способ получения диагностических иммуноглобулинов для выявления hbsag вируса гепатита в

Классы МПК:C07K16/02 из яиц
C07K16/08 против материала из вирусов
G01N33/569 микроорганизмов, например протозоа, бактерий, вирусов
Автор(ы):, ,
Патентообладатель(и):ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ ВОЕННО-МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ ИМ. С.М. КИРОВА (RU)
Приоритеты:
подача заявки:
2009-02-27
публикация патента:

Изобретение относится к области медицины, микробиологии, биотехнологии, ветеринарии и может быть использовано для диагностики заболеваний человека и животных вирусной, бактериальной и др. этиологии. Представлен способ получения диагностических иммуноглобулинов для выявления HBsAg. Способ включает следующие стадии: введение HBsAg самкам перепелов в возрасте 20-25 суток непосредственно в область тимуса, получение яиц по достижении инъецированной птицей возраста 50 суток и получение из желтков яиц соответствующих иммуноглобулинов. Представленный способ позволяет получить большое количество специфических иммуноглобулинов. 1 табл.

Формула изобретения

Способ получения диагностических иммуноглобулинов для выявления HBsAg вируса гепатита В путем введения биологическим объектам специфического антигена с последующим получением специфических антител, отличающийся тем, что антиген (HBsAg) вводят самкам перепелов в возрасте 20-25 сут непосредственно в область иммунокомпетентного органа (тимуса), при этом сбор яиц начинают производить по достижению птицей возраста 50 сут, в качестве конечного продукта используют иммуноглобулины, которые получают из желтков перепелиных яиц.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области медицины, микробиологии, биотехнологии, ветеринарии и может быть использовано для диагностики заболеваний человека и животных вирусной, бактериальной и др. этиологии.

Известен способ получения иммуноглобулинов от животных, заключающийся в получении гипериммунных сывороток и приготовлении на их основе диагностикумов путем многократной иммунизации животных-доноров антигеном с масляным адъювантом (полным и неполным адъювантом Фрейда). Гипериммунизация проводится путем внутрикожных, подкожных и внутримышечных инъекций в возрастающих дозах инактивированным антигеном при многократном введении: в течение двух-трех суток вводится антиген в несколько анатомических областей тела животного, а затем через семь-восемь суток проводится реиммунизация аналогичным способом. При недостаточном уровне антител в сыворотке крови животного цикл иммунизации повторяют до тех пор, пока не будет достигнут необходимый титр антител. Общее число иммунизации может составлять от восьми до десяти циклов и более. После последнего введения через 7-10 сут. производят забор пробы биологической среды (крови или асцитной жидкости) и определяют титр специфических антител. При достижении удовлетворяющего титра производят забор максимально допустимого объема пробы биологической среды, не приводящий к гибели животного-донора (Гринь С.А. Современные биотехнологические процессы и иммунологические методы при промышленном производстве ветеринарных препаратов: Автореф. дисс. способ получения диагностических иммуноглобулинов для выявления   hbsag вируса гепатита в, патент № 2425839 докт. биол. наук. - Щелково: ГНУ ВНИТИБП РАСХН, 2008. - 51 с).

В качестве животных-доноров могут быть использованы многие виды животных, особенности которых необходимо учитывать при последующем получении специфических иммуноглобулинов. При этом одним из основополагающих факторов являются требования GMP при производстве лекарственных средств.

Недостатками вышеизложенного способа получения диагностических иммуноглобулинов являются:

- дороговизна;

- низкое качество получаемого сырья.

Цель изобретения: удешевление, снижение себестоимости и повышение качества при получении необходимого, в том числе большого, количества специфических иммуноглобулинов.

Цель достигается тем, что биологическим объектам вводят специфический антиген с последующим получением специфических антител, причем антиген вводят самкам перепелов в возрасте 20-25 сут непосредственно в область иммунокомпетентного органа (тимуса), и в качестве конечного продукта используют иммуноглобулины, получаемые из желтков перепелиных яиц.

В таблице 1 представлены доказательства возможности достижения поставленной цели.

