. В предлагаемом БАС эти аминокислоты отсутствовали.

Определение количества углеводов в исследуемых образцах проводили согласно антроновой реакции (S.Seifter, S.Dayton, C.Hovic Arch. Biochemistry and Biophysical, 1950, 25, 1, p. 191-200). При этом учитывали общее содержание углеводов после гидролиза и содержание свободных углеводов в виде мономеров. По разнице значений величины в этих измерениях определяли количество свободных углеводов в составе различных соединений.

Для проведения общего гидролиза брали 1,0 мл исследуемого образца и смешивали с 1 мл четырехнормального раствора соляной кислоты (4,0 N HCl). Гидролиз осуществляли при температуре 105^оС в течение 2 ч. После чего гидролизат упаривали в эксикаторе с сухим едким натром (NaOH) под вакуумом. Высушенную пробу растворяли в 1,0 мл дистиллированной воды и использовали для анализа.

Определение количества свободных углеводов непосредственно в БАС или после кислотного гидролиза проводили следующим образом: 1 мл пробы смешивали с 1 мл дистиллированной воды, после чего добавляли при постоянном перемешивании при температуре -5^оС 4 мл 0,2%-ного антронового реактива, приготовленного на 95%-ной серной кислоте (H₂SO₄), Полученную смесь кипятили при температуре 95^оС в течение 10 мин и после охлаждения определяли оптическую плотность на длине волны 620 нм. В качестве стандарта применяли глюкозу в концентрации 20 мкг/мл.

Содержание концентрации углеводов, входящих в состав структурных соединений с молекулярной массой М > 0,8 кД, в заявляемом БАС, полученном в примерах 1, 2, 3 и 5 соответственно, составляло 20,5% 24,5% 12,5% и 26,4% по отношению к остальным тканевым ингредиентам.

Здесь и далее по тексту значение экспериментально определенных величин выражено их средними значениями с пределами отклонений от среднего, вычисленными с учетом критерия Стьюдента.

П р и м е р 8. Супернатант гидролизата, полученный в примере 1, подвергали термообработке при различных температурах нагрева (термообработки) Т_н1 55^оС, Т_н260^оС, Т_н3 95^оС, Т_н4 120^оС и Т_н5= 135^оС. Нагрев вели до полной денатурации термолабильных соединений в составе продуктов гидролиза, затем центрифугировали при ускорении свыше 1 500 g в течение 30 мин с выделением супернатанта, содержащего термостабильные компоненты клеточных мембран в качестве целевого продукта. Полученный целевой продукт в каждом случае обладал своим иммуномодулирующим эффектом, значения которого указаны в табл.3, где представлена специфическая активность (активация макрофагов) в зависимости от выбранного диапазона температуры нагрева гидролизата и за пределами этого диапазона. Оптимальной является температура нагрева Т_н 95^оС, при которой получаемый целевой продукт обеспечивал максимальное, по сравнению с контролем, усилие ферментативной и фагоцитарной активности, которое соответственно составляло 102,3 5,5% и 92,1 7,4% При Т_н 55^оС повышение величины специфической активности в сравнении с контролем составляет в среднем 76,8 4,6% по НСТ-тесту и 53,8 5,1% по фагоцитозу. При Т_н > 120^оС происходит скачкообразное увеличение скорости структурных изменений пептидов и углеводсодержащих соединений, приводящие к структурным изменениям компонентов целевого продукта, что отражается на снижении величины специфической активности средства. Так, при Т_н 135^оС повышение специфической активности заявляемого средства по сравнению с контролем составляет в среднем 68,4 5,0% по НСТ-тесту и 66,2 6,1% по фагоцитозу. Максимальная величина специфической активности БАС по сравнению с контролем обеспечивается в диапазоне температур Т_н 60-120^оС, при котором повышение активности макрофагов перитонеального экссудата крыс (in vitro) составляет в среднем 102,3 5,5% по усилению ферментативной активности (НСТ-тест), а по усилению фагоцитарной активности (по E.Coli 92,1 7,4%).

П р и м е р 9. Супернатант гидролизата, полученный в примере 1, подвергали термообработке кипячением при температуре нагрева Т_н 95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения центрифугировали при ускорении 1500 g в течение 40 мин. Осадок в виде денатурированных соединений удаляли, а в качестве целевого продукта использовали супернатант, который содержал термостабильные компоненты клеточных мембран. Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения дерматозов в виде мази, которую готовили путем смешивания ланолина, вазелина и целевого продукта БАС в соотношении 1:3:1 массовых частей. Мазь втирали в кожу ежедневно. Лечебный эффект проявлялся через 2-8 дней и его контролировали по состоянию кожи.

П р и м е р 10. Гидролизат, полученный в примере 1, подвергали термообработке кипячением при температуре нагрева Т_н95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения центрифугировали при ускорении 1500g в течение 40 мин. Осадок в виде денатурированных соединений удаляли, а супернатант, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, использовали в качестве целевого продукта, обладающего таким же составом и свойствами, как в примере 9.

П р и м е р 11. Супернатант гидролизата, полученный в примере 3, подвергали термообработке при температуре Т_н 95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения фильтровали через фильтровальную бумагу на нутч-фильтре. Фильтрат, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, использовали в качестве целевого продукта.

Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт лиофильно высушивали и использовали сублингвально в качестве лекарственного препарата для лечения маститов у женщин. Процедуру выполняли ежедневно. Лечебный эффект проявлялся через 1-3 дня и его контролировали по состоянию груди (по наличию уплотнений, гнойных выделений) и анализу крови.

П р и м е р 12. Гидролизат, полученный в примере 3, подвергали термообработке при температуре Т_н 95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения фильтровали через фильтровальную бумагу на нутч-фильтре. Фильтрат, содержащий термостабильные компоненты клеточных мембран, использовали в качестве целевого продукта, обладающего таким же составом и свойствами, как в примере 11.

П р и м е р 13. Супернатант гидролизата, полученный в примере 5, подвергали термообработке кипячением при температуре нагрева Т_н 95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения центрифугировали при ускорении 50000 g в течение 20 мин. Осадок в виде денатурированных соединений удаляли, а в качестве целевого продукта использовали супернатант, который содержал термостабильные компоненты плазматических клеточных мембран.

Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количвестве 0,5 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарстенного препарата для лечения маститов коров в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела каждый третий день. Лечебный эффект проявлялся после 1-4 инъекции и его контролировали по состоянию вымени и количеству гнойных выделений из сосков.

П р и м е р 14. Гидролизат, полученный в примере 5, подвергали термообработке кипячением при температуре нагрева Т_н95^оС до полной денатурации термолабильных соединений и после охлаждения центрифугировали при ускорении 50000 g в течение 20 мин. Осадок в виде денатурированных соединений удаляли, а в качестве целевого продукта использовали супернатант, который содержал термостабильные компоненты, обладающие таким же составом и свойствами, как в примере 13.

П р и м е р 15. Супернатант гидролизата, полученный в примере 1, подвергали фракционированию на ультрафильтрационной установке "Amicon" с использованием ультрафильтров, пропускающих соединения с молекулярной массой, меньшей или равной: 50,0 кДа; 10,0 кДа; 5,0 кДа; 1,0 кДа; 0,8 кДа и 0,5 кДа.

Биологическую активность полученных фракций, содержащих соединения с молекулярной массой: 1) М₁ > 50,0 кДа; 2) 10,0 кДа < М₂ < 50,0 кДа; 3) М₃ < 10,0 кДа; 4) М₄ < 5,0 кДа; 5) М₅ < 1,0 кДа; 6) М₆ < 0,8 кДа и 7) М₇ < 0,5 кДа, анализировали по их способности активировать макрофаги перитонеального экссудата крыс согласно НСТ-тесту. Результаты исследований сведены в табл.4.

Анализ данных табл.4 позволяет сделать следующие выводы:

1) распределение специфической активности по фракциям имеет выраженный максимум, который приходится на диапазон молекулярных масс от 0,8 до 10,0 кДа;

2) снижение специфической активности при молекулярной массе М > 10,0 кДа связано с усилением влияния ингибиторов в целевом продукте и снижением концентрации активной субстанции;

3) снижение специфической активности при молекулярной массе М < 0,8 кДа связано со снижением концентрации активной субстанции, представленной в виде олигомерных соединений с М > 0,8 кДа.

П р и м е р 16. Супернатант гидролизата, полученного так же, как и в примерах 1 и 9, подвергали ультрафильтрации на полых волокнах ВПУ-15-ПА (ТУ 6-12-151-87) аппарата АР-2,0. Полученный ультрафильтрат, содержащий низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М < 10,0 кДа, использовали в качестве целевого продукта, который содержал низкомолекулярные компоненты клеточных мембран с М < 10,0 кДа.

Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения экспериментального гепатита крыс в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела через день (характер и результаты лечения более подробнро изложены в примерах 42 и 43).

П р и м е р 17. Гидролизат, полученный в примере 3, подвергали диализу в течение 16-24 ч через целлофановую пленку против физиологического раствора, 1 кг которого содержал 0,8 г консерванта. Полученный диализат использовали в качестве целевого продукта, который содержал низкомолекулярные компоненты клеточных мембран с молекулярной массой М 10,0 кДа.

Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Полученный целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для нормализации параметров гомеостаза у телят в виде инъекций, которые вводили внутримышечно телятам с отклонениями от нормы в дозе 0,05 мл/кг массы тела каждые 1-2 мес. Контроль эффекта осуществляли ежемесячным взвешиванием животных, результаты которого свидетельствовали о повышении на 60-100% среднесуточных привесов по сравнению с контрольной группой необработанных препаратом животных. П р и м е р 18. Супернатант гидролизата, полученного так же, как и в примерах 5 и 13, подвергали ультрафильтрации на полых волокнах ВПУ-15-ПА (ТУ 6-12-151-87) аппарата АР-2,0. Полученный ультрафильтрат, содержащий низкомолекулярные компоненты с молекулярной массой М 10,0 кДа, использовали в качестве целевого продукта, который содержал низкомолекулярные компоненты плазматических клеточных мембран с М 10,0 кДа.

