способ получения 3'-йодфолиевой и 3'-бромфолиевой кислот, меченных радиоактивными изотопами йода или брома

Формула изобретения

1. Способ получения 3'-йодфолиевой и 3'-бромфолиевой кислот, меченных радиоактивными изотопами йода или брома, заключающийся в том, что к водному раствору щелочной соли фолиевой кислоты добавляют источник радиоактивного йода или радиоактивного брома так, чтобы pH этого раствора был около 7, с получением раствора, содержащего фолиевую кислоту и йодид-иона или бромид-иона, а затем понижают pH этого раствора до 3,5-4,9, добавляя к вышеуказанному раствору окислитель из группы N-хлорсульфамидов кислот в буферном растворе.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве окислителя используют хлорамин Т либо хлорамин В.

Описание изобретения к патенту

Изобретение относится к области биохимии и радиохимии.

Фолиевая кислота относится к классу витаминов группы В.

Фолиевая кислота и ее производные, такие как аминоптерин и метотрексат, эффективно поглощаются некоторыми типами раковых опухолей. Это делает возможным применение фолиевой кислоты и ее производных, меченных радиоактивными изотопами, для целей медицинской диагностики и радиотерапии. Поскольку фолиевая кислота в организме человека содержится в очень малых количествах (концентрация в плазме крови составляет сотые доли микромоля в литре), то приготовленные препараты должны обладать высокой удельной радиоактивностью, а метод синтеза должен быть приемлем для работы с короткоживущими изотопами, такими как йод-121 или бром-75 с периодом полураспада около 2 часов. Эти изотопы в последнее время находят все более широкое применение в позитронно-эмиссионной томографии, так как являются позитронными излучателями.

В литературе описаны способы получения меченных йодом различных производных, исходя из растворов соединения, которое следует пометить, с применением радиоактивного йода в форме йодид-ионов и хлорамина.

Известен способ мечения биологических соединений, описанный в работе [1.]: F.С.Greenwood & W.M.Hunter, Biochem. J. (1963) 89, 114. Реакция проводится при pH 7.5

Однако этот способ в случае применения для мечения йодом фолиевой кислоты дает очень малые выходы по радиоактивности (менее 1%).

Чтобы обойти проявленную инертность фолиевой кислоты в этой реакции, патентовались способы, в которых к глютаминовому остатку фолиевой кислоты присоединялись легко йодируемые тирозин или гистидин.

Известен способ получения производных фолиевой кислоты, меченных йодом, описанный в работе [2]: US Patent № 3989812,; [3] US Patent № 4276280). При этом получались соединения, соответствующие формуле (1), йодная метка занимала положение R.

Способ, описанный в US Patente № 3989812, заключается в следующем. К раствору, состоящему из 100 мкл 0.1 М гидроксида натрия и содержащему 1 мСi NaI ¹²⁵, 20 мкл 0.5 М NaH₂PO₄ и 10 мкл 0.5 М фосфата натрия pH 7.4, добавляют 10 мкг птероил- -глютамил-тирозина в фосфатном буфере (0.05 М, pH 7.4) и 20 мкл свежеприготовленного раствора хлорамина Т в 0.05 М фосфатном буфере pH 7.4 (5 мг/мл). Через 15 секунд добавлено 20 мкл раствора метабисульфита натрия в 0.05 М фосфатном буфере pH 7.4. Реакционная смесь разделена на колонке BioGel-P2, а затем на ДЕАЕ ионообменной колонке.

Недостатком является то, что при этом образуется не фолиевая кислота, меченная йодом, а производное фолиевой кислоты, меченное йодом, которое существенно отличается от фолиевой кислоты по структуре, распределению зарядов, наличием дополнительных гидрофобных групп. Это может изменить условия его транспорта в клетке по сравнению с природной фолиевой кислотой.

Известно, например, что если вместо гистидина или тирозина стоит еще один остаток глютаминовой кислоты, то такое производное фолиевой кислоты в клетку не проникает несмотря на то, что молекула глютаминовой кислоты занимает меньший объем, чем молекула гистидина или тирозина.

В связи со сказанным представляется перспективным метод, позволяющий метить изотопами йода и брома саму фолиевую кислоту, а не продукты ее присоединения к другим легко йодируемым молекулам, т.е. метод, позволяющий

получать соединения, соответствующие формуле (2), где бром или йод занимает положение R.

Причем этот метод должен быть пригоден для работы с количествами йода или брома, меньшими микрограмма.

