штамм a1.ru.09ru2225 вируса иммунодефицита человека 1 типа субтипа а, используемый для диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов

Формула изобретения

Штамм A1.RU.09RU2225 вируса иммунодефицита человека 1 типа субтипа А, используемый для диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, депонированный в Коллекции микроорганизмов ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-391 и имеющий нуклеотидную последовательность гена роl, приведенную на фигуре 1 и нуклеотидную последовательность гена env, приведенную на фигуре 2.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащим к субтипу А, и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Штамм является удобной природной моделью и может быть использован для разработки и усовершенствования методов диагностики ВИЧ инфекции, изучения эффективности лечебных и профилактических химиотерапевтических и вакцинных препаратов, а также для создания национальной панели штаммов ВИЧ-1.

Высокая степень генетической гетерогенности вируса иммунодефицита человека - основная проблема, с которой сталкиваются исследователи. Вариабельность нуклеотидной структуры вируса способствует быстрому возникновению штаммов, устойчивых к нейтрализующим антителам, цитотоксическим Т-лимфоцитам и противовирусным препаратам. При разработке различных вакцин необходимо учитывать высокую вариабельность вирусного генома. В настоящее время в России отсутствует репрезентативный банк характеризованных штаммов ВИЧ-1. Поэтому необходимо проводить работы по выделению, молекулярно-биологической характеризации штаммов ВИЧ-1 и созданию коллекции ВИЧ-1, которая необходима для исследования свойств новых вакцинных и терапевтических препаратов. Такая коллекция должна включать эпидемиологически значимые варианты вируса, отражающие гетерогенность ВИЧ-1, наиболее характерные для отдельных регионов или групп риска (мужчин гомосексуальной ориентации, инфицированных в нозокомиальном очаге, наркоманов и т.д.). По последним данным наибольшее распространение в Российской Федерации приобретают вирусы, принадлежащие к субтипу А, которые обнаруживаются у большинства инфицированных людей. Однако отечественные изоляты и штаммы субтипа А в литературе не описаны.

Известен штамм hominis immunodeficit virus ВИЧ-1/Россия ГМ-12-95 (Ru-1295) субтипа В подгруппы lentiviridae семейства Retroviridae для приготовления диагностических и вакцинных препаратов (патент РФ № 2121502, МПК C12N 7/00, опубл. 10.11.1998 г.), содержащий следующую аминокислотную последовательность области V3: CTRPNNNTRKRIHIGPGRAYFTGRIIGD IRQAYC.

Однако, поскольку наибольшее распространение в Российской Федерации приобретают вирусы иммунодефицита человека 1 типа, принадлежащие к субтипу А, которые обнаруживаются у большинства инфицированных людей, то указанный штамм малопригоден для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории России.

Наиболее близким аналогом (прототипом) являются изоляты вируса иммунодефицита человека 1 типа, включающие группу изолятов, относящихся к субтипу А, полученные в Таиланде (Biologic and Genetic Characterization of a Panel of 60 Human Immunodeficiency Virus Type 1 Isolates, Reprezenting Clades A, B, C, D, CRF02_AG, for the Development and Assesment of Candidate Vaccines.//Jornal of virology, Mai 2005, p.6089-6101).

Однако и такие изоляты мало пригодны для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории Российской Федерации.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является получение такого штамма ВИЧ-1, который был бы пригоден для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории Российской Федерации.

Указанный технический результат достигается получением нового штамма A1.RU.09RU2225 вируса иммунодефицита человека ВИЧ-1 субтипа А, который выделен на территории России от пациента 29 лет, употребляющего инъекционные наркотики с диагнозом острая ВИЧ-инфекция. Штамм предназначен для включения в состав национальной панели штаммов, а также может быть использован для изучения эффективности лечебных и профилактических химиотерапевтических и вакцинных препаратов, усовершенствования методов диагностики ВИЧ-инфекции.

Заявляемый штамм вируса иммунодефицита человека ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 депонирован в Коллекции микроорганизмов ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-391 от 15.06.09 г.

На фиг.1 приведена нуклеотидная последовательность гена pol штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225, а на фиг.2 - нуклеотидная последовательность гена env штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225. На фиг.3 приведена динамика накопления вирусспецифического белка р24 в смешанной культуре МПК, инфицированной штаммом A1.RU.09RU2225, а на фиг.4 - динамика накопления вирусоспецифического белка р24 в инфицированных штаммом A1.RU.09RU2225 культурах клеток MT-4 и U-937.

