способ получения стимулятора корнеобразования гороха

Формула изобретения

Способ получения стимулятора корнеобразования гороха, включающий обработку высушенного и измельченного растительного сырья реагентом, отличающийся тем, что в качестве растительного сырья используют корни овса посевного на 4-е сутки вегетации в количестве 50 г или 100 г, а в качестве реагента используют 50%-ный этиловый спирт в количестве 500 мл или 1 л соответственно, в котором выдерживают корни овса в течение 1 часа на кипящей водяной бане, фильтруют, после чего полученный спиртовой экстракт стимулятора концентрируют под вакуумом, очищают от примесей диэтиловым эфиром, фильтруют через бумажный фильтр и высушивают на воздухе.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к способу получения стимулятора корнеобразования гороха (pisum sativum) с использованием растительного сырья.

Известен способ получения стимулятора корнеобразования зерновых культур путем обработки измельченного воздушно-сухого корневища пырея при нагревании до 90-100°С водным раствором реагента, полученного с использованием мочевины и азотной кислоты с последующим выдерживанием и отделением целевого продукта от осадка после остывания (авт.св. СССР № 1625475, А01N 61/00, 1991).

Недостатком данного способа является то, что эффективность действия стимулятора корнеобразования проявляется только на зерновых культурах. Между тем зернобобовые культуры также нуждаются в стимулировании корнеобразования, так как первые дни вегетации наиболее подвержены стрессовым состояниям и атаке патогенов.

Задачей изобретения является увеличение эффективности действия стимулятора корнеобразования и расширение функциональных возможностей путем его использования на зернобобовых культурах.

Поставленная задача решается благодаря тому, что в известном способе получения стимулятора корнеобразования зерновых культур, заключающемся в том, что растительное сырье выдерживают в реагенте с последующим отделением целевого продукта фильтрованием, согласно изобретению в качестве растительного сырья используют корни овса посевного на 4-е сутки вегетации в количестве 50 г или 100 г, а в качестве реагента используют 50%-ный этиловый спирт в количестве 500 мл или 1 л соответственно, в котором выдерживают корни овса в течение 1 часа на кипящей водяной бане, фильтруют, после чего полученный спиртовой экстракт стимулятора концентрируют под вакуумом, очищают от примесей диэтиловым эфиром, фильтруют через бумажный фильтр и высушивают на воздухе.

Сущность предлагаемого способа получения стимулятора корнеобразования гороха заключается в следующем. Высушенные и измельченные до порошка корни овса посевного, полученные на 4-е сутки вегетации, в количестве 50 г или 100 г выдерживают в 500 мл или 1 л 50%-ного этилового спирта на кипящей водяной бане в течение 1 часа. Отделяют отработанное сырье фильтрованием. Спиртовой экстракт стимулятора концентрируют под вакуумом и проводят очищение от примесей путем обработки диэтиловым эфиром в количестве 20 мл. Полученный препарат стимулятора фильтруют через бумажный фильтр и высушивают на воздухе.

В итоге из 100 г порошка корней овса предлагаемым способом получают 2,8 г стимулятора.

Полученный стимулятор представляет собой порошок желтого цвета, без запаха и вкуса. Хорошо растворим в 96%-ном спирте.

Пример 1. 50 г высушенных и измельченных до порошка корней овса посевного, полученных на 4-е сутки вегетации, выдерживают в 500 мл 50%-ного этилового спирта на кипящей водяной бане в течение 1 часа. Отработанное сырье отделяют фильтрованием. Спиртовой экстракт стимулятора концентрируют под вакуумом, очищают от примесей путем обработки диэтиловым эфиром в количестве 5 мл. Полученный препарат стимулятора фильтруют через бумажный фильтр и высушивают на воздухе. Выход стимулятора составляет 1,6 г. Готовят водные растворы стимулятора, полученного данным способом, с концентрациями 1·10^-6-1·10^-10 %.

Далее были проведены испытания полученного стимулятора на горохе сорта «Орловчанка».

Варианты испытаний:

1. Контроль - семена гороха, замоченные в дистиллированной воде на 2 часа.

2. Семена гороха, замоченные в растворе стимулятора, полученного по известному способу, с концентрацией 0,08%, в течение 2-х часов.

3. Семена гороха, замоченные в свежеприготовленных водных растворах стимулятора, полученного предлагаемым способом, с концентрациями 1·10 ^-6-1·10^-10%, в течение 2-х часов.

Длину и массу корней гороха определяли на 20-е сутки вегетации.

Результаты влияния стимулятора корнеобразования на рост и массу корневой системы гороха представлены в таблице 1.

Таблица 1
Влияние стимулятора корнеобразования на рост и массу корневой системы гороха
Варианты испытания	Концентрация, %	Длина корней, см	Масса корней, г
Контроль (дистиллированная вода)	-	20,3±0,17	0,25±0,16
Стимулятор по известному способу	0,08	21,6±0,29	0,31±0,12
	1·10-6	22,4±0,21	0,38±0,16
Стимулятор по	1·10 -7	23,8±0,26	0,43±0,14
предлагаемому	1·10-8	25,3±0,28	0,48±0,2
способу	1·10 -9	26,7±0,24	0,52±0,12
	1·10-10	21,4±0,16	0,27±0,17

Как видно из таблицы 1, концентрация стимулятора корнеобразования гороха по предлагаемому способу 1-10^-9% является самой эффективной. Дальнейшее уменьшение концентрации нецелесообразно.

Стимулятор корнеобразования, полученный предлагаемым способом, увеличивает длину корней гороха на 4-24%, массу корней на 23-68% по сравнению со стимулятором по известному способу и на 6-32% длину корней, массу корней на 52-108% по сравнению с контролем.

Пример 2.

Проводят испытания на горохе сорта «Орловчанка», инфицированного Fusarium oxysporum.

Варианты испытаний:

1. Контроль - семена гороха, инфицированные Fusarium oxysporum.

2. Семена гороха, инфицированные Fusarium oxysporum, и замоченные в растворе стимулятора, полученного по известному способу, с концентрацией 0,08%, в течение 2-х часов.

3. Семена гороха, инфицированные Fusarium oxysporum, и замоченные в растворе стимулятора, полученного предлагаемым способом, с концентрациями 1·10^-6-1·10 ^-10%, в течение 2-х часов.

Длину и массу корней гороха определяли на 20-е сутки вегетации.

Результаты влияния стимулятора корнеобразования на рост и массу корневой системы гороха, инфицированного Fusarium oxysporum, представлены в таблице 2.

Как видно из таблицы 2, обработка гороха, инфицированного Fusarium oxysporum, предлагаемым стимулятором корнеобразования, в концентрации 1·10^-9% является наиболее эффективной. Длина корней гороха, обработанного предлагаемым стимулятором, увеличивается на 30-44%, масса корней увеличивается на 58-136% по сравнению с контролем и на 18-30% увеличивается длина корней гороха, на 36-104% масса корней по сравнению с длиной и массой корней гороха, инфицированного Fusarium oxysporum и обработанного известным стимулятором.

Таким образом, использование предлагаемого стимулятора корнеобразования гороха (pisum sativum) оказывает более эффективное действие на рост корневой системы и на массу гороха, способствует защите растения от атаки и инфицирования патогенами.