способ повышения иммунитета птицы в условиях промышленного производства

Формула изобретения

1. Способ повышения иммунитета птицы в условиях промышленного производства путем обработки яиц и цыплят низкоинтенсивным электромагнитным излучением (ЭМИ), отличающийся тем, что вначале перед закладкой в инкубатор проводят облучение инкубационного яйца ЭМИ КВЧ диапазона плотностью мощности на поверхности яйца порядка 0,3 мВт/см ² в экспозиции 3-6 мин, затем в тех же режимах осуществляют облучение суточных цыплят до проведения первой вакцинации и далее в течение технологического цикла выращивания проводят последующее периодическое облучение цыплят излучением в тех же режимах каждые 6 дней, но не позднее, чем за 72 ч до очередной вакцинации.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что для облучения яиц и цыплят используют низкоинтенсивное ЭМИ КВЧ диапазона с дополнительной низкочастотной модуляцией в режиме сканирования от 1 до 10 Гц.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области птицеводства и может быть использовано на птицефабриках для повышения выводимости цыплят, в том числе из яиц, полученных от кур поздних сроков яйценоскости, а также для последующего формирования устойчивого иммунитета птицы.

В условиях промышленного производства актуальными являются проблемы: повышение вывода кондиционного молодняка птицы из яйца разного инкубационного качества; коррекция иммунодефицитных состояний различной этиологии в ранний постэмбриональный период и на последующих стадиях выращивания; формирование однородного в иммунологическом отношении стада; формирование устойчивого поствакцинального иммунитета, увеличение сохранности птицы.

Известны различные физические способы воздействия как на яйцо с целью улучшения показателей инкубации, так и на цыплят для стимуляции иммунной системы.

Известен радиационный способ обработки яиц перед закладкой в инкубатор для повышения выводимости (пат. RU 2120209 МПК⁶ А01К 41/00, публ. 1998 г.). В соответствии с данным способом перед закладкой яиц в инкубатор их подвергают одновременному воздействию тепла в интервале температур 37-40°С в течение 1-5 ч и обработке рентгеновским и гамма-излучением в интервале доз 10,5-15 рад, при мощности дозы ионизирующего излучения 1-10 рад/ч. Однако описанный способ обработки яиц относится к стрессорным способам воздействия, при этом воздействие осуществляется одномоментно и не используется какое-либо положительное воздействие на эмбрионы на последних этапах инкубации, где риск гибели высок.

Известен способ вывода цыплят, основанный на обработке яиц перед закладкой в инкубатор несколькими источниками лучистой энергии последовательно: излучением газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 с длиной волны 630-650 нм, средней дозой на поверхности яиц 23,1 эрг в экспозиции 15 с, светом гелий-неонового лазера длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности на поверхности яиц 50 мВт/см² в экспозиции 2 с и ультрафиолетовой лампы длиной волны 185-400 нм, средней дозой на поверхности яиц 20 мэрг в экспозиции 5 с. Такое воздействие на эмбрионы птиц перед закладкой в инкубатор осуществляют четырех-пятикратно с интервалом 5 мин. В результате чего снижается эмбриональный отход по количеству «ложно» оплодотворенных яиц, кровяных колец, замерших эмбрионов и задохликов, а также некондиционных, слабых цыплят и калек, в то время как вывод жизнеспособного потомства обеспечивается выше контроля на 8-12% (пат. №2053665 МПК⁶ А01К 67/02, А01К 45/00, публ. 1996 г.). Недостатком является технологически сложная реализация данного способа для применения в условиях промышленных птицефабрик, требуется многократная обработка яиц перед закладкой (4-5 раз), но нет воздействия на последующих стадиях эмбрионального развития птицы, где риск гибели высок.