В литературе описан способ мечения изотопом I¹³¹ соединения, близкого по структуре к фолиевой кислоте, -аминоптерина [4]: D.G.Johus et al J. Nuclear Med., v.9, № 10, 1968, 530-536). В этом способе получают 3'-йодаминоптерин, т.е. йодная метка присоединяется к самому соединению (формула (3)), а не к структуре, облегчающей йодирование.

К раствору 10 MCi NaI¹³¹ в 0.4 мл сульфата натрия были добавлены при перемешивании следующие реагенты в указанном порядке: порошок аминоптерина (20 мг); йодная кислота - 4.5 мг; йод - 7.5 мг; диметилформамид - 0.5 мл; и четыреххлористый углерод - 0.1 мл. Сосуд закрыли и перемешивали в течение 18 часов. Затем реакционная смесь была разделена на колонке с ДЕАЕ-целлюлозой.

Однако способ дает малый выход - (4÷10%), низкую удельную активность (в приведенной публикации в нескольких экспериментах был получен разброс 50-300 микрокюри на микромоль), образование большого количества загрязняющих примесей, в том числе радиоактивных, и длительность процедуры синтеза (18 часов).

Этот способ близок к заявляемому по тому факту, что метят непосредственно соединение, которое близко по структурной формуле, а не его производное.

Заявляемый объект относится к способу мечения изотопами йода или брома непосредственно фолиевой кислоты.

В патентной и научно-технической литературе мы не обнаружили способов мечения фолиевой кислоты, поэтому прототип отсутствует.

Мы заявляем способ получения 3'-йодфолиевой и 3'-бромфолиевой кислот, меченных радиоактивными изотопами йода и брома, заключающийся в том, что готовят исходный раствор, содержащий фолиевую кислоту, радиоактивный йод или радиоактивный бром в виде йодид-иона или бромид-иона при pH 7, добавляют к исходному раствору подкисленный раствор окислителя из группы хлорированных амидов кислот, доводят pH раствора до 3.5÷4.9, оптимально до 4.7, переводя фолиевую кислоту в гель. Выделение целевого продукта осуществляют методом обращено-фазной хроматографии. В качестве окислителя используют хлорамин Т, либо хлорамин В.

Наши исследования показали, что причиной неудачи при попытке мечения самой фолиевой кислоты по способам [1] является медленность реакции фолиевой кислоты с йодноватистой кислотой HIO, которая в способах [1] является действующим агентом и образуется при реакции йодид-иона с хлорамином. Из-за медленности реакции HIO с фолиевой кислотой, преобладающими в системе реакциями становятся диспропорционирование HIO и ее окисление избытком хлорамина, приводящие к радикальному снижению выхода целевого продукта и росту выхода побочных продуктов.

Проведение реакции в условиях, способствующих образованию катионов I⁺ и Br⁺, позволило нам разработать эффективный вариант синтеза йодфолиевой и бромфолиевой кислот, меченных изотопами йода и брома.

Сущность предлагаемого нами способа состоит в том, чтобы в реакции йодирования с использованием окислителей типа хлорамина, которая во всех патентах проводится при pH выше 7, перейти к проведению реакции при pH значительно более низком. Однако если проводить реакцию в условиях, в которых проводится синтез относительно больших количеств немеченой йодфолиевой кислоты, описанных в патентах [5] - US Patent 2570391 (1951); [6] US Patent 2570392 (1951), где фолиевая кислота находится в растворе 5М HCl при низком pH, то, как показали наши эксперименты, большая часть (окислителя) хлорамина расходуется на образование 3'-хлорфолиевой и 3',5'-дихлорфолиевой кислот. Причем последняя не может быть отделена от целевого продукта обращенно-фазной хроматографией, которая используется для разделения в предлагаемом нами способе. Нами было найдено значение pH в интервале 3,5-4,9, при котором одновременно удовлетворяются условия малого времени реакции (что важно для работы с короткоживущими изотопами), больших выходов и пренебрежимо малых выходов 3',5'-дихлорфолиевой кислоты. Сложность состоит в том, что при таких pH фолиевая кислота очень малорастворима. Поэтому в заявляемом способе подготовительные (исходные) растворы имеют pH около 7, и только одновременно с началом рекции pH понижают до 4.7. При этом фолиевая кислота переходит в гель тогда, когда все реагенты уже добавлены. В геле некоторое время сохраняется реакционноспособность фолиевой кислоты, достаточная для прохождения целевой реакции до конца.

Если pH ниже 3, 5, то резко увеличивается доля 3',5'-дихлорфолиевой кислоты, которая загрязняет целевой продукт и практически неотделима методом обращенно-фазной хроматографии; если pH выше 4,9, значительно уменьшается выход целевого продукта.

Пример 1.