Содержание органических соединений в продуктах гидролиза и показатели специфической активности полученного средства, определенные экспериментально, указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата в виде инъекций для лечения экспериментальной язвы желудка крыс. 20 ежедневных инъекций осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг и 0,5 мл/кг массы тела (характер и результаты лечения более подробно изложены в примере 44).

П р и м е р 19. Супернатант гидролизата, полученный в примере 1, подвергали гель-фильтрации в сефадексе G-25 на колонке диаметром d 26 мм и длиной h 600 мм, уравновешенной децимолярным (0,01 М) фосфатным буфером рН 7,2, содержащим пятнадцатисантимолярный хлористый натрий (0,15 М NaCl). Фракционирование супернатанта гидролизата согласно молекулярным массам осуществляли путем элюирования колонки тем же буферным раствором и контролировали хроматографический профиль элюата спектрометрически при длине волны 280 нм. Фракция низкомолекулярных компонентов гидролизата, содержащего компоненты клеточных мембран, элюировалась в качестве целевого продукта, обладающего таким же составом и свойствами, как в примере 16.

П р и м е р 20. Фракцию низкомолекулярных комопнентов, полученную в примере 16, подвергали аффинной хроматографии на Кон-А-Сефарозой фирмы Pharmacia. Колонку диаметром 2 см и длиной 10 см, заполненную Кон-А-Сефарозой, подготавливали к работе согласно рекомендациям фирмы.

После промывки посадочным буферным раствором, содержащим двадцатимиллимолярный трис-солянокислый буфер (0,02 М Трис-HCl) рН 7,4 и полуторадецимолярный хлористый натрий (0,15 М NaCl), Кон-А-Сефарозу обрабатывали заряжающим буферным раствором, содержащим децимоляр- ный натрий-ацетатный буфер (0,1 М СН₃ COONa) рН 6,5, миллимолярный хлористый кальций (1 мМ CaCl₂), миллимолярный хлористый магний (1 мМ MgCl₂) и одномолярный хлористый натрий (1 М NaCl), а затем повторно промывали посадочным буферным раствором. Фракцию низкомолекулярных компонентов, полученную в примере 16, после титрования до рН 7,4, наносили на колонку и промывали посадочным буфером до полного удаления несорбированных соединений.

Выделение углеводсодержащих компонентов, аффинносвязанных с Кон-А-Сефарозой, проводили децимолярным натрий-ацетатным буфером (0,1 М CH₃COONa) рН 3,5, в физиологическом растворе натрия хлористого. Контроль элюции осуществляли спектрофотометрически при длине волны 280 нм. Афинно выделенную фракцию с углеводсодержащими компонентами клеточных мембран после нейтрализации ее кислотности раствором едкого натра (NaOH) до рН 7,4 и добавления консерванта в конечной концентрации 0,08 мас. получали в качестве целевого продукта, состав органических соединений которого и вызываемая им специфическая активность представлены в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения воспаления яичников в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела через день. Лечебный эффект проявлялся через 6-10 инъекций и его контролировали по параметрам воспалительной реакции.

П р и м е р 21. Фракцию низкомолекулярных компонентов, полученную в примере 18, подвергали аффинной хроматографии на Кон-А-Сефарозе так же, как и в примере 20. Содержание органических соединений в продуктах гидролиза, содержащих компоненты плазматических клеточных мембран и количественные показатели эффектов БАС указаны в табл.1 и 2.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения сахарной гангрены конечностей у больных диабетом в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела через 1-3 дня. Лечебный эффект проявлялся через 5-15 инъекций и его контролировали по состоянию ткани и сосудов конечностей.

П р и м е р 22. Для определения зависимости эффективности БАС от содержания в нем модифицированных компонентов клеточных мембран использовали сырье из животных тканей, в которых проходили процесс эмбриогенеза, и/или пролиферации, и/или дифференцировки клеток, и/или патологии, предшествовавшей и/или сопутствовавшей регенерации и/или репарации ткани. Полученные ткани обрабатывали так же, как и в примере 9. Свойства целевого продукта, полученного при этом, то есть с использованием ткани каждого из указанных видов модификаций клеточных структур, а именно клеточных мембран, сведены в табл. 5.

Анализ табл. 5 показывает, что наличие иммуномодулирующего эффекта у предлагаемого средства и существенное усиление этого эффекта зависит от используемого сырья, из которого получают продукты гидролиза, содержащие модифицированные компоненты клеточных мембран.

Так, в качестве сырья из животной ткани, взятого именно на стадии пролиферации и дифференцировки клеток, были использованы сперматогонии и сперматоциты семенников крыс, клетки костного мозга, эпителиальная ткань кишечника крыс, а в качестве сырья, с процессами эмбриогенеза была использована эмбриональная ткань крыс. В качестве сырья с процессами патологи, предшествовавшей регенерации, была использована печеночная ткань крыс после частичной гепатэктомии, а с патологией, сопутствующей регенерации ткань регенерирующих конечностей аксолотля, печеночная ткань крыс после подкожного введения четыреххлористого углерода (CCl₄).

Одновременно с полученными экспериментальными данными в таблице 5 для сравнения отражены также сведения по иммунномодулирующему эффекту, полученному при использовании в качестве сырья мышечной и печеночной интактной ткани взрослых особей крыс-самцов.

Анализ данных табл.5 показывает, что иммуномодулирующий эффект заявляемого БАС при использовании тканей, взятых на стадии протекания в них процесса эмбриогенеза, пролиферации и патологии, которая предшествовала и/или сопутствовала регенерации и/или репарации, существенно выше, чем у известных средств, использующих сырье из животной ткани, в котором указанные процессы отсутствовали.

Кроме того, можно также сделать вывод о том, что из тканей, в которых наблюдаются указанные процессы, наибольшим иммуномодулирующим эффектом обладают регенерирующая ткань печени, конечностей аксолотля и эмбриональная ткань.

П р и м е р 23. Для изготовления предлагаемого средства в качестве сырья использовали регенерирующую печень крыс на 4-12 часу после гепатэктомии, выполненной согласно известному методу (G.M.Higgins, R.M.Anderson. Experimental pathology of the liver. Arch. Pathology, 1931, N 12, p. 186).

Печеночную ткань обрабатывали так же, как и в примерах 1, 9 и 16.

Специфическую активность полученных целевых продуктов определяли экспериментально по активации репарационных способностей гепатоцитов печени крыс после поражения четыреххлористым углеродом (CCl₄), при котором активность Na, K-ATФазы восстанавливалась: на 38,6 3,4% при использовании целевого продукта, полученного так же, как в примере 1, на 58,6 4,2% как в примере 9 и на 88,5 8,6% как в примере 16, по сравнению с контрольной группой животных.

Активность аминотрансфераз в крови восстанавливалась, соответственно на: 71,6 10,3% как в примере 1; 89,2 6,2% (9) и 98,7 1,3% (16), а концентрация калия в гепатоцитах печени на 28,4 4,4% (1); 36,8 5,4% (9) и 71,8 8,8% (16).

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения телят больных гепатитом в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела каждый 3 день. Лечебный эффект проявлялся через 4-8 инъекций и его контролировали по активности аминотрансфераз, концентрации билирубина и азота в крови.

П р и м е р 24. Для изготовления предлагаемого средства в качестве сырья использовали жмых семенников быков, полученный после выделения из них лидазы путем экстракции 3%-ной уксусной кислотой гомогената ткани.

Полученный жмых семенников, являющийся отходом производства лидазы, повторно гомогенизировали в тройном объеме физиологического раствора на ножевых гомогенизаторах и центрифугировали при ускорении 250 g в течение 12 мин для удаления неразрушенных элементов ткани. Дальнейшие операции для получения целевого продукта проводили так же, как и в примерах 1, 9, 16.

Специфическую активность полученных целевых продуктов определяли экспериментально по активации макрофагов перитонеального экссудата и нейтрофилов крови крыс. При использовании целевого продукта, полученного так же, как в примере 16, ферментативная активность макрофагов увеличивалась на 125,2 14,1% а фагоцитарная активность по E.coli на 115,4 10,8% Для нейтрофилов крови эти показатели увеличивались на 115,4 14,5% и 83,4 8,6% соответственно.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 1,0 мас. а остальное наполнитель, смешивали с 50 объемами воды и использовали в качестве лекарственного препарата в виде выпойки для нормализации параметров гомеостаза кур. Выпойку препаратом кур с отклонениями указанных параметров от нормы осуществляли в дозе 5 мл/кг массы тела каждые 2-6 недели. Контроль эффекта осуществляли подсчетом яйценоскости, результаты которого свидетельствовали о ее повышении на 20-40% по сравнению с контрольной группой птиц, не обработанных препаратом.

П р и м е р 25. Для изготовления предлагаемого средства, в качестве сырья использовали плацентарную ткань коров, которую обрабатывали так же, как и в примерах 1, 9 и 16.

Специфическую активность полученного целевого продукта определяли экспериментально по активации макрофагов перитонеального экссудата и нейтрофилов крови крыс, по сравнению с контролем. При использовании целевого продукта, полученного так же, как в примере 16, ферментативная активность макрофагов увеличивалась на 183,6 17,4% а фагоцитарная активность макрофагов на 131,4 11,8% Для нейтрофилов крови эти показатели составляли 156,1 17,2% и 111,2 12,3% соответственно.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,5 мас. а остальное наполнитель, использовали в качестве лекарственного препарата для лечения коров, больных эндометритом в виде инъекций, которые осуществляли внутримышечно в дозе 0,05 мл/кг массы тела каждый 3-й день. Лечебный эффект проявлялся через 4-8 инъекций и его контролировали по параметрам воспалительной реакции.

П р и м е р 26. Для изготовления предлагаемого средства в качестве сырья использовали жмых тимуcа, полученный после выделения из гомогената нерастворимых компонентов ткани, которые являются отходом производства тимозина.

Жмых тимуса обрабатывали так же, как и в примерах 1, 9 и 16.

