способ определения акрилонитрила в его аддуктах с белками крови

Формула изобретения

Способ определения акрилонитрила в его аддуктах с белками крови, включающий взятие крови, выделение и очищение глобина по Остерману - Голкару, подготовку образцов к количественному определению, количественное определение акрилонитрила с использованием газовой хроматографии и масс-спектрометрии, отличающийся тем, что подготовку образцов к количественному определению осуществляют путем окисления атома серы в алкилированных белках до сульфоксидной формы перекисью водорода с последующим освобождением акрилонитрила из сульфоксидной формы при (250 50)^oС в инъекционной камере газового хроматографа.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области медицины, а именно экспериментальной и практической токсикологии, и может быть использовано для определения степени алкилирования белков, в частности гемоглобина, акрилонитрилом в организме экспериментальных животных и людей, подвергшихся воздействию этого ксенобиотика.

Количественная оценка аддуктов алкилирующих ксенобиотиков обычно производится с применением газовой хроматографии и масс-спектрометрии.

До сих пор при подготовке проб к анализу предварительно производился гидролиз алкилированных белков с использованием сильных минеральных кислот либо щелочей, затем следовала стадия изоляции молекул ксенобиотика, ковалентно связанных с аминокислотами (чаще цистеином). После чего изолированные соединения подвергались дериватизации для придания им формы летучих эфиров. Потом производилось собственно изменение с применением газовой хроматографии и масс-спектрометрии по стандартной методике (Fennel T.R., Mac NeeCa J.P., Tunner M.J. Toxicologist, 1989, voc. 9, p. 509).

Недостатками этого способа являются:

Невысокая эффективность метода (часть анализируемых компонентов теряется в стадии дериватизации, так как отсутствует прямой перенос их в хроматографическую колонку).

Длительность периода подготовки образцов к изменению (18 ч).

Необходимость в специальном оборудовании в период подготовки образцов.

Наиболее близким техническим решением, избранным в качестве прототипа, является применяемый в настоящее время способ определения акрилонитрила в его аддуктах с белками, использующий газовую хроматографию (Fennel T.R., MacNeeCa J.P., Tunner M.J., Toxicologist, 1989, Voc. 9, p. 509).

Способ осуществляется следующим образом.

Экспериментальным животным (крысам) за 24 ч до начала определения вводится водный раствор акрилонитрила в дозе 25 мг/кг внутрибрюшинно. Животным контрольной группы вводится изотонический раствор натрия хлорида в том же объеме. Пробы крови забираются путем сердечной пункции. Глобин выделяется по методу Остермана-Голкара (см. в конце текста). Около 5 мг глобина от каждого животного растворяется в 6 М соляной кислоты до концентрации 10 мг/мл. Образцы гидролизуются в течение 18 ч при температуре 110^oC в условиях вакуума. Гидролизаты выпариваются, а затем растворяются в 1 мл воды и вводятся в колонки Dowex 50 для выделения анализируемого компонента, в данном случае -S-(2-карбоксиэтил)цистеина. Дериватизация производится по общепринятой методике.

Дальнейшее измерение проводится с использованием газовой хроматографии по стандартной методике.

Однако данный метод имеет следующие недостатки:

1. Невысокая эффективность метода (часть анализируемых компонентов теряется в стадии дериватизации, так как отсутствует прямой перенос их в хроматографическую колонку).

2. Длительность периода подготовки образцов к измерению (18 ч).

3. Необходима специальная сепарационная техника для получения S-(2-карбоксиэтил)цистеина.

4. Этот метод не может быть применен при совместном воздействии акрилонитрила, акриламида и метакрилата, так как в результате гидролиза соединений, алкилированных ими, освобождается одно и то же вещество S-(2-карбоксиэтил)цистеин.

Технические и аналитические сложности препятствуют внедрению данного метода в практическую токсикологию и здравоохранение. Целью предложенного изобретения является упрощение способа. Поставленная цель достигается тем, что количественное определение акрилонитрила в его аддуктах с белками производится следующим образом: а) окисление атома серы в алкилированном цистеине до сульфоксидной формы с помощью перекиси водорода, б) освобождение акрилонитрила из сульфоксидной формы при высокой температуре (2505^oC) в инъекционной камере газового хроматографа, в) количественное определение акрилонитрила с использованием газовой хроматографии.