Характеристика заявляемого штамма

Полученный новый штамм обладает рядом вирусологических свойств, позволяющих рассматривать его как удобную природную модель для оценки эффективности новых средств диагностики и исследования новых лечебно-профилактических препаратов. Штамм обладает средней репродуктивной активностью и легко размножается в неопластических Т-лимфоцитарных клетках МТ-4 и моноцитарных U-937, о продукции вируса можно легко судить по ярковыраженному цитопатическому действию и по накоплению вирусоспецифического белка р24. Штамм хорошо хранится при - 700C. Идентификацию штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 осуществляли методом определения нуклеотидных последовательностей фрагментов генома ВИЧ-1, кодирующих области гена pol и основного белка оболочки (ген env), на автоматическом секвенаторе ABI PRISM. Последующий филогенетический анализ и определение субтипа вирусного изолята осуществляли с помощью программы, представленной на интернет-сайте Стенфордского Университета (http://hivdb.stanford.edu). Определение тропности изолята к клеточным хемокиновым корецепторам проводили с помощью доступных на интернет-сайтах программ Geno2pheno (http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de) и WebPSSM и (http://indra.mullins.microbiol.washington.edu/webpssm).

Культуральные свойства. Штамм вируса выделен из лимфоцитов периферической крови пациента с диагнозом острая ВИЧ-инфекция. При получении штамма использован метод сокультивирования лимфоцитов инфицированного пациента с лимфоцитами крови здорового донора, стимулированных митогеном, а также метод инфицирования человеческих неопластических суспензионных перевиваемых клеточных линиий MT-4 и U-937.

Репродукция. Штамм вируса реплицируется в лимфоцитах периферической крови, лимфобластоидных клеточных культурах МТ-4 и U-937. Репродукция вируса сопровождается характерным цитопатическим действием смешанного типа - гибелью отдельных клеток, образованием синцитиев из 5-10 клеток и накоплением вирусспецифического белка р24. Штамм ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 может поддерживаться длительное время при пассировании в смешанной культуре лимфоцитов периферической крови здоровых доноров, в культуре клеток МТ-4 или U-937. Через 4-7 дней после инфицирования клеток вируссодержащей культуральной жидкостью инфицированная клеточная взвесь центрифугируется при 1500 об/мин и замораживается в растворе для криоконсервации (70% сыворотка крупного рогатого, 10% глицерин) при - 70°C. После размораживания вносится в свежую клеточную суспензию в соотношении 1:10. Репродуктивные характеристики штамма определяются методом твердофазного иммуноферментного анализа по накоплению вирусспецифического белка р24 на модели вышеуказанных клеточных культур (фиг.3, фиг.4).

Инфекционность вирусного штамма оценивали по накоплению вирусспецифического белка р24 в культуральной жидкости на 7 и 15 день культивирования смешанной культуры стимулированных фитогемагглютинином (ФГА) МПК от двух серонегативных доноров после инфицирования этих клеток ростовой средой, взятой на 7 и 15 день культивирования выделяемого изолята путем внесения ростовой среды в культуру МПК (1:10).

Антигенные свойства. ВИЧ-1 относится к семейству retroviridae подгрупе lentiviridae. Вирусы этой подгруппы являются оболочечными РНК-содержащими вирусами с размером частиц около 100-150 нм. В составе частиц обнаруживают не менее 6 основных структурных антигенов, обладающих иммуногенными свойствами, которые могут быть выявлены в инфицированных клетках с помощью различных иммунологических и вирусологических методов.

Анализ нуклеотидной последовательности генома, филогенетический анализ и определение субтипа вирусного изолята осуществляли с помощью программы, представленной на интернет-сайте Стенфордского Университета (http://hivdb.stanford.edu). Генотипирование полученного штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 проводили путем анализа нуклеотидных последовательностей участков генов pol и env. Выбор данных генетических участков определялся тем, что их анализ позволяет различать основные варианты ВИЧ-1, циркулирующие на территории бывшего СССР. Для определения и анализа нуклеотидной последовательности гена pol использовали наборы "Виросек" ("Viroseq HIV-1 Genotyping System") фирмы "Celera Diagnostics" (США) и "АмплиСенс ВИЧ-генотип" компании "ИнтерЛабСервис" (Россия). Определение тропности изолята к клеточным хемокиновым корецепторам проводили с помощью доступных на интернет-сайтах программ Geno2pheno (http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de) и WebPSSM (http://indra.mullins.microbiol.washington.edu/webpssm).