Раствор 0.1 М натриевой соли фолиевой кислоты готовят путем растворения 480 мг фолиевой кислоты, предварительно очищенной путем перекристаллизации, в 8 мл 0.28 М раствора едкого натра. Затем pH раствора доводят до 7 путем добавления примерно 1.2 мл 0.1 М раствора серной кислоты порциями с энергичным перемешиванием так, чтобы образующийся в месте прибавления кислоты гель тут же растворялся. Далее объем доводят до 10 мл водой и этот раствор используют для приготовления раствора необходимой концентрации.

В пробирку приливают 30 мкл 5×10^-2 М натриевой соли фолиевой кислоты, 10 мкл 5×10^-4 М KI и 50 мкл раствора NaI, содержащего 2 mCi йода-125 без носителя в 10^-3 М NaOH (раствор А)-исходный раствор.

После этого отдельно готовят раствор Б. Для этого последовательно добавляют 0.3 мл воды +10 мкл 0.1 М раствора хлорамина Т (предварительно очищенного от примеси дихлорамина путем экстракции четыреххлористым углеродом) +0.4 мл ацетатного буфера (0.8 М по уксусной кислоте и 0.4 М по ацетату натрия). 30 мкл раствора Б добавляют к раствору А, быстро перемешивают. В течение нескольких секунд образуется гель. Выдержав смесь в течение 30 секунд, добавляют 100 мкл раствора 1 М по гидрофосфату калия и 7×10^-3 М по сульфиту натрия для растворения геля и удаления избытка окислителя, перемешивают. Далее добавляют 1 мл воды. Полученный раствор вводят в HPLC-колонку 150×8 мм с сорбентом С-18 с размером зерен 5 микрон, предварительно уравновешенную буферным раствором: 0.05 М по NaH₂PO ₄ и 0.05 М по Na₂HPO₄. После внесения раствора в колонку ее промывают 15 мл уравновешивающего буфера, затем подают элюент, состоящий из этого же буфера, к которому было добавлено 4.5% (объемных) ацетонитрила. Расход элюента 2.4 мл/мин. Измеряют оптическую плотность раствора, прошедшего через колонку на длине волны 260 нм. Время выхода пика 3'-йодфолиевой кислоты предварительно определяют с использованием немеченой 3'-йодфолиевой кислоты. В эксперименте оно составило 25 минут. Целевой продукт, вышедший в этом пике, собирают в объеме 5 мл, далее выпаривают до объема 3 мл, при этом весь ацетонитрил испаряется. Полученный раствор содержал 70% от всей введенной в реакцию радиоактивности. Удельная активность препарата составила 300 миллиСi/мкМ. В контрольном эксперименте вместо раствора KI и раствора NaI¹²⁵ добавлена вода. Полученный на хроматографе пик 3',5'-дихлорфолиевой кислоты по площади был в двести раз меньше, чем пик от 3'-йодфолиевой кислоты, полученной в примере 1.

Пример 2.

В пробирку приливают 30 мкл 0.05 М раствора натриевой соли фолиевой кислоты (приготовленного как в примере 1) и 60 мкл 0.0012 М раствора бромида калия, содержащего 0.04 мСi Br-82 (раствор A^I - исходный раствор). После этого отдельно готовят раствор Б^I. Для чего последовательно добавляют 0.3 мл воды +30 мкл 0.1 М раствора хлорамина Т (предварительно очищенного от примеси дихлорамина путем экстракции четыреххлористым углеродом) + 0.4 мл ацетатного буфера (0.8 М по уксусной кислоте и 0.4 М по ацетату натрия). Затем добавляют 30 мкл раствора Б ^I к раствору A^I. Последующая обработка растворов и выделение целевого продукта производятся так же, как в примере 1. Время выхождения 3'-бромфолиевой кислоты предварительно определяют по немеченому препарату. Пик меченой 3'-бромфолиевой кислоты содержал 50% от всей исходной активности. Удельная активность препарата составила 350 микроСi/мкМ.

Предложенный способ может применяться как с изотопным разбавлением, так и без него. В последнем случае в реакционную смесь вместо раствора нерадиоактивного изотопа йода или брома следует добавлять столько же воды. Если же необходимо добавить больше нерадиоактивного изотопа, чем указано в примерах, то следует соответственно увеличить и концентрацию хлорамина и сульфита натрия. Однако концентрацию хлорамина нельзя увеличивать более чем вдвое по сравнению с раствором Б^I, так как начнется его выпадение в осадок. Если все же необходимо еще больше хлорамина, то следует взять больший объем раствора Б^I, используя соответственно более разбавленный буфер.

Заявляемый способ может найти применение в диагностике и терапии онкологических заболеваний, в биологических исследованиях.