Специфическую активность полученных целевых продуктов определяли экспериментально по стимуляции реакции бласт-трансформации Т-лимфоцитов, которая увеличивалась на 212,4 15,5% по сравнению с контролем, в случае использования целевого продукта, полученного так же, как и в примере 16.

Целевой продукт, содержащий БАС в количестве 0,5 мас. а остальное наполнитель, использовали интраназально в качестве лекарственного препарата для профилактики инфекционных заболеваний человека. В каждую ноздрю вносили по 2 капли препарата с последующим массажем для растекания по слизистой. Процедуру повторяли 2 раза в день. Контроль эффекта осуществляли по общему состоянию организма и температуре тела.

П р и м е р 27. Лекарственный препарат на основе БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли с содержанием указанного БАС в препарате в количестве 0,001 мас. Наполнителем служил 10% -ный раствор сахарозы. Препарат использовали для подкормки пчел. Одноразовая подкормка в количестве 1 литра препарата на пчелиную семью обеспечивала по сравнению с контролем повышение: выживаемости на 100-160% количества вылетов на 150-200% медосбора на 35-85%

П р и м е р 28. Лекарственный препарат на основе БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли после лиофильного высушивания указанного БАС с содержанием его в препарате в количестве 85,0 мас. Наполнителем служил антисептик. Препарат в ви- де приcыпки из лиофильно выcушенного порошка иcпользовали для лечения открытых ран при ожогах, травмах и эрозии cлизиcтой. Иcпользование препарата уcкоряло регенераторные процеccы в 3-10 раз по cравнению c контролем.

П р и м е р 29. Лекарcтвенный препарат на оcнове БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли c cодержанием указанного БАС в препарате в количеcтве 1,0 маc. Hапонителем cлужил гель из раcтительной мякоти типа огуречного, яблочного и перcикового пюре. Препарат иcпользовали для коcметичеcких целей. Лечебный эффект проявлялcя поcле 2-6 cеанcов и его контролировали по элаcтичноcти кожи.

П р и м е р 30. Лекарcтвенный препарат на оcнове БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли c cодержанием указанного БАС в препарате в количеcтве 1,0 маc. Hапонителем cлужил гель на оcнове меда (15 чаcтей), cока лука репчатого (3 чаcти), cока чеcнока (1 чаcть) и репейного маcла (1 чаcть). Препарат иcпользовали в качеcтве маcки для укрепления волоcяного покрова. Гель накладывали на волоcяной покров головы на 2-3 ч. Процедуру повторяли 1 раз в неделю. Лечебный эффект проявлялcя поcле 3-10 cеанcов и его контролировали по cоcтоянию волоcяного покрова.

П р и м е р 31. Лекарcтвенный препарат на оcнове БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли c cодержанием указанного БАС в препарате в количеcтве 1,0 маc. Hапонителем cлужил ланолин в cмеcи cо cпермацетом в cоотношении 1:3. Препарат иcпользовали в виде мази для воccтановления кожного покрова поcле дерматоза. Иcпользование препарата cпоcобcтвовало уcкорению воccтановитель-ных процеccов в 3-6 раз по cравнению c контролем.

П р и м е р 32. Лекарственный препарат на основе БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли с содержанием указанного БАС в препарате в количестве 0,1 мас. Наполнителем служило масло какао. Препарат использовали в виде свечей для лечения эндометритов. Лечебный эффект проявлялся на 10-20 день и его контролировали по показателям воспалительной реакции, гистологическим исследованиям, анализу крови и выделениям.

П р и м е р 33. Лекарственный препарат на основе БАС, полученного так же, как указано в примерах 1-6; 9-14; 16-21 и 23-26, изготовляли с содержанием указанного БАС в препарате в количестве 1,0 мас. Наполнителем служила смесь ланолина с вазелином в соотношении 1:3. Препарат использовали в виде мази для лечения эрозии слизистой и способствовал ускорению восстановительных процессов в 4-8 раз по сравнению с контролем.

П р и м е р 34. Аминокислотный анализ состава БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, проводили в трех направлениях, при которых определяли:

общий аминокислотный состав;

аминокислотный состав пептидов и свободных аминокислот в отсутствие кислотонерастворимых белков;

состав свободных аминокислот.

1) Общий аминокислотный анализ БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, проводили путем гидролиза средства в 6-ти нормальной соляной кислоте (6 N HCl) при температуре 110^оС в течение 24 ч под вакуумом. По окончании гидролиза пробы упаривали под вакуумом над сухим едким натром (NaOH). Сухой остаток разводили в двудецинормальном (0,2 N) натрий-цитратном буферном растворе рН 2,2 и наносили на ионнообменные колонки анализаторов аминокислот.

2) Для удаления кислотонерастворимых белков в 0,5 мл пробы добавляли 0,5 мл 3% -ной сульфосалициловой кислоты, оставляли на 1 ч, в течение которого состав периодически помешивали. Денатурированные белки удаляли центрифугированием при ускорении 8000 g в течение 15-20 мин. Полученный супернатант подвергали общему аминокислотному анализу.

3) Содержание свободных аминокислот в БАС, полученном так же, как в примерах 1-26, определяли после уравновешивания проб двудецинормальным (0,2 N) натрий-цитратным буферным раствором при рН 2,2 и после фильтрации через бумажный обеззоленный фильтр наносили на ионнообменные колонки анализаторов аминокислот.

Элюцию аминокислот из колонок проводили натрий-цитратными буферными растворами с рН 3,25; рН 4,25 и рН 5,28. Фракционированные аминокислоты обрабатывали нингидриновым реактивом и определяли оптическую плотность на проточном фотометре на длине волны 440 и 570 нм.

П р и м е р 35. Содержание общих липидов в БАС, полученном так же, как в примерах 1-26, определяли следующим образом, 0,5 мл БАС смешивали с 1,5 мл концентрированной серной кислоты (H₂SO₄₎ и кипятили при температуре 95^оС в течение 15 мин. После остывания к 0,1 мл гидролизата добавляли 1,5 мл фосфованилинового реактива фирмы Хемапол согласно известному методу определения общих липидов по специфической окраске (J.M.Knight, S.Anderson, J.M.Rawle. Clinical Chemistry 1972. 18, p. 199). Оптическую плотность раствора определяли на длине волны 530 нм.

П р и м е р 36. Анализ нуклеотидного состава БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, проводили следующим образом. Кислоторастворимые пуриновые и пиримидиновые нуклеотиды экстрагировали из 1,5-5,5 мл пробы 5%-ной охлажденной хлорной кислотой (HClO₄). Пробы после 20 мин экстракции на холоду центрифугировали при ускорении 2500 g в течение 10 мин, осадок трижды промывали 5%-ной хлорной кислотой (HClО₄), супернатанты объединяли и использовали для выделения кислоторастворимых нуклеотидов. Кислоторастворимую фракцию гидролизировали одномолярной хлорной кислотой (1 М HClO₄) при температуре 100^оС в течение 1 ч до пиримидиновых монофосфатов и пуриновых оснований. Растворы нейтрализовали едким кали (КОН) и продукты гидролиза разделяли на катионообменнике "ДАУЭКС" 50х4, используя ступенчатую элюцию: дистиллированной водой (Н₂О) для мочевой кислоты и уридинмонофосфата (УМФ); двудецимолярной хлорной кислотой (0,2 М HClO₄) для ксантина и цитозин монофосфата (ЦМФ); четырехдецимолярной хлорной кислотой (0,4 М HClO₄) для гипоксантина; одномолярной хлорной кислотой (1,0 М HClO₄) для гуанина; двумолярной хлорной кислотой (2,0 М HClO₄) для аденина.

Нуклеотиды идентифицировали по хроматографической подвижности на катионообменнике в сравнении со стандартами, а также по спектрам поглощения в области 200-300 нм. Количество нуклеотидов определяли, используя величины коэффициентов молярной экстракции.

П р и м е р 37. Иммуномодулирующую активность (свойства) БАС, полученного так же, как и в примерах 1-26, определяли по активации макрофагов перитонеального экссудата крыс линии Wister в опытах in vitro по усилению ферментативной активности в восстановлении нитро-синего тетразолия в диформазан (НСТ-тест) и по усилению фагоцитарной активности к E.Coli.

В брюшную полость декапитированных животных с помощью иглы со шприцом вводили 20 мл бесцветного раствора Хенкса, содержащего 20 ед/мл гепарина. После 2-3 минутного массажа живота делали надрез и тем же шприцом отсасывали из полости введенную жидкость, которую после фильтрации через нейлоновый фильтр центрифугировали при ускорении 150-200 g в течение 15 мин. Полученный осадок суспендировали в половинном объеме свежей порции раствора Хенкса и вновь центрифугировали при тех же условиях. Промывку выделенных клеток осуществляли 3-4 раза, после чего концентрацию клеток в суспензии доводили до 80 х 10⁶клеток/мл. Содержание макрофагов в тканевом экссудате всех клеток составляло 25-35%

Определение ферментативной активности макрофагов перитонеального экссудата крыс проводили спектрофотометрически по восстановлению нитро-синего тетразолия в диформазан. Осадок клеток перитонеального экссудата крыс разводили бесцветным раствором Хенкса до концентрации 80 х 106 клеток/мл.

К 50 мкл клеточной суспензии добавляли 50 мкл пробы с рН 7,4 и концентрацией пептидов 1,0 мг/мл. Смесь ставили на инкубирование при температуре 37^оС в водяную баню при постоянном встряхивании в течение 30 мин, после чего добавляли 50 мкл насыщенного при температуре 20^оС раствора нитро-синего тетразолия фирмы Reanal (Венгрия) и продолжали инкубировать еще 30 мин. Затем вносили 3 мл ацетона и центрифугировали при ускорении 2000 g в течение 20 мин. Надосадочную ацетоновую вытяжку фотометрировали при длине волны 515 нм.

В качестве контроля сравнения ферментативной активности использовали пробу с консервантом на физиологическом растворе.

Фагоцитарную активность клеток перитонеального экссудата крыс определяли по их способности захватывать E.Coli.

