способ выращивания энтомофагов

Формула изобретения

СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ЭНТОМОФАГОВ, включающий выкармливание личинок энтомофагов яйцами насекомых-хозяев и обработку имаго энтомофагов биостимулятором, отличающийся тем, что, с целью сокращения сроков развития энтомофагов и повышения их продуктивности, в качестве биостимулятора используют нативные или модифицированные предшественники РНК, концентрация биостимулятора для имаго энтомофагов составляет 0,006 0,025% и дополнительно яйца насекомых-хозяев обрабатывают биостимулятором при концентрации 0,001 0,05% в течение 30 60 мин в период первых двух дней развития яиц.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к отрасли искусственного выращивания насекомых, и может быть использовано при разведении энтомофагов.

Цель изобретения увеличение длительности жизни и плодовитости имаго, выживаемости и заражающей способности энтомофагов при сокращении длительности их развития.

Цель достигается комплексным применением различных групп биологически активных веществ на разных этапах онтогенеза с учетом биологических особенностей организма как энтомофагов так и их хозяев и специфики действия применяемых стимуляторов. В предлагаемом способе эта цель осуществляется путем воздействия нативными и модифицированными предшественниками РНК на яйца хозяев (зерновая моль и яблонная плодожорка), в которых выращивается соответственно трихограмма и аскогастер, с последующим воздействием нативными и модифицированными дрожжевыми РНК на имагинальную стадию энтомофагов.

В качестве стимуляторов продуктивности для воздействия на яйца зерновой моли и яблонной плодожорки, применяемых в диапазоне концентраций 0,05-0,001% при экспозиции 30-60 мин в период 1-2 дней от начала инкубации, использовали водные растворы нативных и модифицированных предшественников РНК: урацил (УРЛ), метилурацил (МТ) и 5-пипередино-метилен-6-метилурацил (БЕС-221).

В качестве стимуляторов продуктивности, примененных для подкормки имаго трихограммы и аскогастера, использовали нативную дрожжевую РНК (РН); РНК модифицированную тиофосфамидом (РНТ); РНК модифицированную циклофосфамидом (РНЦ). Диапазон концентраций 0,025-0,0006%

Использовали трихограмму желтую (Trichogramma cacoeciae March), широкораспространенный яйцевый паразит многих вредителей садовых и овощных культур, а также Аскогастер Ascogaster guadridentatus W.) паразит садовых листоверток. Трихограмму разводили на яйцах зерновой моли, а аскогастера на яйцах яблонной плодожорки. Насекомых разводили в биолаборатории при оптимальных условиях температуры, влажности и фотопериода.

П р и м е р 1. Пять порций яиц зерновой моли и яблонной плодожорки, каждая в количестве 300 яиц, согласно предлагаемому способу были выдержаны в течение 30, 40 и 60 мин в 0,1; 0,05; 0,001 и 0,0005%-ных водных растворах препаратов МТ, БЕС-221 и УРЛ на второй день эмбрионального развития.

Обработанные таким образом яйца зерновой моли заражали трихограммой, а яйца плодожорки аскогастером. Параллельно из тех же порций яиц моли и плодожорки выращивали оба вида энтомофагов обычным образом, без каких-либо воздействий (контроль).

Выращенные по первому этапу предлагаемого способа энтомофаги по таким показателям продуктивности как длительность жизни имаго, плодовитости, количестве яйцекладущих самок, выживаемости и зараженности яиц хозяина превышают аналогичный показатель контрольного варианта на 10-25% При этом диапазон эффективных концентраций используемых препаратов находится в пределах 0,05-0,001% Полученные данные представлены в табл.1 и 2.

П р и м е р 2. Пять порций яиц зерновой моли и плодожорки, каждая в количестве 350 яиц, обрабатывали водными растворами МТ и УРЛ в концентрации 0,1; 0,05; 0,001 и 0,0005% в течение 20, 40, 60 и 80 мин. Зараженные впоследствии яйца моли и плодожорки трихограммой и аскогастером существенно увеличили свою продуктивность при экспозиции воздействия стимуляторами на яйца хозяев в пределах 30-60 мин. Полученные данные представлены в табл.3 и 4.