Способ реализуется следующим образом: антиген, подготовленный путем сорбции его на гидроокиси алюминия и внедрения его в состав обратной масляной эмульсии, вводят однократно в верхнюю треть дорсальной поверхности шеи параллельно продольной оси шейного отдела позвоночника, равномерно распределяя вводимую эмульсию с антигеном по дорсальной поверхности подкожной клетчатки шеи непосредственно в области тимуса, не травмируя его. По истечении 30 сут производят пробный забор проб крови для определения титра специфических антител. При достижении титра специфических антител 1:8000 и выше, определяемом твердофазным иммунноферментным анализом (тИФА), производят сбор перепелиного яйца. В последующем ежемесячно выполняют определение титра специфических антител к иммунизирующему антигену. Осуществляют сбор яйца до момента обнаружения факта снижения титра специфических антител. Одновременно с забором крови для определения специфических антител к иммунизирующему антигену производят определение иммунного статуса птицы на соответствие требованиям SPF.

Для доказательства возможности промышленного использования изобретения были проведены исследования, описанные ниже.

В условиях вивария содержалось 26 самок перепелов породы «Фараон», каждая массой 100-140 г. Самки перепелов были получены из ОАО «Перепелочка» (Ленинградская область) в возрасте 20 суток. Предварительно экспериментальное птицепоголовье для определения эпизоотического (эпидемического) статуса было проверено на 12 инфекций. Положительно реагирующих птиц в ходе серологического обследования не выявлено. Это дало нам основание утверждать, что экспериментальное птицепоголовье можно отнести к категории SPF, что является необходимым и основным условием при получении лекарственных средств на основе иммуноглобулинов животных-доноров. Вышеперечисленные технологические положения производства лекарственных средств соответствуют требованиям GMP.

Полученное птицепоголовье находилось в условиях опыта 86 суток.

В процессе выполнения исследований были созданы две экспериментальных группы: опытная, в которой проводилась иммунизация птиц HBsAg, сорбированным на гидроокиси алюминия и заключенным в обратную эмульсию «вода-масло», и контрольная.

Опытная группа была предназначена для получения специфических желточных иммуноглобулинов к HBsAg вируса гепатита В.

Контрольная группа предназначалась для определения влияния условий содержания и кормления на здоровье перепелов и их яичную продуктивность.

Иммунизирующий антиген вводили однократно в верхнюю треть дорсальной поверхности шеи параллельно продольной оси шейного отдела позвоночника, не травмируя кожу и мышцы птицы-донора, равномерно распределяя вводимую эмульсию с антигеном по дорсальной поверхности подкожной клетчатки шеи непосредственно в области иммунокомпетентного органа (тимуса), не травмируя его, по 20 мкг иммунизирующего антигена на инъекцию для каждого животного.

По истечении 30 сут производили пробный забор проб крови для определения титра специфических антител к HBsAg вируса гепатита В. Титр антител оказался достаточным и составлял 1:8000 в тИФА, что соответствовало уровню антител в сыворотке крови перепелов. После получения результатов определения уровня антител к HBsAg в сыворотке крови, начали производить сбор перепелиного яйца. Сбор яйца начали производить по достижении птицей возраста в 50 сут. При этом ежедневный сбор яйца в пересчете на одну несушку составил около 0,75 яйца. Концентрация иммуноглобулинов в желтках перепелиных яиц составила 10-12 мг/мл. При перерасчете на одну несушку количество антител, выделенных из желтков перепелиных яиц, за месяц составило 270 мг. Каждые 30 сут проводили серологические исследования экспериментального птицепоголовья на соответствие статусу SPF. В течение всего опыта положительно реагирующих на возбудителей заболеваний, регламентируемых статусом SPF, не выявлено.

Суммарный объем желточной массы перепелиных яиц за весь период опыта полученной от птиц опытной группы, составил 655,2 мл. Масса желточных иммуноглобулинов составила 6,5 г.

В процессе проведения опыта клинически больной и павшей птицы не зарегистрировано. Нарушений в физиологическом процессе яйцекладки не обнаружено.

Доказательство возможности достижения поставленной цели представлены в таблице 1.

Таблица составлена на основе данных, опубликованных университетом Висконсин-Мадисон (University of Wisconsin-Madison, Research animal resources center): Uw-Madison researcher's guide to animal care & use - http://www.rarc.wisc.edu/guide/techniques.html и университетом мичиганской медицинской школы (University of Michigan Medical School, unit for laboratory animal medicine): Blood collection guidelines - http://www.ulam.umich.edu/.