К 50 мкл клеточной суспензии добавляли 50 мкл пробы с рН 7,4 и концентрацией пептидов 0,05 мг/мл. Смесь ставили на инкубирование при температуре 37^оС в водяную баню при постоянном встряхивании в течение 30 мин. По окончании инкубации смесь суспендировали в 10 мл бесцветного раствора Хенкса при температуре 4^оС и центрифугировали при ускорении 150-200 g в течение 15 мин. Осадок клеток перитонеального экссудата крыс разводили раствором Хенкса до концентрации 2,5 х 10⁶ клеток/мл. Полученную суспензию в количестве 0,2 мл наносили на стекло размером 18 х 18 мм и инкубировали при температуре 37^оС в течение 30 мин в атмосфере, содержащей 5%-ный углекислый газ (СО₂) для прикрепления к стеклу макрофагов.

После инкубации для удаления неприкрепившихся клеток стекло ополаскивали 3 раза в стаканах со средой Хенкса. К оставшимся на стекле клеткам добавляли 0,2 мл суспензии E.Coli при концентрации 20 х 10⁶клеток/мл и инкубировали в тех же условиях 45 мин. В дальнейшем стекло вновь трижды ополаскивали, фиксировали метанолом и окрашивали по Романовскому Гимзе.

Индекс фагоцитоза (ИФ) определяли по формуле:

ИФ (0 + 2,5n + 6T + 9p + 10R)/количество клеток, (1) где 0 количество клеток, не фагоцитирующих E.Coli;

n количество клеток, поглотивших 1-4 клетки;

Т количество клеток, поглотивших 5-7 клеток;

р количество клеток, поглотивших 8-9 клеток;

R количество клеток, поглотивших 10 и более клеток E.Coli.

Идентификацию макрофагов проводили по окраске неспецифической эстеразы.

П р и м е р 38. Иммуномодулирующую активность (свойство) БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, определяли по активации нейтрофилов крови крыс линии Wistar в опытах in vitro по усилению ферментативной активности в восстановлении нитро-синего тетразолия в диформазан (НСТ-тест) и по усилению фагоцитарной активности к E.Coli.

Кровь из хвостовой артерии крысы сразу же собирали в пробирки с бесцветным раствором Хенкса на гепарине и перемешивали. К полученной смеси добавляли 6%-ный декстран Т-500 в соотношении 3:1 и пробирки на один час ставили в холодильник. После оседания эритроцитов надосадочный слой лейкоцитов отбирали пипеткой и центрифугировали при ускорении 250 g в течение 15 мин. Удаление эритроцитов из лейкоцитарной массы осуществляли гемолизированием путем суспендирования осадка лейкоцитов в дистиллированной воде, после чего добавляли раствор Хенкса и смесь центрифугировали. Осадок лейкоцитов вновь суспендировали свежим раствором Хенкса и центрифугировали при тех же условиях. Операцию промывки лейкоцитов осуществляли 3 раза.

Определение ферментативной активности нейтрофилов крови проводили спектрофотометрически по восстановлению нитро-синего тетразолия в диформазан.

Осадок лейкоцитов крови крыс разводили бесцветным раствором Хенкса до концентрации 80 х 10⁶ клеток/мл. К 100 мкл клеточной суспензии добавляли 300 мкл БАС, полученного согласно примерам 1-26, рН которого было доведено до 7,4 и концентрация пептидов до 1,0 мг/мл. Смесь ставили на инкубирование при температуре 37^оС в водяную баню при постоянном встряхивании в течение 30 мин, после чего добавляли 400 мкл раствора нитро-синего тетразолия фирмы "Reanal" (Венгрия) и дальнейшие операции проводили в той же последовательности, что и в примере 37.

Фагоцитарную активность лейкоцитов крови крыс определяли по их способности захватывать E.coli.

К 50 мкл суспензии лейкоцитов добавляли 50 мкл БАС с рН 7,4 и концентрацией пептидов 0,05 мг/мл. Смесь инкубировали, а затем добавляли 10 мл бесцветного раствора Хенкса при температуре 4^оС и центрифугировали при ускорении 150-200 g в течение 15 мин. Осадок лейкоцитов разводили в 0,3 мл раствора Хенкса и добавляли 0,05 мл суспензии E.Coli при концентрации 500 х 10⁶ клеток/мл, а затем инкубировали 30 мин при температуре 37^оС. После инкубации делали мазки, в которых после окраски количество фагоцитирующих клеток и индекс фагоцитоза (ИФ) подсчитывали так же, как указано в примере 37.

П р и м е р 39. Иммуномодулирующую активность (свойства) БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, определяли в опытах in vivo на мышах линии BALB/C. Животным делали две подкожные инъекции препарата с интервалом два дня в дозе по 0,5 мл/кг массы животного при концентрации пептидов 1,0 мг/мл. Анализ иммуномодулирующих свойств проводили через двое суток после последней инъекции. В каждом опыте использовали не менее 10 животных. Контролем служили животные, обработанные по указанной схеме 0,08%-ным консервантом, растворенным в физиологическом растворе.

Для определения реакции бласттрансформации лимфоцитов в качестве Т-клеточного митогена был использован фитогемаглютинин (ФГА), а в качестве В-клеточного митогена липополисахарид E.coli (ЛПС). Лимфоциты, выделенные из селезенки мышей, инкубировали с данными митогенами в течение 72 ч при температуре 37^оС в атмосфере содержащей 5%-ный углекислый газ (СО₂). Уровень пролиферации клеток оценивали радиометрически по включению ³Н-тимидина. Для этого к культурам добавляли ³Н-тимидин (3,7 х 10⁴ Бк/пробу) и инкубировали в течение 3 ч. Затем пробы наносили на миллипоровые фильтры, трижды промывали средой 199, затем 5%-ным раствором трихлоpуксусной кислоты (ТХУ) и этанолом. Фильтры высушивали, помещали во флаконы со сцинтилляционной жидкостью ЖС-106 и определяли радиоактивность проб с помощью счетчика "Mark-111".

П р и м е р 40. Иммуномодулирующую эффективность (свойства) БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, определяли по стимуляции естественной киллерной активности спленоцитов мышей в опытах ni vivo. Животным делали в течение двух дней две подкожные инъекции препарата в дозе по 0,05 мл/кг массы животного при концентрации в них пептидов 1,0 мг/мл. Анализ иммуномодулирующих свойств проводили на следующие сутки после последней инъекции. В каждом опыте использовали не менее 10 животных. Контролем служили животные, обработанные по указанной схеме 0,08%-ным консервантом, растворенным в физиологическом растворе.

Состояние естественной киллерной активности спленоцитов определяли на клетках лимфомы мышей YAC-12, меченных изотопом хрома ⁵¹Cr. Инкубацию проводили в течение 18 ч при соотношении клеток-мишеней и клеток эффекторов 1: 25 (1 х х10⁵:2,5 х 10⁶ клеток). Специфическое высвобождение изотопа хрома ⁵¹Cr, соответствующее цитотоксической активности эффекторных клеток, вычисляли по следующей формуле:

⁵¹Cr 100,

где максимальное высвобождение обозначает радиоактивность, при которой все клетки лизированы. В качестве контроля для определения усиления естественной киллерной активности предлагаемыми БАС применяли консервант, растворенный в физиологическом растворе.

П р и м е р 41. Иммуномодулирующую эффективность (свойства) БАС, полученного так же, как в примерах 1-26, определяли по функциональной активности тимуса мышей в опытах in vivo в условиях, аналогичных примеру 39.

Эффект воздействия оценивали по титру тимического сывороточного фактора (ТСФ). Метод основан на способности гормонов вилочковой железы восстанавливать чувствительность спонтанных розеткообразующих клеток селезенки взрослых тимэктомированных мышей к антитимоцитной сыворотке.

Сыворотку крови опытных мышей пропускали через ультрафильтр системы CENTRIFLO CF-50A фирмы Amicon. В реакции использовали по 0,1 мл цельной и серийной разбавленной средой 199 сыворотки. Контролем служила среда 199.

Селезенку брали у мышей через 10-14 дней после тимэктомирования. Из нее извлекали клетки путем разволокнения ткани препаративными иглами в среде 199. После фильтрования через капроновое сито их двухкратно отмывали средой 199 центрифугированием при ускорении 4000 g. Осадок ресуспендировали в среде до концентрации 4 х 10⁷ клеток/мл и получали таким образом взвесь в объеме 0,1 мл, которую прибавляли в пробирки с сывороткой и со средой 199. Содержимое пробирок перемешивали пипетированием и инкубировали при температуре 37^оС в течение 60 мин.

После инкубации во все пробирки вносили по 0,1 мл антимоцитной сыворотки и комплемента морской свинки в разбавлении 1:10. Взвесь инкубировали при температуре 37^оС еще 30 мин. Затем к смеси прибавляли по 0,1 мл суспензии эритроцитов барана (12 х 10⁷ клеток/мл), перемешивали, центрифугировали при ускорении 250 g в течение 5 мин и инкубировали 60 мин при температуре 4-8^оС. Осадок в пробирках ресуспендировали в течение 5 мин. Подсчет розеток проводили в камере Горяева. За розетку принимали лимфоцит, присоединивший четыре и более эритроцитов. Титром ТСФ считали последнее разведение сыворотки, вызывающее 50%-ную редукцию числа розеткообразующих клеток (РОК) по отношению к контролю. Результаты выражали в виде логарифма титра при основании 2, то есть в виде log A, где А значение титра.

П р и м е р 42. Эффективность БАС, полученного так же, как и в примерах 1-26, проявляющуюся в усилении репарационных способностей гепатоцитов печени крыс in vivo после подкожного введения четыреххлористого углерода (CCl₄), определяли по восстановлению активности Na, K-ATФазы следующим образом.