Пример 1. Генотипирование штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225. Генотипирование полученного штамма ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 проводили путем анализа нуклеотидных последовательностей участков генов pol и env. Выбор данных генетических участков определялся тем, что их анализ позволяет различать основные варианты ВИЧ-1, циркулирующие на территории бывшего СССР. Для определения и анализа нуклеотидной последовательности гена pol используют наборы "Виросек" ("Viroseq HIV-1 Genotyping System") фирмы "Celera Diagnostics" (США) и "АмплиСенс ВИЧ-генотип" компании "ИнтерЛабСервис" (Россия). Для амплификации последовательности гена env с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) используют следующие олигонуклеотидные праймеры:

ED3 (5'-TTAGGCATCTCCTATGGCAGGAAGAAGCGG-3'),

ED51 (5'-TGGGACCAAAGCCTAAAGCCATGTG-3'),

ED13 (5'-AATTGTCTGGCCTGTACCGTCAGCGT-3'),

ED71 (5'-CTGTTAAATGGCAGTCTAGCA-3'),

ED8 (5'-CACTTCTCCAATTGTCCCTCA-3'),

ED32 (5'-CCTTTGAGCCAATTCCTATACATTATTGTG-3'),

ED34 (5'-GGAGGGGCATACATTGCTTGTCCTA-3').

Вирусспецифическую РНК выделяют из образцов сыворотки. Вирусспецифическую ДНК получают методом обратной транскрипции вирусной РНК и используют для последующей амплификации методом гнездовой полимеразной цепной реакции. Определение нуклеотидных последовательностей проводят автоматически на приборе модели 3130xl фирмы "Аплайд Байосистемс" (США).

Полученные последовательности генома ВИЧ-1 включают в себя: для гена pol - полноразмерную нуклеотидную последовательность гена протеазы и частичную последовательность гена обратной транскриптазы - 1323 нуклеотидных остатков (фиг.1), для гена env - частичную нуклеотидную последовательность основного белка оболочки вируса (gp120) - 732 нуклеотидных остатков, включая область V3 (фиг.2).

Полученные данные показывают, что штамм ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 является неизвестным ранее штаммом ВИЧ-1 и относится к субтипу А.

Проводенный с помощью программ Geno2pheno и WebPSSM анализ указывает на то, что изолят ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 обладает наибольшей тропностью к клеточным хемокиновым корецепторам CCR5-типа.

Проведенный с помощью программы jpHMM-HIV (http://jphmm.gobics.de/) анализ показал, что изолят A1.RU.09RU2225 характеризуется уникальной генетической организацией локуса pol.

Пример 2. Для выделения первичных изолятов ВИЧ-1 мононуклеары периферической крови (МПК) от больного культивируют со смешанной культурой стимулированных фитогемагглютинином (ФГА) МПК от двух серонегативных доноров. Выделение МПК проводят центрифугированием цельной крови на градиенте Ficoll. ФГА стимуляцию донорских МПК проводят 2-3 суток (5 мкг ФГА/мл). Для сокультивирования смешивают 4-6" МПК клеток пациента с 8-12×10⁶ МПК клеток донора в 10 мл ростовой среды (РС) следующего состава - RPMI-1640, 20% эмбриональной сыворотки крупного рогатого скота (КРС), 100 е.а./мл IL-2, 300 мг/мл глутамина, 150 мкг/мл линкомицина и 100 мкг/мл гентамицина. Через каждые 3-4 суток проводят замену культуральной среды. Отобранную культуральную жидкость анализируют на содержание р24 антигена и криоконсервируют при - 70°C. На 7 и 15 день сокультивирования после замены культуральной среды к оставшимся инфицированным клеткам добавляют 4-6" ФГА-активированных донорских МПК. Репликацию вируса оценивают по накоплению вирусспецифического белка р24. Вирусспецифический белок р24 выявляют в культуральной жидкости методом твердофазного иммуноферментного анализа с помощью иммуноферментной тест-системы для определения и подтверждения присутствия р24-антигена ВИЧ-1 «ВектоВИЧ-1 р24-антиген-подтверждающий тест ФСП 42-0117-5686-04 », с чувствительностью - 5 пг/мл по ОСО ГИСК, или набора реагентов для иммуноферментного выявления антител к ВИЧ-1,2 и антигена р24 ВИЧ-1 «КомбиБест ВИЧ-1,2 АГ/АТ, ТУ 9398-098-23548172-2007».

На фиг.3 представлены результаты накопления р24 в культуральной жидкости в процессе культивирования изолята ВИЧ-1 в смешанной, активированной митогеном культуре МПК, отражающие динамику репродукции вируса. Видно, что изолят характеризуются средней скоростью накопления вирусного белка р24. Концентрация белка достигает максимального значения (более 649800 пкг/мл) на 29 сутки культивирования. В силу того, что этот показатель на 7 и 11 сутки культивирования значительно ниже (401 пкг/мл и 4046 пкг/мл, соответственно), то по типу репликации этот изолят можно отнести к категории Slow/low.