Из данных таблицы 1 следует: использование млекопитающих в качестве доноров имеет существенные недостатки, заключающиеся в травмировании животного-донора, развитии различных воспалительных процессов, которые могут привести к гибели животного. Использование практически любого вида животных в качестве донора требует проведения комплекса мероприятий: проведения премедикации, анестезии и комплексной терапии. При работе с крупными животными-донорами необходима специальная подготовка персонала и наличие помощников. А поддержание статуса SPF возможно только у мелких животных-грызунов. Получение больших количеств иммуноглобулинов от животных-доноров ограничено объемом разового взятия крови.

Предлагаемый способ получения иммуноглобулинов заключается в использовании естественных физиологических процессов самок перепелов, позволяющих получать в течение года большое количество перепелиного яйца, т.е. до 300 штук в год от каждой особи.

Удешевление при предлагаемом способе получения диагностических иммуноглобулинов заключается в том, что в качестве объекта получения диагностических иммуноглобулинов используют самок перепелов в начальном возрасте 20-25 сут, не требующих значительных затрат на содержание. Кроме того, удешевление получения диагностических иммуноглобулинов достигается за счет: исключения необходимости подготовки высокоспециализированных специалистов и снижения трудоемкости процесса и уровня стрессовых ситуаций у вспомогательного персонала; обеспечения получения больших количеств иммуноглобулинов; снижения длительности цикла иммунизации, т.е. однократного введения антигена; однократного травмирования кожи животного; отсутствия постинъекционных осложнений в виде абсцессов и флегмон; незначительных производственных площадей для содержания перепелов; незначительных экономических затрат на получение продукции и использования естественных физиологических функций перепелов при получении исходного биологического сырья; отсутствия необходимости в специальной профессиональной и психологической подготовке персонала при получении исходного биологического сырья; применения менее затратных технологий содержания и эксплуатации животных с соблюдением статуса SPF.

Повышение качества получаемого сырья достигается за счет снижения уровня неспецифических реакций. Использование в качестве продуцентов диагностических иммуноглобулинов яйца от самок SPF-перепелов дает возможность получения высоко специфичных иммуноглобулинов, а также соответствует требованиям GMP при производстве лекарственных средств. При этом используют нормальные физиологические функции организма перепелов для получения диагностических иммуноглобулинов и повышается уровень гуманного отношения к животным-продуцентам биологического сырья.

Табл. 1
Способ получения диагностических иммуноглобулинов для выявления HBsAg вируса гепатита B
Вид животногоАнатомическая область (орган) взятия пробы крови Максимальный объем пробы крови при единичном заборе, не приводящий к гибели животного-донора, см3 Концентрация иммуноглобулинов в крови, мг/см3 Необходимость выполнения дополнительных мероприятий Возможность осложнения после забора пробы крови Возможность поддержания статуса SPF
Белые мышиОрбитальный синус, хвостовая вена, вены голени 0,151,7-1,9 Анестезия, поддерживающая (компенсационная) терапия Сепсис, гибель животного Да
Крысы Орбитальный синус, хвостовая вена, вена голени, подключичная вена 0,53,1-3,3 Анестезия, поддерживающая (компенсационная) терапия Сепсис, гибель животного Да
Кролики Сердце, краевая вена ушной раковины25,0 7,0 Анестезия, поддерживающая (компенсационная) терапия Абсцедирование места пункции, гибель животного Да
Собаки (массой не менее 30 кг) Яремная вена, латеральная вена голени, затылочная вена, вена внутренней поверхности стопы 300,0-400,03,0-4,7 Фиксация животного, премедикация, анестезия, поддерживающая (компенсационная) терапия Абсцедирование места пункции, гибель животного Да
Козы, овцыЯремная вена 200,0-300,0 10,0-12,0Фиксация животного, поддерживающая (компенсационная) терапия Абсцедирование места пункции, гибель животного Нет
Лошади Яремная вена 1000,010,0 Фиксация животного, поддерживающая (компенсационная) терапия Абсцедирование места пункции, гибель животного. При постоянном заборе крови с интервалом в один месяц в течение двух лет развивается гепатозНет
Куры (весом 2,5-4,0 кг)Подкрыльцовая вена, сердце3,0-5,0 10,0 Фиксация животного, поддерживающая (компенсационная) терапия Повреждение лучевого нерва, каннибализм, гибель животного Да