Крысам-самцам весом 230-250 г линии Wistar ежедневно в течение 4 дней подкожно вводили четыреххлористый углерод (CCl₄) в смеси с растительным маслом в соотношении 1:1 в дозе 4,0 мл/кг массы животного. Через 4 ч после первой инъекции четыреххлористого углерода (CCl₄) опытным животным осуществляли первую из 4-х подкожных инъекций средства с интервалом в один день в дозе по 0,05 мл/кг массы тела животного. Эффективность средства регистрировали на следующий день после последней его инъекции. При этом в качестве контроля сравнения, использовали печень животных аналогично пораженную четыреххлористым углеродом (CCl₄), но без применения исследуемых БАС, а также печень интактных животных.

Для определения активности Na, К-АТФазы, использовали фракции клеточных мембран гепатоцитов. С этой целью 15 г охлажденной печени трех крыс гомогенизировали в 150 г одномиллимолярного боратного буферного раствора (1 мМ Na₂B₄O₇) с рН 7,5 в присутствии пятидецимиллимолярного раствора хлористого кальция (0,5 мМ CaCl₂), используя ручной стеклянный гомогенизатор с тефлоновым пестиком. Гомогенизированную смесь центрифугировали с ускорением 150 g при температуре 4^оС в течение 10-12 мин. Супернатант подвергали повторному центрифугированию при ускорении 100000 g в течение 20 мин, а полученный осадок 3 раза отмывали в 130 мл буфера при тех же условиях центрифугирования. По окончании отмывки осадок ресуспендировали в буферном растворе, доводя концентрацию белка, согласно методу SDS-Лоури, до 3,0 мг/мл, которую использовали в анализах.

Все операции получения фракции мембран проводили на холоду.

Активность Na, К-АТФазы плазматической мембраны гепатоцитов определяли в стандартной среде, состоящей из: шестидесятишестимиллимолярного хлористого натрия (66 мМ NaCl), тридцатичеты- рехмиллимолярного хлористого калия (34 мМ KCl), пятимиллимолярного хлористого магния (5 мМ MgCl₂), двадцатипятимиллимолярного (25 мМ) Трис-HCl, в которую перед началом опыта добавляли пятимиллимолярную аденозинтрифосфорную кислоту (5 мМ АТФ).

К 1,8 мл указанной стандартной среды добавляли 0,2 мл суспензии фракции мембран с концентрацией по белку 3,0 мг/мл и инкубировали при температуре 37^оС в течение 15 мин, после чего реакцию останавливали, добавляя 0,6 мл 50% -го раствора трихлоуксусной кислоту (ТХУ). Смесь центрифугировали при ускорении 300-500 g в течение 15 мин. К 1,0 мл полученного супернатанта добавляли 4 мл двудецимолярного (0,2 М) ацетатного буфера с рН 4,0, 0,5 мл 1%-го раствора молибдатаммония в 1%-ном растворе серной кислоты (H₂SO₄), 0,5 мл аскорбиновой кислоты в 0,16%-ном растворе медного купороса (CuSO₄) и после перемешивания инкубировали 10 мин при температуре 25^оС. Оптическую плотность определяли спектрометрически при длине волны 700 нм.

Активность Na, K-АТФазы вычисляли по разнице между активностями общей АТФазы и Mg-АТФазы. Для определения активности Mg=АТФазы проводили аналогичные исследования, однако вместо добавления 0,6 мл трихлоруксусной кислоты (ТХУ) в смесь вносили 0,3 мл 0,05%-го раствора строфантина.

Установлено, что при токсическом поражении печени четыреххлористым углеродом (CCl₄) активность Na, К-АТФазы снижается в 3,5 раза, однако при использовании заявляемого БАС, как в примере 16, ее активность восстанавливается в эксперименте не менее, чем на 80% по сравнению с нормой. В этих же условиях известный гепатотропный препарат "Эссенциале" промышленный аналог предлагаемого препарата восстанавливает активность Na, К-АТФазы на 43,0 4,8%

П р и м е р 43. Эффективность БАС, полученного так же, как и в примерах 1-26, которая проявляется в усилении репарационных способностей гепатоцитов печени крыс (in vivo) после подкожного введения четыреххлористого углерода (CCl₄), определяли по восстановлению активности в крови аминотрансфераз и концентрации калия (К) в гепатоцитах печени крыс следующим образом.

У животных, обработанных так же, как в примере 42, активность аминотрансфераз в крови проверяли по тест-системе фирмы Хемапол согласно фотометрическому методу по специфической окраске (S.Reitman, S.Frankel. American Journal of Clinical Pathology. 1957-28-56).

К 0,25 мл раствора, содержащего децимолярный раствор (0,1 М) L-аспартата, двумиллимолярный (0,002 М) 2-оксоглутарата и децимолярный (0,1 М) фосфатный буферный раствор с рН 7,4, добавляли 0,05 мл сыворотки крови крыс и инкубировали при температуре 37^оС в течение 60 мин. По окончании инкубации в раствор добавляли 0,25 мл миллимолярного (0,001 М) 2,4-динитрофенилгидразина, растворенного в одномолярной соляной кислоте (1 М HCl) и пробу оставляли на 20 мин при комнатной температуре, после чего добавляли 2,5 мл четырехдецимолярного (0,4 М) едкого натра (NaOH), перемешивали и через 10 мин измеряли оптическую плотность на длине волны 520 нм против контрольного раствора, где вместо 0,05 мл сыворотки крови вносили 0,05 мл физиологического раствора.

Токсическое выражение печени четыреххлористым углеродом (CCl₄), сопровождается разрушением гепатоцитов и соответственно выходом аминотрансфераз, в связи с чем их активность в сыворотке крови повышается в 2 раза. В то же время использование предлагаемого БАС, как в примере 16, позволяет полностью восстанавливать в эксперименте такую активность.

Известный гепатотропный препарат "Эссенциале" в тех же условиях восстанавливает активность в крови аминотрансфераз на 87,2-7,4%

Концентрацию калия (К+) в гепатоцитах печени экспериментальных крыс определяли стандартным методом пламенной фотометрии, по Бриккеру, на пламенном фотометре марки ПФМ-1 (Бриккер В.Н. Определение содержания К, Na методом пламенной фотометрии. Лабораторное дело, 1961, 7, с. 3-6).

Установлено, что при токсическом поражении печени четыреххлористым углеродом (CCl₄) активность Na, К-АТФазы снижается в 3,5 раза, что сопровождается снижением концентрации К⁺ в гепатоцитах печени крыс на 40% В то же время использование заявляемого БАС, полученного так же, как в примере 16, позволяет восстанавливать концентрацию К⁺ не менее, чем на 55% Известный препарат "Эссенциале" в тех же условиях восстанавливает концентрацию К⁺ в гепатоцитах на 33,0 6,2%

П р и м е р 44. Стимуляция регенераторных процессов при использовании БАС, полученного так же, как в примере 16, и препарата на его основе проводили на экспериментальной модели язвы желудка крыс, вызванной криогенным воздействием.

Крысам-самцам весом 190-200 г под эфирным наркозом производили лапаратомию верхней трети брюшной стенки, выводили желудок и вызывали повреждение его слизистой оболочки криогенным воздействием в течение 10 с охлажденным в жидком азоте металлическим стержнем диаметром 7 мм по известному методу (В. А. Вертелкин, Криогенный способ формирования экспериментальной язвы желудка, Пат. физиол. и эксперим. тер. 1987, N 2, с. 77-78). После этого желудок помещали в брюшную полость и рану зашивали. На 5-й день у животных образовывалась язва, морфологически подобная хронической язве человека, которая без лечения животных заживала на 3-4 неделе.

Эффективность регенераторных свойств предлагаемого БАС и препарата на его основе определяли по ускорению процесса заживления ран по отношению к контрольной группе животных, не подвергавшихся лечению, а также в сравнении с эффектом, вызываемым известным биостимулятором "Солкосерил" фирмы Алколоид-Скопье (Югославия), выпускаемого по лицензии "Solco Basel" (Швейцария). Контроль процесса регенерации осуществляли биохимически на 5, 15 и 25 сут после операции по уровню в язве малонового диальдегида (МДА), патоморфологически по срезам пораженного участка желудка, замерам площади поражения слизистой.

Уровень МДА в пораженной ткани желудка определяли при помощи тиобарбитуровой кислоты и рассчитывали его удельную концентрацию по отношению к 1 мг белка в пробе по известному методу (Стальная И.Д. Современные методы в биохимии. М. 1977, с. 66-68).

Изучение воздействия на регенераторные процессы проводили с использованием препарата, содержащего БАС в количестве 0,1 мас. а остальное наполнитель, полученного так же, как и в примере 16, а наполнителем служил сантимолярный фосфатный солевой буфер (0,01 М PBS) рН 7,2.

Начиная с пятого дня после операции, когда сформировалась язва, животным ежедневно в течение 20 дней делали внутримышечные инъекции по группам:

1) Контроль (0,01 М PBS) в дозе 0,5 мл/кг;

2) Опыт предлагаемое БАС в дозе 0,5 мл/кг;

3) Опыт предлагаемое БАС в дозе 0,05 мл/кг;

4) Лекарственный аналог "Солкосерил" в дозе 0,5 мл/кг.

Интактная группа животных служила эталоном сравнения нормализации параметров гомеостаза.

В ходе проведения эксперимента было отмечено, что на 15 день препарат на основе заявляемого БАС в дозе 0,05 мл/кг восстанавливал уровень МДА по сравнению с контрольной группой животных, не подвер- гавшихся лечению, на 80 12% и оставался выше интактных животных на 78 1,3% а в дозе 0,5 мл/кг нормализовал его до состояния интактных животных. В эти же сроки "Солкосерил" снижал уровень МДА на 38 16% и не оказывал эффекта на 25 сутки, оставаясь на том же уровне, что и у конт- рольных животных, превышая уровень интактных животных на 21 9% В опытных группах N 2 и N 3 на 25 сутки уровень МДА восстанавливался до нормы.

Аналогичные результаты были получены при патоморфологических исследованиях. На 5-е сутки после операции площадь повреждения слизистой желудка крыс составляла 13,0 1,0 мм и на 15 сут у контрольных животных уменьшалась до 9,5 мм.

В группе животных N 2 и N 3 к этому сроку границы зоны поражения смыкались, а в группе N 4 были размыты и слабо выражены.