Известен способ обработки яйца низкоинтенсивным электромагнитным излучением КВЧ диапазона, описанный в статье (В.Бурдашкин «Облучение яиц повышает выводимость», журн. «Птицеводство» №4, 2003), где описан способ стимуляции эмбрионов на яйцах кур кросса «Смена-2». Перед закладкой в инкубатор яйца обрабатывались однократно излучением КВЧ диапазона (частота излучения 53,53 ГГц). Облучатель установки для реализации способа выполнен в виде рупора с изолирующей насадкой, задающей расстояние до облучаемой поверхности. Плотность облучения на раскрыве рупора - 10 мВт/см ². Облучение проводилось в течение 30 с. По результатам инкубации исследовали отходы инкубации. Установлено увеличение вывода молодняка за счет уменьшения числа погибших зародышей в первые дни инкубации. Недостатком данного способа является то, что не используется положительное влияние облучения на последующих стадиях эмбрионального и постэмбрионального развития птицы, где риск гибели высок.

Известен способ повышения жизнеспособности птицы к болезни Ньюкасла путем повышения иммунитета птицы, который выбран в качестве наиболее близкого аналога (опубликованная заявка №2001128822, МПК⁷ А01К 45/00, A61N 5/08). Способ-прототип заключается в том, что последовательно осуществляют обогрев эмбрионов кур светом газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 длиной волны 680-650 нм, средней дозой на поверхности яиц 23,1 эрг в экспозиции 15 с; обработку излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104 длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности оптического потока на поверхности яиц 50 мВт/см³ в экспозиции 2 с, ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 длиной волны 400/185 нм, средней дозой на поверхности яиц 20 мэр/ч и двумя бактерицидными лампами БУВ-15, длиной волны 254/800 мм, номинальной мощностью на поверхности яиц 15 Вт в экспозициях по 5 с. Воздействие осуществляют четырехкратно с интервалом 5 мин. Обработку инкубационных яиц осуществляют перед инкубацией и на 6-ой, 12-ый и 18-ый дни инкубирования. В тех же режимах обрабатывают суточных цыплят перед иммунизацией их вакциной "Бор-74 ВГНКИ" против болезни Ньюкасла. Способ-прототип обеспечивает многократное воздействие излучением на эмбрионы кур и однократное воздействие на суточных цыплят, что повышает иммунитет птицы, но лишь на ранней стадии развития.

Однако данный способ не обеспечивает устойчивый иммунитет на протяжении всего технологического цикла выращивания птицы, поскольку известно, что для формирования устойчивого иммунитета необходимо многократное воздействие стимулирующим фактором (Аликин Ю.С., Кирсанов В.В., Клименко В.П., Понюхов В.А., Чимитов В.Д., Юшков Ю.Г. Методология применения иммуномодуляторов в промышленном птицеводстве // Био. - 2004. - №№4, 5, 6; Бирман Б., Громов И. Иммунодефицит у птиц. - Минск: - 2001).

Задачей, решаемой настоящим изобретением, является формирование устойчивого иммунитета птицы на всех этапах технологического цикла выращивания и повышение выводимости цыплят, в том числе из яиц, получаемых от промышленной птицы поздних сроков яйценоскости.

Указанный технический результат в разработанном способе повышения иммунитета птицы в условиях промышленного производства, так же, как и в способе прототипе, обеспечивается за счет обработки яиц и цыплят низкоинтенсивным электромагнитным излучением (ЭМИ).

Новым в разработанном способе является то, что вначале перед закладкой в инкубатор проводят однократное облучение инкубационного яйца ЭМИ КВЧ диапазона плотностью мощности на поверхности яйца порядка 0,3 мВт/см ² в экспозиции 3-6 минут, затем в тех же режимах осуществляют облучение суточных цыплят до проведения первой вакцинации и далее в течение технологического цикла выращивания проводят последующее периодическое облучение цыплят излучением в тех же режимах каждые 6 дней, но не позднее, чем за 72 часа до очередной вакцинации.

Целесообразно в частном случае реализации способа для облучения яиц и цыплят использовать низкоинтенсивное ЭМИ КВЧ диапазона с дополнительной низкочастотной модуляцией в режиме сканирования от 1 до 10 Гц.

Формирование устойчивого иммунитета птицы на всех этапах технологического цикла выращивания разработанным способом может быть объяснено следующим образом.