Пример 3. Изучение накопления вируса в различных культурах клеток. Суспензию клеток МТ-4 или U-937 инфицируют культуральной жидкостью от инфицированной смешанной культуры МПК методом совместной инкубации в соотношении 5" клеток на 1 мл культуральной жидкости в течение 1 ч при температуре 37°С. Центрифугируют при 1000 об/мин 5 мин, супернатант удаляют, клетки ресуспендируют в питательной среде RPMI-1640 с добавлением 10% фетальной сыворотки, предварительно инактивированной прогреванием при 56°С в течение 30 минут, 300 мг/мл -глютамина, 80 мкг/мл гентамицина и 30 мг/мл линкомицина до концентрации 0,5" клеток в миллилитре. Флаконы с культурой клеток инкубируют в термостате при 37°С. Контроль цитопатического действия вируса и синцитеобразования проводят методом инвертированной микроскопии клеточной суспензии в культуральных флаконах. Через каждые 3-4 суток проводят замену культуральной среды. Отобранную культуральную жидкость анализируют на содержание р24 антигена и криоконсервируют при - 70°C. На 10 день культивирования после замены культуральной среды к оставшимся инфицированным клеткам добавляют суспензию неинфицированной клеточной культуры в ростовой среде с концентрацией 1" клеток/мл. Репликацию вируса оценивают по накоплению вирусоспецифического белка р24. Вирусоспецифический белок р24 выявляют в культуральной жидкости методом твердофазного иммуноферментного анализа с помощью иммуноферментной тест-системы для определения и подтверждения присутствия р24-антигена ВИЧ-1 «ВектоВИЧ-1 р24-антиген-подтверждающий тест ФСП 42-0117-5686-04 », с чувствительностью - 5 пг/мл по ОСО ГИСК., или набора реагентов для иммуноферментного выявления антител к ВИЧ-1,2 и антигена р24 ВИЧ-1 «КомбиБест ВИЧ-1,2 АГ/АТ, ТУ 9398-098-23548172-2007».

На фиг.4 представлены результаты накопления р24 в культуральной жидкости в процессе культивирования изолята ВИЧ-1 в неопластических Т-лимфоцитарных клетках МТ-4 и моноцитарных U-937, отражающие динамику репродукции вируса. Видно, что изолят характеризуется различной скоростью и динамикой накопления вирусного белка р24 на разных культурах клеток. Отмечается 4-кратное превышение концентрации на 3 сутки культивирования на неопластических Т-лимфоцитарных клетках МТ-4 по сравнению с моноцитарной культурой U-937, но в дальнейшем к 10 суткам концентрации выравниваются и регистрируется 2-кратное превышение концентрации белка р24 в супернатанте культуры U-937. Вероятно, это объясняется различным тропизмом штамма к клеточным культурам различного пулового происхождения.

Заявляемый штамм ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 используется при разработке национальной панели генетически и биологически характеризованных штаммов ВИЧ-1, имеющих эпидемиологическую значимость на территории России (субтип А составляет более 90%) для стандартизации оценки эффективности разрабатываемых вакцинных и противовирусных препаратов. Панель для оценки эффективности вакцин создается из штаммов, выделенных от больных в острой стадии ВИЧ-инфекции. Кроме того, панель должна включать генетически и биологически разнородные штаммы, относящиеся к одному субтипу ВИЧ-1, максимально представляющие разнообразие возможных циркулирующих на данной территории вирусных вариантов, что позволит проводить более адекватную и корректную оценку противовирусного эффекта препаратов на модели, максимально приближенной к реальным процессам, протекающим в организме инфицированного ВИЧ-1 человека.

Заявляемый штамм ВИЧ-1 A1.RU.09RU2225 предполагается использовать также в панели для оценки эффективности противовирусных препаратов. Панель для оценки эффективности противовирусных препаратов включает генетически и биологически различные штаммы ВИЧ, выделенные от инфицированных ВИЧ-1 пациентов на разных стадиях заболевания и в том числе от больных, принимавших противовирусные препараты. Наличие такой панели в России позволит проводить стандартизованную адекватную оценку перспективных противовирусных препаратов для лечения ВИЧ-инфекции, что является актуальной проблемой для России, так как в нашей стране есть научный потенциал для разработки лекарственных препаратов, но нет сертифицированного инструмента для отбора препаратов по их эффективности в отношении ВИЧ-1 на модели живого вируса.

Кроме того, заявляемый штамм ВИЧ-1 может использоваться в качестве продуцента антигенов, входящих в диагностические наборы и тест-системы, в частности антигенов ВИЧ-1, необходимых для производства иммуноферментных диагностических тест-систем на выявление ВИЧ-инфекции и наборов для иммунноблота, подтверждающего ВИЧ-инфекцию у вновь выявленных больных.