При гистологических исследованиях срезов пораженных участков желудка отмечалось, что в группе N 2 деструктивные изменения выражены слабее, а репаративные процессы наступали раньше, чем у остальных групп животных.

Края язвы смыкались за счет разрастания межуточной ткани и нехарактерного для данной области слизистой железистого эпителия. Дефект слизистой оболочки полностью замещался структурноперестроенной железистой паренхимой, а гранулярная и зрелая соединительная ткани были умеренно выражены.

Для "Солкосерила" такой эффект проявлялся в меньшей степени и деструктивные нарушения отмечались не только в слизистой, но и в подслизистой оболочке пилоро-антеральной части желудка. Встречались поля с продуктивной воспалительной реакцией, богатые клеточными элементами: фибробластами, плазматическими клетками, гистиоцитами и лейкоцитами. По этим признакам эта группа во многом проявляла сходство с контрольной группой животных.

Таким образом, экспериментальные данные такго характера указывают на способность БАС стимулировать регенераторные процессы, при этом по эффективности он значительно превосходит промышленный аналог широко известный регенераторный биостимулятор "Солкосерил".

Изобретение не ограничивается изложенными конкретными вариантами выполнения. Различные варианты могут быть осуществлены в пределах сущности и объема, охватываемых формулой изобретения.

Идентификация БАС среди других биологически активных средств возможна непосредственно по биохимическому анализу состава и опосредованно по величине иммуномодулирующего эффекта, который проявляет предлагаемое средство.

Установлено, что именно содержание модифицированных компонентов клеточных мембран с модифицированной антигенной структурой в составе БАС обеспечивает существенное усиление иммунной рекации организма по сравнению с контролем. Это позволяет идентифицировать предлагаемое БАС по следующему комплексу показателей:

а) по повышению активности макрофагов перитонеального экссудата крыс, а именно по усилению ферментативной активности макрофагов, контролируемому с помощью НСТ-теста, не менее, чем на 61% (при использовании в опытах нитро-синего тетразолия венгерской фирмы Reanal) и по усилению фагоцитарной активности E.Coli не менее, чем на 49%

б) по повышению активации нейтрофилов крови крыс, а именно по усилению ферментативной активности, контролируемому по НСТ-тесту, не менее, чем на 75% (при использовании в опытах нитро-синего тетразолия венгерской фирмы Reanal) и по усилению фагоцитарной активности E.Coli не менее, чем на 52%

в) по усилению реакции бласттрансформации Т-лимфоцитов не менее, чем на 52% и В-лимфоцитов не менее, чем на 69%

г) по усилению функциональной активности тимуса согласно содержанию в крови крыс тимического сывороточного фактора (ТСФ) не менее, чем на 234%

д) по увеличению естественной киллерной активности спленоцитов крыс не менее, чем на 62%

е) по увеличению способности стабилизировать плазматические мембраны гепатоцитов печени крыс после введения четыреххлористого углерода (CCl₄);

по восстановлению активности Na, К-АТФазы не менее, чем на 30%

по восстановлению активности трансферазы в крови крыс не менее, чем на 61%

по восстановлению соотношения калия (К) и натрия (Na) в гепатоцитах печени крыс не менее, чем на 20%

При этом в качестве базы сравнения использовали контроль в виде вводимого в организм консерванта, растворенного в физиологическом растворе.

Приведенная система показателей иммуномодулирующих и регенераторных эффектов (свойств) предлагаемого БАС позволяет идентифицировать его по проявляемой биологической активности в качестве иммуномодулятора и стимулятора регенераторных процессов.

Для БАС и препарата на его основе наблюдается выраженная тенденция к проявлению эффекта стимуляции регенераторных процессов и восстановления функциональной активности органов и тканей при различного рода патологиях, а также для лечения воспалительных процессов, где его эффективность может значительно превышать эффективность известных БАС и препаратов аналогичного назначения.

Так, активация репаративных процессов в условиях подострого поражения печени на модельной системе гепатита, оказывает защитное действие на плазматические мембраны гепатоцитов со значительным уменьшением синдрома цитолиза (концентрация аминотрансфераз при использовании БАС, полученного так же, как в примере 16, повышается в крови не более, чем на 5% против 110-140% в контроле). Восстанавливается активность мембрано-связанных ферментов (Na, К-АТФаза) на 75-90% в сравнении с контролем, что в значительной степени нормализует внутри- и внеклеточное ионное равновесие K/Na. По этим показателям эффект воздействия предлагаемого препарата превышает эффект воздействия широко известного гепатотропного препарата "Эссенциале", для которого они составляют соответственно 7-20% и 38-48% (примерыя 42, 43). Препарат на основе предлагаемого БАС значительно превосходит "Эссенциале" также и по способности нормализовать концентрацию билирубина, показатели липидного обмена, антитоксическую функцию печени.

Препарат на основе БАС ингибирует процессы перекисного окисления липидов на мембранах гепатоцитов интоксицированных животных и повышает активность глютатионзависимой антиоксидантной системы в крови, не изменяя при этом активность ферментов микросомного окисления печени и содержание цитохрома Р-450.

БАС в значительной степени активирует не только репарационные, но и регенераторные процессы, способствующие восстановлению массы органа и замещению погибших клеток пролиферирующими клетками из оставшейся части органа.

Так, в эксперименте по активации процессов регенерации печени крыс после частичной гепатэктомии было установлено, что четыре инъекции препарата на основе БАС, полученного так же, как в примере 16, введенные животным до операции с интервалом в 2 дня, существенно стимулировали скорость процессов транскрипции, а также выраженность активации ДНК-полимеразного комплекса ядер гепатоцитов, предлагаемый препарат активизирует ДНК-полимеразу В, ответственную за репарацию генетического аппарата клетки, а при процессах пролиферации стимулирует активность ДНК-полимеразы А, ответственную за репликацию. Это позволяет значительно повысить скорость пролиферации клеток и темп восстановительных процессов при регенерации печени.

Значимость такого эффекта следует оценивать с учетом того обстоятельства, что данная модельная система достаточно жестко генетически детерминирована и крайне трудно поддается какой-либо активации.

Активизированные БАС внутриклеточные процессы способствуют нормализации функциональных показателей при патологических процессах, не нарушая при этом функционального состояния и структуры печени у интактных животных.

Данное явление в значительной степени основывается на существенном влиянии в реализации восстановительных процессов иммунной системы организма и, прежде всего, системы мононуклеарных фагоцитов (СМФ), где определяющую роль играют тканевые макрофаги. Для печени такими макрофагами являются Купферовские клетки, которые контролируют регенераторные и репарационные процессы в органе.

Для их стимуляции достаточно нескольких инъекций препарата. После этого уже на следующие сутки отмечается генерализованная реакция всех клеток СМФ и в первую очередь Купферовских клеток, на что указывает увеличение скорости удаления чужеродных веществ из кровяного русла. Повышается антибактериальная активность и завершенность фагоцитоза перитонеальных макрофагнов и нейтрофилов крови, что может иметь существенное значение для лечения и профилактики бактериальных инфекций, а также воспалительных процессов.

Эффект стимуляции регенераторных процессов заявляемым БАС и препаратами на его основе проявляется также при лечении язв, ран, кожного покрова при ранениях и поражениях. В этом отношении их эффективность превосходит аналогичные показатели для его промышленного аналога известного регенераторного биостимулятора Солкосерил (пример 44).

Использование предлагаемого средства и препарата на его основе дало положительные результаты при введении в организм животных при лечении воспалительных процессов. Так, при лечении экспериментально вызванного пролифератив- ного воспаления на модели "карманной" гранулемы по Селье в модификации Розена (Методика воспроизведения стандартного асептического воспаления. Пат. физиол. и эксперим. тер, 1961, 5, N 6, с. 72-76) препарат на основе заявляемого БАС в два раза эффективнее Солкосерила угнетал формирование грануляционно-фиброзной ткани и образование экссудата.

При лечении маститов у коров выздоровление наблюдалось в 80-93% случаев, в то время как при использовании известных БАС, как и при использовании антибиотиков в сочетании с антивоспалительным препаратом Мастисан, выздоровление наблюдалось не более, чем в 70% случаев, а при спонтанном излечивании в контрольной группе в пределах 53-63% случаев. При лечении воспаления легких у телят получены следующие результаты: при использовании БАС выздоровление наступает в 85-95% случаев; при использовании известных БАС в 69% случаев; при лечении антибиотиками и препаратом "Бовиверекс" в 60-70% в контрольной группе в 48-61% случаев. При лечении эндометритов коров выздоровление наблюдалось в 80-95% случаев, в то время как при использовании известных БАС так же, как и антибиотиков с препаратом "Окситоцин", выздоровление наблюдалось не более, чем в 70% случаев.

В процессе эксперимента иммуномодулирующие и регенераторные свойства известных и предлагаемого БАС были определены в соответствии с комплексом показателей, идентифицирующих исследуемые объекты. Результаты эксперимента сведены в таблицу 6, в которой указаны количественные показатели эффектов известных БАС N 1, полученного по технологии, описанной в (US-A-4455302) и БАС N 2, представленного на основе опубликованных в (ЕР-А-0318030) данных, и предлагаемого БАС, представленного в виде групп WS, PM, TS, LM и CW, а именно обобщенных по результатам:

WS примеров 1-4 (компоненты клеточных мембран);

PM примеров 5-6 (компоненты плазматических мембран);

TS примеров 9-14 (термостабильные компоненты клеточных мембран);

LM примеров 16-19 (низкомолекулярные компоненты клеточных мембран М 10,0 кДа);

CW примеров 20-21 (углеводородсодержащие низкомолекулярные компоненты клеточных мембран).

В качестве контрольного объекта использовался физиологический раствор натрия хлористого, содержащий консервант. Полученные результаты сведены в табл.6 и сравнительно характеризуют предлагаемое и известные БАС.

Приведенные результаты касаются характеристик БАС, полученного в виде смеси неустановленной структуры, а также необходимых для его идентификации сведений об эффектах, обуславливающих его назначение.