Одним из свойств низкоинтенсивного электромагнитного излучения КВЧ диапазона является повышение иммунитета путем повышения неспецифической резистентности организма за счет синтеза биологически активных веществ иммунокомпетентными клетками организма (Бецкий О.В., Кислов В.В., Лебедева Н.Н. Миллиметровые волны и живые системы / «Сайнс-пресс», М., 2004 с.96-97, 116-117) Кроме того, многочисленные клинические исследования иммунологических реакций организма на излучение КВЧ диапазона дают основания рассматривать воздействие данного фактора для формирования антистрессовых реакций, что способствует, в свою очередь, лучшей адаптации организма к внешним воздействиям (см. там же).

Решение поставленной задачи в условиях промышленного производства достигается путем многократного воздействия определенной дозой низкоинтенсивного электромагнитного излучения КВЧ диапазона на разных стадиях эмбрионального и постэмбрионального развития птицы. Обработка инкубационного яйца перед закладкой в инкубатор используется для стимуляции эмбриогенеза и уменьшения гибели эмбрионов в первые 48 часов инкубации; обработкой суточных цыплят до проведения первой вакцинации достигается уменьшение вакцинального стресса, что способствует более эффективной вакцинации; обработка птицы на последующих стадиях технологического цикла выращивания позволяет уменьшить негативное воздействие ряда факторов (иммунотропные вирусы, гельминты, возрастная незрелость иммунной системы, технологический стресс и т.д.), приводящих к развитию стойких иммунопатологических состояний, и сформировать стойкий иммунитет (Болотников И.А., Михкиева B.C., Олейник Е.К. Стресс и иммунитет у птиц. - Л.: Наука, 1999. - 118 с.; Воронин Е.С., Петров A.M., Серых М.М., Девришов Д.А. Иммунология. - М.: Колос-Пресс - 2002 - 408 с.; Воздействие миллиметровых волн на биологические объекты и их применение в медицине // Physics of alive. - 2001. - 2.; Джавадов Э.Д. Вирус-индуцированные иммуносупресии и способы их предупреждения в промышленном птицеводстве: Автореф. дисс. докт. вет. наук. - М. - 2004. - 49 с.; Карпуть И.М., Бабина М.П. Формирование иммунного статуса цыплят-бройлеров // Ветеринария. - 1996. - 6. - С.28-30; Система эпизоотологического надзора и контроля при микстинвазиях птиц / В.В.Сочнев, А.В.Аринкин, Э.Х.Даугалиева и др.: Под ред. В.В.Сочнева. - Н.Новгород. - 1998. - 161 с.).

Сущность изобретения поясняется примерами.

Пример 1. В работе использовалось инкубационное яйцо, полученное от кур мясного (Барос 123) и яичного (ISA-Brawn) кроссов, различных сроков яйценоскости. Опытные и контрольные группы формировались по принципу аналогов. Для 1 группы (кросс Барос 123) опытная и контрольная по 816 яиц, для 2 группы (кросс ISA-Brawn) опытная и контрольная по 816 яиц. Инкубацию проводили с соблюдением стандартных технологических параметров в промышленных инкубаторах ИУП-Ф-45. Биологический контроль в ходе инкубации, анализ динамики смертности эмбрионов по периодам инкубации и оценку показателей вывода осуществляли по общепринятой методике (Бессарабов Б.Ф., Садчиков С.Ю. Эмбриональные и постэмбриональные заболевания сельскохозяйственной птицы. МГАВМиБ им. К.И.Скрябина, Москва, 2003).

Яйцо опытных групп обрабатывали низкоинтенсивным ЭМИ КВЧ диапазона за 10 часов до закладки в инкубатор. Облучение проводилось генератором миллиметрового излучения (ЭМИ КВЧ диапазона) ПОРТ-ЭЛМ/НН (частота 53,56 ГГц) с плотностью мощности 0,29 мВт/см² на поверхности яиц, в экспозиции 3 минуты. Результаты инкубации представлены в табл.1.