Сопоставительный анализ заявляемого решения с прототипом показывает, что в заявляемом способе, в отличие от известного, производится окисление атома серы в алкилированном цистеине до сульфоксидной формы с помощью перекиси водорода, что позволяет в дальнейшем отделить исходную молекулу акрилонитрила. Таким образом, заявляемый способ соответствует критериям изобретения "новизна" и "изобретательский уровень".

Предлагаемый способ определения акрилонитрила в его аддуктах с белками осуществляют следующим образом: в качестве экспериментальных животных использовались крысы-самцы линии Вистар с массой 470 - 530 г. Животные имели свободный доступ к воде и пище в течение всего эксперимента. Водные растворы акрилонитрила вводились внутрибрюшинно в объеме 1 мл/кг массы тела в диапазоне доз от 1 до 50 мг/кг акрилонитрила однократно. Контрольные животные получали внутрибрюшинно изотонический раствор натрия хлорида (1 мл/кг). Количество животных каждой группы равнялось 5. Под нембуталовым наркозом пробы крови были взяты путем сердечной пункции через 24 ч после инъекции акрилонитрила. Кроме того, были взяты образцы человеческой крови (10 мл) путем пунктирования вены при текущем медицинском осмотре у рабочих Красноярского завода синтетического каучука (6 мужчин и 6 женщин в возрасте 20 - 45 лет), имеющих по роду деятельности, контакт с акрилонитрилом на протяжении от 1 до 10 лет. Контрольные образцы крови были получены от 30 человек, не имеющих контакта с акрилонитрилом. Очищение глобина производилось по методу Остермана-Голкара (Osterman - GolKar S., Ehrenberg L., Segerback D., Mutal. Res., 1976, vol. 34, p. 1-10). Затем производили окисление атома серы в алкилированном глобине до образования сульфоксидной формы.

Инкубационная смесь, общим объемом 0,5 мл, включала 0,25 мл воды с растворенным в ней глобином (10 мг) и 0,25 мг 3%-ной перекиси водорода (для окисления глобина). Эта смесь инкубировалась при 30^oC в течение 30 мин при постоянном встряхивании. Реакция останавливалась после разрушения перекиси водорода путем добавления каталазы (484 ЕД). Во избежание интенсивного вспенивания добавлялось 5 мкл октанола. Потом по 2 мкл полученных образцов вводились сплитметодом в инъекционную камеру газового хроматографа, где при температуре 250^oC происходило освобождение исходного акрилонитрила из соединения с окисленными продуктами и следовал прямой перенос в колонку акрилонитрила в состоянии газовой фазы.

Примерная схема способа показана на чертеже, где часть А - освобождение акрилонитрила из связи с окисленным производным в свободном виде (86% от расчетного); часть Б - частичное освобождение акрилонитрила в виде HO-S-CH₂-CH₂-CN 3-S-гидроксимеркаптопропанонитрила.

Аналитические доказательства, базирующиеся на газовой хроматографии и масс-спектрометрии, подтверждают идентичность хроматографического пика вещества, присоединенного к белку - акрилонитрилу, определяющуюся одинаковыми времяудержанием и выходом из колонки, а также ионным спектром, совпадающим со спектром акрилонитрила. У животных контрольной группы и лиц, не подвергавшихся воздействию акрилонитрила в рабочих условиях, аддуктов акрилонитрила с гемоглобином обнаружено не было.

В эксперименте исследовались пробы крови, взятые у 25 экспериментальных животных и у 42 человек.

Использование предлагаемого способа определения акрилонитрила в его аддуктах с белками обеспечивает по сравнению с прототипом следующие преимущества:

1. Этот способ более чувствительный, чем прототип. Так, при уровне доз акрилонитрила 25 - 28 мг/кг, количество акрилонитрила, связанного с гемоглобином и измеренного как S-(2-карбоксиэтил)цистеин, составляет примерно 27% от соответствующей величины, определенной по предлагаемому нами способу (2).

2. Исключается принципиальная потеря анализируемых компонентов в стадии дериватизации, так как имеется прямой перенос акрилонитрила из окисленных аддуктов в хроматографическую колонку.

3. Период подготовки образцов значительно сокращается (30 мин вместо 18 ч).

4. Отсутствует необходимость в специальной сепарационной технике для получения S-(2-карбоксиэтил)цистеина.

5. Способ сравнительно недорогой, так как основной реагент - перекись водорода, является обычным коммерческим продуктом.

6. Появляется возможность дифференцированного определения акрилонитрила и других акриловых соединений в аддуктах с белками.