Наряду с возможностью идентифицировать предлагаемое БАС анализ данных табл. 6 позволяет оценить конкретный результат, обеспечиваемый БАС и заключающийся в существенном улучшении свойств биологической активности в виде количественного показателя за счет наличия в нем компонентов клеточных мембран с модифицированной структурой, влияние которых в известных БАС не выявлено.

Из анализа данных табл. 8 кроме того, следует, что иммуномодулирующий эффект у предлагаемого БАС существенно возрастает в тех случаях, когда оно содержит компоненты плазматических клеточных мембран БАС-РМ, компоненты клеточных мембран в виде термостабильных компонентов БАС-ST, а также в виде низкомолекулярных компонентов БАС-LM и в виде углеводсодержащих компонентов БАС-CW, причем нарастание указанного эффекта в этом ряду идет слева направо.

Свойства предлагаемого БАС и препарата на его основе находятся в тесной зависимости от его состава.

Как показывают результаты биохимического анализа (табл.7), БАС содержит в своем составе в основном такие органические соединения, как полипептиды, пептиды, аминокислоты, связанные и свободные углеводы, липиды, нуклеотиды и другие соединения. Данные табл.7 показывают распределение по массе органических соединений в составе БАС при использовании в качестве исходного сырья эмбриональной ткани крупного рогатого скота. Кроме того, в табл.7 отражены результаты получения разновидностей БАС WS, PM, TS, LM, CW) последовательно всеми предлагаемыми способами. Помимо результатов осуществления способа, который обеспечивает получение БАС-WS и при осуществлении которого в качестве сырья используют животную ткань, взятую на стадии процесса модификации антигенной структуры клеточных мембран ткани с приведенными выше процессами. Табл. 7 включает также результаты осуществления способа получения заявляемого БАС с модифицированными компонентами плазматических клеточных мембран БАС-РМ с компонентами в виде термостабильных компонентов БАС-TS, в виде низкомолекулярных компонентов БАС-LM, а также углеводсодержащих компонентов клеточных мембран БАС-CW, преимущестенно в виде гликопептидов, гликолипидов, олигоуглеводов, нуклеотидов и/или свободных моноуглеводов.

Данные табл. 6 и 7 позволяют провести сравнительный анализ результатов осуществления предлагаемого и известного способов получения БАС, а также их состава и свойств.

Сравнительный анализ показывает, что специфическая активность в виде количественных показателей эффекта БАС зависит от их состава: в известных БАС соотношение ингредиентов состава не обеспечивает требуемого эффекта, в то время как соотношение ингредиентов в предлагаемом БАС существенно повышает специфическую активность.

Характерной особенностью биохимического состава предлагаемого БАС является наличие в нем углеводсодержащих компонентов, в значительной степени определяющих антигенную структуру клеточных мембран ткани при процессах модификации. Именно поэтому содержание углеводов в наиболее активных фракциях (фракции 3, 4 и 5 в табл.4) низкомолекулярных компонентов клеточных мембран с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа (олигоуглероды, гликопептиды, гликолипиды, нуклеотиды) является определяющим при идентификации и характеризации БАС. Существенным показателем в этом отношении является соотношение содержания углеводов и пептидов в компонентах с молекулярной массой М 0,8-10 кДа (таблицы 2 и 7), которое определяют по формуле:

G (3) где С_у и С_n концентрации соответственно углеводов и пептидов в комопнентах с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа.

Для предлагаемого БАС величина этого показателя лежит в пределах G 0,6-2,0, в то время как для известных БАС величина этого показателя не превышает значения G < 0,25.

Таким образом, величина показателя G обобщенно характеризует свойство продуктов гидролиза и зависит от применяемого в предлагаемом способе сырья, от совокупности операций способа обработки указанного сырья и режимов осуществления процессов гидролиза.

Следует отметить, что эффективность целевого продукта зависит от температурно-временных характеристик процесса гидролиза и эта зависимость может быть выражена графически (см. чертеж). Представленные на чертеже кривые 1, 2 и 3 схематически иллюстрируют изменение величины эффективности предлагаемого БАС в зависимости от продолжительности t операции гидролиза, выполняемой при различных значениях рабочей температуры Т_р, так что Т_р1 > Т_р2 > Т_р3.

Для кривой 2 в интервале времени от t 0 до t t₂ величина эффективности Э предлагаемого БАС как совокупность показателей его специфической активности увеличивается от Э 0 до Э R_max, объясняется относительным увеличением в процессе гидролиза доли низкомолекулярных углеводсодержащих компонентов с молекулярной массой М_ун 0,8-10,0 кДа в составе целевого продукта при одновременном снижении доли высокомолекулярных, иммуноингибирующих и балластных соединений.

В интервале времени от t t₂ и t t₄ эффективность уменьшается от Э R_max до Э 0 вследствие того, что продолжение процесса гидролиза приводит к изменению структуры углеводсодержащих компонентов с молекулярной массой М 0,8-10,0 кДа, и прежде всего гликопептидов, в связи с гидролизом их пептидной основы, связывающей несколько олигоуглеводных цепей, а также вследствие модификации самих олигоуглеводов или появления неактивных мономерных форм.

Описанные выше процессы температурозависимы и имеют ярко выраженный максимум, который суммарно (в итоге) выражается максимумом соответствующих кривых 1, и 2 и 3, то есть скорость протекания указанных процессов и, соответственно, константы скорости указанных химических реакций сильно зависят от величины рабочей температуры Т_р в указанном температурном интервале, в котором обеспечивается сохранение функциональной активности ферментов, с помощью которых осуществляется гидролиз исходного сырья. При повышении температуры Т_р максимумы кривых 1, 2 и 3 сдвигаются влево, в сторону начала координат. Поэтому выбор рабочей температуры, точнее диапазона рабочих температур, должен одновременно с этим сопровождаться и выбором интервала времени протекания процесса гидролиза, а именно такого временного интервала, в котором значение эффективности Э имеет величину не менее 0,8 R_max, то есть

Э 0,8R_max (4)

Выбор исходного сырья, продолжительность процесса гидролиза и поддержание рабочей температуры, а также возможность его фиксированного окончания позволяют обеспечивать необходимую, сравнительно более высокую эффективность Э предлагаемого БАС по сравнению с известными БАС.

Кроме того, перечисленные условия позволяют обеспечить воспроизводимость результатов, т. е. позволяют стандарти- зировать получение БАС с заданными свойствами, а именно с заданной фиксированной специфической активностью.

Экспериментально установлено, что иммуномодулирующие свойства БАС, в частности, повышение активности макрофагов перитонеального экссудата крыс in vitro, зависят от температурно-временных характеристик процесса гидролиза в диапазоне рабочих температур Т_р 4-45^оС. Выбор рабочей температуры в указанном диапазоне осуществляют, исходя из следующих данных:

при температуре Т_р < 4^оС значительно возрастает продолжительность процесса гидролиза, что снижает экономическую эффективность заявляемого способа.

при температуре Т_р > 45^оС происходит снижение активности ферментов, обеспечивающих гидролиз сырья, и ускоряются процессы распада активных компонентов целевого продукта. В результате снижается качество целевого продукта и падает экономическая эффективность предлагаемого способа.

Следует отметить, что эффективность БАС во многом зависит не только от наличия в нем необходимой действующей субстанции, но и от всего состава целевого продукта, а, следовательно, и от способа его производства, что указывает на многоплановость оценки качества получаемого средства.

Небольший вклад в иммуномодулирующий эффект вносят углеродсодержащие компоненты в составе фракций (3, 4 и 5 в табл.4), молекулярная масса которых М_ун 0,8-10,0 кДа (олигоуглеводы, гликопептиды, гликолипиды, нуклеотиды). В дальнейшем условно обозначим их как олигоуглеводы (О_у). Однако следует учитывать, что влияние указанных олигоуглеводов на иммуномодулирующее свойство БАС является достаточно сложным и коррелирует с несколькими эффектами.

Так, экспериментально, обнаружено, что величина показателя, обобщенно отображающего величину эффективности, выражается следующим соотношением:

R F x (A + B + C), (5) где R показатель, обобщенно характеризующий величину эффективности как совокупность показателей специфической активности;

F коэффициент, характеризующий степень модификации компонентов клеточных мембран животной ткани, используемой в качестве сырья;

А, В, С функциональные характеристики соотношений ингредиентов в составе БАС. При этом:

А относительная концентрация углеводов, входящих в состав компонентов, с молекулярной массой М 0,8-10 кДа (Оу) по отношению к остальным ингредиентам БАС, то есть

A (6)

В относительная концентрация Оу по отношению к ингредиентам с молекулярной массой М > 0,8 кДа, то есть

B (7)

С относительная концентрация Оу по отношению к ингредиентам с молекулярной массой М > 10 кДа, то есть

С (8) где концентрация ингредиентов БАС выражается через:

Оу олигоуглеводы, то есть углеводы, входящие в состав компонентов, имеющих молекулярную массу М 0,8-10 кДа;

Пу полиуглеводы, то есть углеводы, входящие в состав компонентов, имеющих молекулярную массу М > 10 кДа;

Му моноуглеводы, то есть углеводы в виде мономеров или в составе компонентов, имеющих молекулярную массу М < 0,8 кДа;

ПП полипептиды, имеющие молекулярную массу М > 10,0 кДа;

П пептиды, имеющие молекулярную массу М < 10,0 кДа;

Амк свободные аминокислоты;

Гл гликолипиды;

Л липиды;

Н нуклеотиды.

Согласно уравнению (5) величина показателя R зависит не только от природы исходного сырья, используемого для получения БАС и характеризуемого величиной коэффициента F, но и от способа получения БАС, определяющего величину суммы

А + В + С К (9)

Тогда уравнение (5) приобретает вид

R F x K. (10) где К коэффициент, характеризующий величину эффективности предлагаемого БАС, полученного согласно предлагаемому способу.