Таблица 1
Показатели		1 группа			Р	2 группа		Р
		опыт		контр		опыт	контр
кросс		Барос 123				Isa-Brawn
Заложено инкубационного яйца, шт.		816	816		-	816	816	-
Анализ отходов инкубации	Неоплодотворенное яйцо, %	5,3±0,8	7,4±0,9		>0,05	7±0,9	7,2±0,9	>0,05
	Гибель в первые 48 ч, %	1,2±0,4	2,5±0,6		<0,05	0,4±0,2	1,5±0,4	<0,05
	гибель на 3-7 сутки %	2,9±0,6	3,1±0,6		>0,05	1,4±0,4	1,7±0,5	>0,05
	гибель на 8-18 сутки, %	2,6±0,6	2,8±0,6		>0,05	4±0,7	2,2±0,3	<0,05
	гибель на 19-21 сутки, %	3,3±0,6	3,4±0,6		>0,05	5,2±0,8	7,7±0,9	<0,05
Вывод	всего %	85±1,3	81±1,4		<0,05	82±1,4	80±1,4	>0,05
	Кондиционный молодняк, %	83±1,3	79±1,4		<0,05	80±1,4	75±1,5	<0,05

Установлено, что предложенный режим облучения инкубационного яйца в производственных условиях позволяет достоверно повысить вывод молодняка в опытных группах по сравнению с показателями контрольных, необлученных, групп. Так, общий вывод в опытной и контрольной группе составил соответственно 85% и 81% (кросс Барос 123); 80% и 75% (кросс ISA-Brawn). Увеличение общего вывода в опытных группах связано с достоверным снижением гибели зародышей на ранних стадиях эмбрионального развития (в первые 48 часов инкубации). На более поздних стадиях инкубации показатели в опытных группах существенно не отличаются от контрольных.

Отмечено достоверное увеличение выхода кондиционного молодняка из облученных яиц. Кондиционный молодняк в опытной и контрольной группе составил соответственно 83% и 79% (кросс Барос 123); 80% и 75% (кросс Isa-Brawn).

Одновременно изучалось влияние ЭМИ КВЧ на вывод молодняка из инкубационного яйца, полученного от несушек различных сроков яйценоскости кросса Барос 123. Опытные и контрольные группы формировались по принципу аналогов. Для 1 группы (возраст несушек 259 дней), для 2 группы (возраст несушек 336 дней), для 3 группы (возраст несушек 405 дней) по 136 яиц в опытных и контрольных группах. Обработку проводили по вышеописанной методике. Результаты вывода приведены в табл.2.

Таблица 2
Показатели		1 группа		2 группа		3 группа
		опыт	контр	опыт	контр	опыт	контр
Возраст несушек, дней		259		336		405
Заложено инкубационного яйца, шт.		136	136	136	136	136	136
Вывод	Всего %	88±2,8	85±3,0	86±3,0	80±3,4	79±3,5	77±3,6
	Кондиционный молодняк, %	88±2,8	84±3,2	85±3,0	77±3,6	77±°3,6	72±3,9

Установлено, что воздействие низкоинтенсивного ЭМИ КВЧ диапазона способствует существенному повышению вывода кондиционного молодняка из яиц низкого инкубационного качества, полученных от птиц поздних сроков яйценоскости. Так, кондиционный молодняк кросса Барос-123 в опытной и контрольной группе составил соответственно 88% и 84% (возраст несушек 259 дней); 85% и 77% (возраст несушек 336 дней), 77% и 72% (возраст несушек 405 дней).

Таким образом:

1. Обработка инкубационного яйца низкоинтенсивным ЭМИ КВЧ диапазона оказывает положительное влияние как на эмбриональное, так и на раннее постэмбриональное развитие птицы:

- приводит к достоверному снижению гибели эмбрионов на ранних стадиях развития. Гибель зародышей в первые 48 часов инкубации уменьшается в 2 раза;

- вывод цыплят увеличивается на 2-4%;

- достоверно увеличивается выход кондиционного молодняка на 4%.

2. Облучение способствует существенному повышению вывода кондиционного молодняка из яиц низкого инкубационного качества, полученных от птиц поздних сроков яйценоскости 5-8%.