Класс C07K16/02 из яиц

Класс C07K16/08 против материала из вирусов

антитела против g-белка распираторно-синцитиального вируса (rsv) -  патент 2526517 (20.08.2014)
средство для нейтрализации вируса натуральной оспы -  патент 2515905 (20.05.2014)
наноантитело "anti-flu", рекомбинантные вирусные векторы и фармацевтические композиции для профилактики и терапии гриппа типа а -  патент 2502745 (27.12.2013)
применение моноклональных антител для идентификации ямагатской или викторианской эволюционных линий вируса гриппа типа в, штамм гибридомы 4н7 для получения моноклональных антител, предназначенных для определения вирусов гриппа в ямагатской ветви, штамм гибридомы в/4н1 для получения моноклональных антител, предназначенных для определения вирусов гриппа в викторианской ветви -  патент 2491338 (27.08.2013)
антитела, нейтрализующие цитомегаловирус человека, и их применение -  патент 2469045 (10.12.2012)
иммуногенные композиции и способы -  патент 2468034 (27.11.2012)
штамм вируса гриппа а собак (варианты), иммуногенный полипептид, полинуклеотид, кодирующий его, вектор экспрессии полипептида, иммуногенная композиция, содержащая полипептид, и способ индукции иммунного ответа у животного -  патент 2449014 (27.04.2012)
nogo-a-связывающие молекулы и их фармацевтическое применение -  патент 2380377 (27.01.2010)
изолированные полипептиды на основе нейтрализующего эпитопа белка p17 вируса вич, используемые в качестве вакцин, а также нейтрализующие анти-p17-антитела, специфически распознающие указанный нейтрализующий эпитоп -  патент 2337922 (10.11.2008)
моноклональное антитело, иммунореактивное с белком нуклеокапсида (кор) вируса гепатита с-4g5, способ диагностики вгс-инфекции и комбинация моноклональных антител для его осуществления -  патент 2329303 (20.07.2008)

Класс G01N33/569 микроорганизмов, например протозоа, бактерий, вирусов

способ прогнозирования риска развития инфекционно-воспалительных осложнений у женщин с внутриматочной патологией после гистероскопии -  патент 2526163 (20.08.2014)
штамм вируса гриппа a/pochard/siberia/249/08-ma h10n7-субтипа для получения антиген-содержащего диагностического препарата и диагностической поликлональной сыворотки, применения в качестве контрольного референс-образца при оценке специфичности тест-систем на основе пцр и для изучения противовирусных препаратов in vitro и in vivo -  патент 2522813 (20.07.2014)
штамм вируса иммунодефицита человека 1-го типа ив735 субтипа в для диагностических и вакцинных препаратов -  патент 2520813 (27.06.2014)
иммуногенные белки streptococcus -  патент 2518315 (10.06.2014)
способ определения неспецифической устойчивости патогенных микроогранизмов к антибиотикам на основании измерения каталитической активности фосфодиэстераз, расщепляющих циклический дигуанозинмонофосфат -  патент 2518249 (10.06.2014)
штамм вируса иммунодефицита человека 1-го типа ив742 субтипа а для диагностических и вакцинных препаратов -  патент 2513693 (20.04.2014)
штамм вируса иммунодефицита человека 1-го типа ив710 субтипа а резистентный к антиретровирусным препаратам для диагностических и вакцинных препаратов -  патент 2513692 (20.04.2014)
штамм диплоидных клеток синовиальной мембраны ягненка ovis aries, используемый для вирусологических исследований -  патент 2507255 (20.02.2014)
штамм диплоидных клеток синовиальной мембраны поросенка sus scrofa, используемый для вирусологических исследований -  патент 2506310 (10.02.2014)
способ конструирования полимерного иммуноглобулинового диагностикума для выявления legionella pneumophila 1,3 и 6 серогрупп (варианты) -  патент 2505819 (27.01.2014)
Наверх