Как можно видеть из уравнений (3-8), величина показателя К в значительной степени зависит от концентрации олигоуглеводов Оу и высокомолекулярных соединений в виде полипептидов ПП и полиуглеводов Пу, значения которых представлены во всех слагаемых уравнений. Однако вклад этих компонентов в специфичность БАС разнонаправленный и значение величины коэффициента К возрастает по мере увеличения концентрации олигоуглеводов Оу и уменьшения концентрации высокомолекулярных соединений.

Наконец, из анализа уравнений 3-8 следует вывод, что наиболее сущестенное относительное улучшение иммуномодулирую- щего свойства БАС обеспечивается в частных случаях выполнения предлагаемого способа получения этого БАС. Это можно объяснить тем, что по мере прохождения каждой из последующих стадий заявленного способа увеличивается концентрация олигоуглеводов Оу в БАС и уменьшается содержание в нем высокомолекулярных соединений в виде полипептидов ПП и полиуглеводов ПУ.

Данные такого характера хорошо согласуются с результатами анализа ингредиентов предлагаемых и известных БАС, значения которых приведены в табл.7.

Из анализа данных табл.2 и 7 видно, что значение показателя К у известного БАС существенно ниже, чем у предлагаемого. При этом величина К хорошо коррелирует с содержанием олигоуглеводов Оу и высокомолекулярных соединений (ПП+ПУ).

Так, для известного БАС N 1 (US-A-4455302) в табл.7 концентрация олигоуглеводов составляет Оу 3,0% а концентрация высокомолекулярных соединений составляет ПП + ПУ 34,0% и значение показателя К составляет К 0,17. В то время как у предлагаемого БАС величины аналогичных показателей концентраций (табл. 2 и 7) составляют, соответственно, Оу 11,5-30,8; ПП + ПУ 39,5, а значение показателя составляет К 0,47-1,90. Для БАС, полученного из углеводсодержащих компонентов значение концентрации Оу 49,7% а ПП + ПУ менее 0,5% и значение показателя составляет К 2,20 (табл.2).

Таким образом, иммуномодулирующее свойство предлагаемого БАС, как это следует из анализа данных табл.2 и 7, существенно выше, чем у известного БАС. Анализ данных позволяет сделать также вывод о том, что при использовании одного и того же сырья, и, следовательно, при одном и том же значении коэффициента F, эффективность R предлагаемого БАС коррелирует с величиной показателя К у целевых продуктов, получаемых различными вариантами предлагаемого способа. Этот вывод подтверждается результатами испытаний (табл.1 и 6).

Так, ферментативная активность макрофагов перитонеального экссудата крыс, согласно НСТ-тесту (см. табл.6), повышается по сравнению с контрольными группами для водорастворимых компонентов заявляемого БАС на 70% а для низкомолекулярных компонентов на 170% то есть технический результат по этому показателю специфической активности увеличивается в 2,4 раза. Аналогично этому улучшается в 2,5 раза также технический результат по фагоцитарной активности макрофагов. Данные такого характера хорошо коррелируют с величиной коэффициента К для каждого из этих продуктов, которые различаются в 2,6 раза.

Таким образом, достигаемый сравнительно более высокий технический результат, касающийся специфической активности предлагаемого БАС, находится в причинно-следственной связи с совокупностью его признаков. Так, специфическая активность заявляемого БАС во всех случаях нарастает при увеличении количества реализованных признаков заявляемого БАС (в табл.6 слева направо).

Изобретения, касающиеся БАС, способа его получения и лекарственного препарата на основе предлагаемого БАС, основаны на выборе исходного сырья, выбора условий протекания процесса и получения БАС и препарата с гарантированной высокой специфической активностью. При этом выбранная технология получения БАС обеспечивает воспроизводимость результатов, то есть позволяет стандартизировать получение БАС с заданными свойствами, а именно с заданной фиксированной иммуномодулирующей активностью, определяющей фармакологический, терапевтический и общебиологический эффекты при использовании изобретения.

Получаемые целевые продукты в общем и частных случаях выполнения способа получения БАС равноценны по характеру своего биологического воздействия, но отличаются по своей специфической активности. Поэтому целесообразность использования того или иного конкретного биологически активного средства определяется требованиями, предъявляемыми объектом, для которого они предназначены, то есть требованиями ветеринарии и/или медицины. В связи с этим в каждом конкретном случае использования целевого продукта выбор того или иного варианта БАС определяется соотношением требований к его иммуномодулирующей активности и эффективности в целом со стоимостью (экономичностью) его получения. В частности, высокая эффективность средства, содержащего низкомолекулярные компо- ненты с молекулярной массой М 10,0 кДа предлагаемого БАС-LM, а также углеводсодержащие компоненты БАС-CW в полной мере проявляется в повышении активности макрофагов, нейтрофилов, лимфоцитов, естественных киллеров, что обеспечивает усиление регенераторных процессов (табл.6). Для сельськохозяйственных животных такие эффекты сопровождаются увеличением дополнительных привесов животных при интенсивном откорме (табл.8). При лечении респираторных и инфекционных заболеваний (парагрипп) такое преимущество не столь существенно и здесь экономически целесообразно применять БАС, содержащее водорастворимые компоненты клеточных мембран БАС-WS и БАС-РМ. При лечении воспалительных процессов (маститы, эндометриты и тому подобное) выгоднее использовать средство, содержащее термостабильные компоненты БАС-TS.

При приготовлении препаратов для наружного использования в виде мазей, гелей, компрессов, свечей, интраназально или для выпойки животных вместо БАС-LM экономически целесообразно применять БАС, содержащее термостабильные компоненты БАС-ST.

При этом для получения максимального эффекта БАС и препараты на его основе целесообразнее использовать для активации и стимуляции регенераторных процессов и восстановления функциональной активности органов и тканей при различного рода патологиях, а также для лечения воспалительных процессов, где его эффективность может значительно превышать эффективность известных БАС и препаратов аналогичного назначения.

Кроме того, предлагаемое БАС и препараты на его основе являются эффективным средством при лечении инфекционных заболеваний (парагрипп, ОРЗ и тому подобное). При его использовании выздоровление молодняка крупного рогатого скота наблюдалось в 88-95% случаев, тогда как при использовании известных БАС в тех же условиях, так же как при использовании антибиотиков и препарата Бовиверекс, выздоровление животных наблюдалось не более, чем в 70% случаев, а при спонтанном излечивании в контрольной группе в пределах 58-67% случаев.

Предлагаемое БАС повышает резистентность животных к инфекционным заболеваниям, тем самым значительно снижает уровень падежа поголовья.

Использование применяемого БАС для профилактики снижало уровень заболевания телят парагриппом до 5% в то время как при использовании известных БАС уровень заболеваемости животных достигал 12-17% а в контрольной группе 22-28%

Нормализация общебиологического состояния сельсколхозяйственных животных при использовании предлагаемого БАС способствует улучшению производственных показателей и, в частности, восстановлению (увеличению) дополнительных привесов живой массы без снижения качества мяса, приближая эти показатели к генетически запрограмированному уровню при интенсивном откорме. Данная особенность выгодно отличает БАС и препараты на его основе от гормональных и других стимуляторов роста, кот орые, повышая количественные показатели, негативно влияют на гомеостаз животных и снижают качество продукции.

Введение БАС и препаратов на его основе в организм животного, имеющего отклонения параметров гомеостаза от нормы, обеспечивало при интенсивном откорме увеличение дополнительного привеcа в среднем на 52-145% от привеса в контрольной, не обработанной предлагаемым БАС, группе. В то время, как при использовании в тех же условиях известных БАС аналогов (средства N 1) дополнительный привес по сравнению с привесом в контрольной группе составлял в среднем 12-24% Контрольную и экспериментальную группы крупного рогатого скота формировали из 14-18 телят одного возраста и, в среднем, одного и того же стартового веса и этиологии отклонения от нормы.

Нормализация параметров гомеостаза способствует также увеличению: надоев молока крупного и мелкого рогатого скота; яйценоскости домашней птицы; качества меха пушного зверя; выживаемости молодняка; медосбора пчел и тому подобное.

БАС и препарат на его онове нетоксичны, не вызывали побочных эффектов (аллергии и тому подобное).

Предлагаемый препарат вызывал повышенную стимуляцию регенераторных процессов, а именно восстановление функциональной активности печеночной ткани при гепатите и регенерацию печени после частичной гепатэктомии, заживление язв, ран и кожного покрова при ранениях и травмах, восстановление формулы крови при больших кровопотерях и в других случаях.

Сравнительные данные по фармакологическому, терапевтическому и общебиологическому эффекту от использования на животных предлагаемого БАС и препарата на его основе приведены в табл.8. Анализ данных этой таблицы показывает, что биологическая активность предлагаемого БАС значительно превышает величину биологической активности аналогов.

Таким образом, предлагаемое БАС и препарат на его основе обладают широким спектром возможностей применения в ветеринарии и медицине и могут быть использованы для нормализации физиологического состояния организма при лечении заболеваний, контроль над которыми осуществляется в рамках компетенции иммунной системы организма.

Введение в организм предлагаемого БАС в виде предлагаемого препарата позволяет стимулировать:

функциональную активность печеночной ткани при гепатите;

регенерацию печени после гепатэктомии;

заживление язв, ран, кожного покрова при ранениях и травмах;

восстановление формулы крови при кровопотерях;

излечение воспалительных заболеваний, (маститы, воспаление легких, эндометриты);

излечение инфекционных заболеваний (парагрипп, ОРЗ);

повышение резистентности животных к инфекционным и воспалительным процессам;

улучшение общебиологического состояния организма;

увеличение привесов животных.

Практическое применение БАС подтвердило его нетоксичность и отсутствие побочных отрицательных эффектов аллергию, гиперчувствительность замедленного типа.

Отсутствие побочных эффектов при использовании БАС и лекарственного препарата на его основе и данные по фармакологическому, терапевтическому и общебиологическому воздействию на организм животного определили возможность клинической апробации БАС и препарата.

При обследовании группы пациентов определено положительное воздействие на физиологическое состояние организма, а также практически полная аналогия экспериментальным доклиническим исследованиям на животных.

Способ получения БАС может быть реализован как в лабораторных, так и в промышленных условиях.