3. Метод обработки инкубационных яиц низкоинтенсивным ЭМИ КВЧ диапазона является одним из перспективных направлений использования биостимулирующих свойств этого излучения в промышленном птицеводстве. Это обусловлено также возможностью разработки простых технологических решений при внедрении метода в схему стандартных предынкубационных мероприятий.

Пример 2. Из цыплят суточного возраста кросса ISA-Brawn были составлены группы-аналоги (опытная и контрольная) по 160 голов в каждой. В опытную группу вошли цыплята, полученные из яйца, обработанного ЭМИ КВЧ диапазона перед закладкой в инкубатор. В контрольную группу вошли цыплята, полученные из необработанного яйца. Цыплята опытной группы (160 голов) были обработаны низкоинтенсивным ЭМИ КВЧ диапазона через 10-12 часов после вывода, перед первой вакцинацией (болезнь Марека и инфекционный бронхит кур) и транспортировкой в цеха. В дальнейшем обработка птицы проводилась каждые 6 дней, в том числе за 72 часа перед вакцинациями и проведением плановых ветеринарных мероприятий. Облучение проводилось генератором миллиметрового излучения ПОРТ-ЭЛМ/НН (частота 53,56 ГГц) с плотностью мощности 0,3 мВт/см на поверхности объекта, в экспозиции 3-6 минут.

Цыплята контрольной группы (160 голов) обработке миллиметровым излучением (ЭМИ КВЧ диапазона) не подвергались.

В 20-дневном возрасте цыплята опытной и контрольной групп были привиты спрей-методом живой вирус - вакциной «Ла-Сота» против ньюкаслской болезни в соответствии с наставлением по ее применению.

Формирование и напряженность иммунитета против ньюкаслской болезни изучали, используя реакцию торможения гемагглютинации (см. табл.3).

Таблица 3
Показатели		Титр AT log 2a		Средний геом. титр		Защита %*			Однородность, %**
Экспериментальные группы		опыт	контр	опыт	контр	опыт		контр	опыт	контр
Вакцинация (вид вакцины, сроки, способ применения)		Ла-Сота, спрей-метод, в возрасте 20 суток
Время после вакцинации, дней	14	6,3	5,5	1:79	1:45	100	92		92	84
	28	6,16	5,04	1:74	1:37	95	88		88	84
	42	5,92	4,84	1:56	1:28	95	80		96	84
	56	5,76	4,6	1:56	1:24	92	72		92	72
ревакцинация (вид вакц., сроки, способ применения)		ИБК + НБ, спрей-метод, в возрасте 76 дней
Время после ревакцинации, дней	14	8,08	9,88	1:447	1:958	100	100		52	32
* % положительно реагирующих особей, у которых титр антител 1:16 и выше
** % положительно реагирующих особей, у которых титр антител в диапазоне 1:16-1:512

Установлено, что титры специфических антител у цыплят опытной группы были более высокими и варьировали от 1:239 на 14 день до 1:56 на 56 день после первой вакцинации, у цыплят контрольной группы титры антител в эти же сроки были 1:138-1:24. Динамика угасания напряженности группового иммунитета также была не одинакова. Так в опытной группе напряженность группового иммунитета на 14 день после вакцинации составила 100%, на 56 день - 92%, в контрольной группе соответственно 92% и 72%. Полученные результаты статистически достоверны (р<0,05).

Таким образом:

1. Формирование поствакцинального иммунитета на примере ньюкаслской болезни у цыплят под влиянием низкоинтенсивного ЭМИ КВЧ происходит быстрее и надежнее.

2. Высокие титры антител (титр антител 1:16 и выше) сохраняются в течение 60 дней у 90% всего привитого поголовья. Это позволяет увеличить сроки ревакцинаций и избежать частых антигенных раздражений (многократные вакцинации за короткий промежуток времени) иммунной системы, что имеет большое практическое значение.

3. Метод ЭМИ КВЧ как весьма простой и экономически эффективный можно внедрять в любую производственную технологию выращивания птицы без какого-либо нарушения данной технологии.