П р и м е р 3. Четыре порции яиц моли и плодожорки, каждая в количестве 350 яиц, обрабатывали водными растворами МТ, БЕС-221 и УРЛ в концентрации 0,05% и экспозиции 40 мин в первый, второй и третий дни эмбрионального развития. Зараженные впоследствии трихограммой и аскогастером особи дочернего поколения энтомофагов отличались повышенной продуктивностью и жизнеспособностью. Оптимальным периодом воздействия на яйца зерновой моли и плодожорки являются 1 и 2-й дни от начала их развития. Данные исследований представлены в табл.5 и 6.

Таким образом, при реализации первого этапа предлагаемого способа, наиболее высокие показатели развития и продуктивности трихограммы и аскогастера достигаются при обработке яиц хозяев водными растворами нативных и модифицированных предшественников РНК в диапазоне концентраций 0,05-0,001% при экспозиции 30-60 мин в период 1-2 дней от начала инкубации.

Вторым элементом комплекса воздействий на организм энтомофагов, согласно предлагаемому способу, является применение для подкормки имаго трихограммы и аскогастера водных растворов нативных и модифицированных дрожжевых РНК: РН, РНТ и РНЦ. Эти биостимуляторы используются впервые для выращивания энтомофагов, поэтому приводится обоснование оптимальных и граничных концентраций стимуляторов.

П р и м е р 4. Четырем группам энтомофагов, в каждой из которых было по 250 особей, предлагали для подкормки имаго водные растворы стимуляторов в различных концентрациях. Параллельно выращивали энтомофагов обычным образом, которым давали в качестве корма обычную воду (контроль). Результаты исследований приведены в табл. 7 и 8. Диапазон эффективных концентраций биостимуляторов, обеспечивающих существенное увеличение продуктивности энтомофагов, находится в пределах 0,025-0,0006%

Комплексное использование обеих элементов предлагаемого способа предполагает воздействие стимуляторами на яйцекладки яиц-хозяев с последующей подкормкой стимуляторами имаго энтомофагов.

П р и м е р 5. Пять партий яиц зерновой моли и яблонной плодожорки обрабатывали стимуляторами на 2-е сутки их развития с экспозицией 30, 40 мин, заражали их энтомофагами. Отродившееся дочернее поколение энтомофагов подкармливали препаратами дрожжевых РНК. Параллельно выращивали из той же группы насекомых обычным образом, без каких-либо воздействий (контроль), а также выращивали энтомофагов по известному способу. Для подкормки имаго энтомофагов стимуляторы разводили в воде, контрольным популяциям давали чистую воду.

В табл.9. представлены материалы, характеризующие продуктивность трихограммы, выращенной по предлагаемому способу в сравнении со способом прототипом. Они свидетельствуют о высокой специфичности действия стимуляторов, способствующих увеличению длительности жизни имаго на 33% и плодовитости на 26% по сравнению с известным способом. Существенным было увеличение и других показателей продуктивности.

В табл. 10 приведены аналогичные данные, характеризующие продуктивность аскогастера, выращенного с использованием стимуляторов по предлагаемому способу. Данные таблицы иллюстрируют значительное увеличение продуктивности энтомофага в сравнении с известным способом.

Итоговый анализ достигаемого положительного эффекта, полученного от использования предлагаемого способа иллюстрируют данные табл.11. По всем сравниваемым показателям продуктивности предлагаемый способ превосходит известный.

Технико-экономическая эффективность использования предлагаемого способа иллюстрируется примером по выращиванию трихограммы, энтомофага, масштабы применения которого превышают 10 млн га ежегодно.

Одна механизированная линия в биолаборатории за один цикл дает около 8 кг яиц зерновой моли или около 400 млн яиц, для заражения которых нужно около 20 млн особей трихограммы.

Расчет эффективности способов (заявляемого и прототипа) приводится на основании усредненных данных табл.11. Для заражения 8 кг яиц зерновой моли нужно трихограммы, выращенной по известному способу 15,1 млн особей, что на 4,9 млн меньше, чем ее используется в настоящее время по существующему способу (базовый вариант).